田艷麗，廖 勇，呂雪蓮，楊蓉婭

侵襲性毛孢子菌病是由毛孢子菌屬所致的系統(tǒng)性感染，近年來報道的病例數逐年增多，多見于血液系統(tǒng)疾病、惡性腫瘤及其他免疫缺陷的患者，盡管給予抗真菌治療，病死率仍較高（50%～80%）[1]。實驗室診斷是毛孢子菌防治的重要依據，特別是早期實驗室診斷對于改善該病的預后至關重要?，F有檢測毛孢子菌的方法可分為培養(yǎng)法和非培養(yǎng)法。培養(yǎng)法是檢測真菌感染的金標準，但其培養(yǎng)時間長，對檢測人員專業(yè)技能要求較高，特異性和敏感性低，且不能區(qū)分非致病性定植與侵襲性感染。與培養(yǎng)法相比， 非培養(yǎng)方法具有檢測時間短、敏感性和特異性相對較高的特點。本文就侵襲性毛孢子菌病非培養(yǎng)檢測方法的研究進展作一闡述。

1 血清學方法

血清學方法是通過檢測病原真菌特異性的抗原、抗體及代謝產物等診斷侵襲性真菌感染的方法，為診斷及評價疾病的狀態(tài)和預后提供線索和依據。

1.1 (1, 3)-β-D葡聚糖抗原[ (1,3)-β-D-glucan, BG]的檢測（G試驗）

BG 是廣泛存在于各類真菌細胞壁上的抗原成分，除接合菌(毛霉菌和根霉菌)外，所有病原真菌的細胞壁上均含有BG。G 試驗被廣泛地用于侵襲性真菌感染的檢測，包括念珠菌病和曲霉病[2]的早期診斷。當真菌進入人體血液或深部組織后，經吞噬細胞的吞噬、消化等處理，BG 可從胞壁中釋放出來，從而使血液及其他體液（如尿液、腦脊液，腹水，胸水等）中出現BG，且隨感染的加重，其含量增高。

Yamamoto 等[3]最早報道了阿薩希毛孢子菌感染小鼠模型中BG 血清水平與抗真菌制劑使用存在量效關系，并推斷BG 抗原檢測可以用于侵襲性毛孢子菌病診斷和治療有效性的監(jiān)測。祝賀等[4]檢測了侵襲性毛孢子菌動物模型中血漿、支氣管肺泡灌洗液、尿液標本的BG 水平，G 試驗的平均敏感性分別為76.67%、80.00%、10.00%，其中血漿、支氣管肺泡灌洗液標本的檢測結果與對照組相比差異具有統(tǒng)計學意義，而尿液標本的檢測結果無統(tǒng)計學意義。然而，目前還沒有文獻報道G 試驗在侵襲性毛孢子菌病的診斷敏感性和特異性的研究結果。Suzuki 等[5]分析33 例侵襲性毛孢子菌病患者的流行病學和臨床特征，發(fā)現一組患者的G 試驗只有50%呈陽性，而血培養(yǎng)陽性的患者中僅有少數G 試驗陽性。Nakase 等[6]報道28 例侵襲性毛孢子菌病的血液病患者，僅有50%患者的G 試驗呈陽性，然而G 試驗陰性患者的總生存期與早期感染病死率均顯著高于G 試驗陽性患者。

有報道，G 試驗不能用于隱球菌感染的診斷，一方面可能因為隱球菌在免疫缺陷患者體內生長緩慢，并形成厚莢膜。另一方面可能與新生隱球菌產生的BG 量比念珠菌和曲霉少相關。和新生隱球菌相似，阿薩希毛孢子菌細胞壁BG 含量較少，G 試驗是否可以用于毛孢子菌感染的檢測還有待進一步深入研究。

1.2 葡萄糖醛酸木糖甘露聚糖(glucuronoxylomannan，GXM )檢測（乳膠凝集試驗）

GXM 在新生隱球菌莢膜中含量最高，占莢膜成分的90%以上[7]，具有抗原性。利用乳膠凝集試驗檢測GXM 是目前臨床上診斷隱球菌感染的最重要方法之一。GXM 也存在于毛孢子菌中,是阿薩希毛孢子菌細胞壁的重要組成成分[8]，尚未在其他病原真菌中發(fā)現。

Campbell 等[9]最早報道毛孢子菌感染的病死患者出現乳膠凝集試驗的陽性結果。Lyman 等[10]在白吉利毛孢子菌臨床分離株和環(huán)境分離株中均檢測到GXM 抗原，且有研究表明，阿薩希毛孢子菌臨床分離株比環(huán)境株釋放更多的GXM 抗原[11]。Fonseca 等[12]研究了阿薩希毛孢子菌細胞壁GXM 的功能和結構特點，發(fā)現在細胞壁錨定、抗原性和抗吞噬能力上，與隱球菌莢膜GXM 具有相似性。然而，與新生隱球菌不同的是，37 ℃時，阿薩希毛孢子菌細胞壁和胞外分泌的GXM 表達下調。由于人類正常體溫在 37℃左右，所以阿薩希毛孢子菌與新生隱球菌相比，其在感染宿主體內的GXM 抗原表達水平較低。有研究者認為GXM 或GXM 結合BG 抗原檢測比單用BG 抗原檢測更適合用于侵襲性毛孢子菌病的早期診斷與治療預后的判斷，但需要臨床與實驗室檢測的進一步研究與證實[13]。

1.3 其他抗體

Davies 和Thornton[14]利用雜交瘤技術制備出2個鼠單抗MAbs：CA7 和TH1。通過免疫熒光和蛋白質印跡法研究表明， CA7 是一種免疫球蛋白G1（IgG1），主要結合于阿薩希毛孢子菌和星形毛孢子菌菌絲表面的一個60 kDa 的糖蛋白抗原。而TH1 是一種免疫球蛋白M（IgM），結合于分生孢子表面的特異性抗原。這兩種單抗可特異性的識別和鑒定出阿薩希毛孢子菌和星形毛孢子菌，而不與毛孢子菌屬中的其他菌種結合，同樣也不識別其他常見的臨床致病真菌，包括念珠菌屬、隱球菌屬、曲霉屬、鐮刀霉、足放線病菌屬和毛霉菌屬。

2 聚合酶鏈反應(PCR)技術在播散性毛孢子菌病的應用

2.1 PCR及相關技術

PCR 是通過擴增毛孢子菌特異基因片斷而獲得的快速、靈敏和特異的診斷方法。毛孢子菌的核糖體RNA 基因總長度約為7 850 bp[1,15]，其中，結構基因（SSU，5.8/5s，LSU）是高度保守基因序列，可以作為真菌屬水平的分類及通用引物的設計。LSU 中的D1/D2 可變性較大，部分可以作為真菌種水平的鑒定，而作為種水平的鑒定的特異性的基因片段是內轉錄間隔ITS 區(qū)，基因間隔區(qū)IGS 區(qū)用于種內分型及菌株鑒定[15]。由于毛孢子菌種屬的基因差異決定了對不同抗真菌藥物敏感性有所不同，正確鑒定毛孢子菌種屬對治療藥物的選擇、提高臨床療效和降低病死率至關重要。

Hosoki 等[16]檢測1 例組織細胞吞噬性脂膜炎臍帶血移植治療后患者，在使用抗真菌預防性治療的同時，應用巢式PCR 早于血清學培養(yǎng)和臨床菌血癥癥狀出現前1 周檢測出患者繼發(fā)毛孢子菌感染。隨后的中心靜脈導管培養(yǎng)證實感染阿薩希毛孢子菌，該例患者的血清PCR 檢測反應陽性持續(xù)到第39 天，直至該例患者進行抗真菌治療成功后巢式PCR 檢測才轉為陰性。而在此期間BG 血清滴度一直保持正常水平。Nakajima 等[17]提取肺癌患者的肺活檢標本的總DNA,擴增真菌ITS 區(qū)域進行測序，并成功鑒定出感染的病原體是阿薩希毛孢子菌。 Nagano 等[18]對77例肺囊性纖維化患者應用常規(guī)培養(yǎng)與PCR 技術檢測真菌，收集痰樣本提取DNA，擴增ITS 區(qū)域進行測序分析。77 個樣本通過PCR 技術鑒定出2 例毛孢子菌屬感染，培養(yǎng)的方法僅發(fā)現1 例陽性。

與血清學檢測相比，PCR 技術具有更高的敏感性。Nagai 等[19]對11 例組織病理明確診斷的播散性毛孢子菌病患者的血清樣本進行巢式PCR 檢測，引物針對28S rDNA 序列設計。在11 例患者樣本中，PCR 檢測7 例陽性，GXM 檢測6 例陽性。Sugita 等[20]分別通過PCR 法和乳膠凝集試驗檢測11 份血清，這些血清來自7 例尸檢證實的侵襲性毛孢子菌病患者，針對阿薩希毛孢子菌的ITS 區(qū)設計菌種特異性引物；11份血清中，9 份巢式PCR 檢測陽性，7 份乳膠凝集試驗陽性。Mekha 等[21]對侵襲性毛孢子菌病患者的21份血清進行實時定量熒光PCR，引物基于rDNA 的IGS1 區(qū)設計，實時定量熒光PCR 檢測樣本均為陽性，而乳膠凝集試驗檢測陽性的只有16 份。

2.2 芯片技術

基因芯片是研究生物大分子功能的新技術,具有高通量、微型化、連續(xù)化、自動化、快速和準確等特點。利用該技術結合多重PCR 針對ITS1、18S、5.8S 序列的微陣列雜交檢測91 個樣品，鑒定出14 種病原真菌，其中包括阿薩希毛孢子菌[22]。Hsiue 等[23]設計針對ITS1 或ITS2 區(qū)域寡核苷酸微陣列芯片用于分析116 例患者血培養(yǎng)真菌陽性的標本。該系統(tǒng)識別并鑒定16 個酵母菌屬的77 個菌種，并能夠檢測和鑒定出2 個樣本中的阿薩希毛孢子菌陽性，而表型的方法僅有1 個樣本陽性。

Landlinger 等[24]應用Luminex xMAP 技術檢測患者的外周血、血液培養(yǎng)樣本、肺部浸潤活檢組織、支氣管肺泡灌洗液和支氣管氣管分泌物，針對真菌基因組中高度可變ITS2 區(qū)域設計探針，檢測并鑒定出3 種臨床致病的毛孢子菌：阿薩希毛孢子菌、因肯毛孢子菌和皮樣毛孢子菌。同時，從石蠟包埋的組織中檢測鑒定到皮樣毛孢子菌感染。

用探針設計除了可以識別ITS 區(qū)和間隔區(qū)1（IGS1），還 可 以 包 括28S rDNA 序 列 的D1/D2 區(qū)域。Diaz 和Fell[25]使用Luminex100 流式熒光雜交試驗，鑒定39 株不同的毛孢子菌，且證實利用ITS 和D1/D2 區(qū)域區(qū)分種屬是靈敏的，IGS 的區(qū)域可用于區(qū)別種屬關系密切的菌種，如阿薩希毛孢子菌、日本毛孢子菌和星形毛孢子菌。

2.3 PCR衍生技術的應用

聚合酶鏈反應-限制性片段長度多態(tài)性（PCRRFLP）法是利用PCR 擴增相應目的片斷，而后進行限制性內切酶切反應，電泳后觀察比較限制性圖譜來分析序列之間的差異。Fadda 等[26]通過研究發(fā)現，擴增18S-ITS1-5.8S (r)DNA，并應用HaeIII 內切酶消化進行PCR-RFLP 法檢測，可鑒定出API 生化系統(tǒng)不能檢測出的毛孢子菌，結合D1/D2 區(qū)域的測序，鑒定出Trichosporon gracile。

環(huán)介導等溫擴增技術（loop-mediated isothermal amplifi cation，LAMP），是針對靶基因的6 個區(qū)域設計4 對特異引物，在鏈置換DNA 聚合酶（Bst DNA polymerase）的作用下，60 ～65℃恒溫擴增，15 ～60 min 即可實現109～1010倍的核酸擴增，具有操作簡單、特異性強、產物易檢測等特點。Kasahara 等[27]針對毛孢子菌26S 和5S rRNA 基因間隔中的IGS1 區(qū)域設計LAMP 引物，可以在1 h 內檢測并鑒別出1 ml 培養(yǎng)液中1 ～103個菌量的毛孢子菌或念珠菌，并成功鑒定出阿薩希毛孢子菌和粘性毛孢子菌。

3 展望

近年來，隨著侵襲性毛孢子菌病報道的病例數逐年增多，越來越多的研究開始關注于該疾病的診斷與治療。侵襲性毛孢子菌病病死率高，因此該病的早期診斷具有重要的臨床意義。非培養(yǎng)檢測方法包括：血清學檢測、PCR 技術等均具有各自的優(yōu)勢。血清學檢測具有簡便快速的特點，但檢測方法的敏感性和特異性尚需進一步研究與證實。相比之下，PCR 及其相關技術更可快速、敏感、特異的檢測出病原菌并鑒定菌種，是快速早期診斷發(fā)展的主流。但 PCR 過程中也存在一些問題，如檢測過程缺乏規(guī)范化，極少量的污染便可出現假陽性結果，檢測的敏感性和特異性報道不一，PCR 結果必須結合患者的臨床表現和其他的檢查結果，才能作出正確的判斷。侵襲性毛孢子菌病中重要致病菌阿薩希毛孢子菌的全基因組序列已經破譯[28]，發(fā)現更特異的檢測基因靶位，對于該疾病的更多深入研究將會進一步推動早期診斷技術的發(fā)展。

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