亚洲免费av电影一区二区三区,日韩爱爱视频,51精品视频一区二区三区,91视频爱爱,日韩欧美在线播放视频,中文字幕少妇AV,亚洲电影中文字幕,久久久久亚洲av成人网址,久久综合视频网站,国产在线不卡免费播放

        ?

        全氟辛烷磺酸鉀(PFOS)和納米氧化鋅(Nano-ZnO)單獨與聯(lián)合暴露對斑馬魚胚胎的氧化損傷和細胞凋亡的影響

        2015-03-07 06:49:31杜佳王樹濤尤宏
        生態(tài)毒理學報 2015年3期
        關鍵詞:氧化應激

        杜佳,王樹濤, 劉 征,尤宏,2,*

        1. 哈爾濱工業(yè)大學,水資源與環(huán)境國家重點實驗室,哈爾濱150090 2. 哈爾濱工業(yè)大學(威海),海洋科學與技術(shù)學院,威海 264209

        ?

        全氟辛烷磺酸鉀(PFOS)和納米氧化鋅(Nano-ZnO)單獨與聯(lián)合暴露對斑馬魚胚胎的氧化損傷和細胞凋亡的影響

        杜佳1,王樹濤1, 劉 征1,尤宏1,2,*

        1. 哈爾濱工業(yè)大學,水資源與環(huán)境國家重點實驗室,哈爾濱150090 2. 哈爾濱工業(yè)大學(威海),海洋科學與技術(shù)學院,威海 264209

        探討全氟辛烷磺酸鉀(PFOS)和納米氧化鋅(Nano-ZnO)復合暴露對斑馬魚機體氧化損傷和細胞凋亡的影響。將斑馬魚胚胎暴露于PFOS(0、0.4、0.8和1.6 mg·L-1)、Nano-ZnO (0、12.5、25和50 mg·L-1)、PFOS+Nano-ZnO (0、0.4+12.5、0.8+25和1.6+50 mg·L-1)溶液中6天后,檢測相關的酶活性變化(超氧化物歧化酶(SOD)、過氧化氫酶(CAT)、谷胱甘肽過氧化物酶(Gpx)、脂質(zhì)過氧化物(MDA)、半胱氨酸蛋白酶(Caspase-3和Caspase-9)和與細胞凋亡相關基因(Bax, p53和Bcl-2)表達情況。結(jié)果表明:PFOS和Nano-ZnO單獨與復合暴露均可造成斑馬魚胚胎的氧化損傷和細胞凋亡,但復合暴露組的氧化損傷和細胞凋亡程度明顯大于單獨暴露組。在PFOS和Nano-ZnO單獨和復合暴露組中,隨著處理濃度的升高,SOD、Gpx、Caspase-3和Caspase-9酶的活性顯著升高。而CAT酶活性隨著處理濃度的升高抑制作用顯著。PFOS與Nano-ZnO復合暴露組與單獨暴露組相比,Bax和p53表達顯著上調(diào),而Bcl-2表達顯著下調(diào)。因此,在實驗濃度范圍內(nèi),等毒性配比1:1條件下,推測Nano-ZnO可以增強PFOS對斑馬魚胚胎的氧化損傷和細胞凋亡毒性。

        全氟辛烷磺酸鉀(PFOS);納米氧化鋅(Nano-ZnO);氧化應激;細胞凋亡;聯(lián)合毒性

        納米材料(nanomaterials, NM)是指三維空間中至少有一維處于納米尺度范圍(1~100nm)或由它們作為基本單元構(gòu)成的材料,其廣泛應用于工業(yè)、醫(yī)藥和生活各個領域[1]。NMs在生產(chǎn)、使用及處理過程中不可避免地會以納米顆粒(nanoparticles, NPs)污染物的形式進入環(huán)境。由于NPs尺寸微小、比表面積巨大,比常規(guī)尺寸材料具有更大的表面活性和遷移能力,很容易被生物組織吸收而產(chǎn)生毒性效應。目前,NPs已成為一類普遍關注的新型污染物。

        納米氧化鋅(Nano-ZnO)廣泛應用于電子產(chǎn)品、染料、催化劑及化妝品等多個領域,其在使用和處理過程中會不可避免的進入環(huán)境。目前,在河流、土壤等環(huán)境樣品中都檢測到了Nano-ZnO[2-3]。Nano-ZnO的潛在生物毒性引起了人們的廣泛關注。Gojova等[4]發(fā)現(xiàn)Nano-ZnO能夠誘導血管內(nèi)皮細胞的炎癥反應。Nano-ZnO能誘導人類肝細胞產(chǎn)生凋亡現(xiàn)象[5],并引起鯽魚肝臟的氧化損傷[6]。Canas等[7]發(fā)現(xiàn)長期暴露在Nano-ZnO的土壤中能夠?qū)︱球镜纳钞a(chǎn)生影響。Nano-ZnO的長期暴露能夠影響淡水蝸的氧化應激反應并能誘導基因毒性[8]。雖然Nano-ZnO的毒性研究已取得了一定的進展,但Nano-ZnO對生物的毒性效應以及毒性作用的分子學機理依然是目前環(huán)境毒理學領域亟待解決的問題。

        全氟辛烷磺酸鉀(perfluorooctanesul phonic acid potassium salt , PFOS)是一種人造全氟化合物,廣泛應用于紡織品和地毯等表面防污處理劑、涂料、泡沫滅火劑、農(nóng)藥及其他表面活性劑產(chǎn)品中[9]。PFOS不僅很難降解,還有可能通過食物、空氣和水進入人體。人們已經(jīng)在水體、生物體、人體組織和食物中廣泛檢出了PFOS[10-11]。PFOS的毒性也同樣引起人們的重視。PFOS引起的毒性效應主要有肝臟毒性[12]、神經(jīng)毒性[13]、免疫毒性、生殖毒性[14]和發(fā)育毒性[15]等。Du等[12]發(fā)現(xiàn)長期暴露在PFOS的水中,可以誘導斑馬魚的肝臟毒性。Keiter等[16]發(fā)現(xiàn)PFOS可以誘導斑馬魚肝臟,甲狀腺和性腺發(fā)生病變。端正花等[17]發(fā)現(xiàn)PFOS對人體正常肝細胞增殖具有顯著毒性。

        環(huán)境中的污染物正趨于多元化和復雜化,環(huán)境污染以各種污染物構(gòu)成的復合污染為主[18],在這種狀態(tài)下,多種污染物共存于同一環(huán)境并相互作用。僅僅用單一污染物的作用機理已無法解釋污染物間相互作用的環(huán)境效應。因此,混合物聯(lián)合作用的研究具有非常重要的意義,它能為環(huán)境標準的制定和生態(tài)風險評價提供更可靠的依據(jù)。Zhang等[19]發(fā)現(xiàn)納米二氧化鈦能夠增加Cd在鯉魚體內(nèi)的積累。Kim等[20]發(fā)現(xiàn)PFOS能夠增強Cd在斑馬魚生命階段早期的毒性作用。Keiter等[16]發(fā)現(xiàn)當斑馬魚親本代暴露于PFOS和雙酚A溶液中4個月后,子代的存活率顯著下降。NPs可以與環(huán)境中其他化學物相互作用,從而聯(lián)合發(fā)揮對生物系統(tǒng)和環(huán)境的影響。PFOS和Nano-ZnO在河流、土壤和沉積物中廣泛存在,使得他們在水環(huán)境中同時存在的幾率增大。

        粒子誘導氧化應激是生物學的一種重要的機械模式,以此為基礎預測模型研究毒性[21]。氧化應激是誘導氧化損傷的一種常見途徑,生物的抗氧化系統(tǒng)是生物為了避免內(nèi)外源化學物質(zhì)的損害而通過長期進化形成的酶解系統(tǒng)。當生物處于污染的環(huán)境中,可誘導抗氧化系統(tǒng)酶活性的變化,并可定量檢測。凋亡是細胞程序性死亡(PCD)的過程,發(fā)生在多細胞生物。半胱天冬酶家族(caspase)在細胞內(nèi)凋亡信號的感應、傳到和放大中扮演至關重要的作用[22]。p53蛋白調(diào)節(jié)多細胞生物細胞周期和誘導細胞凋亡[23]。p53被激活時,它誘導線粒體膜Bax基因的表達,然后激活效應caspase-3基因表達[24]。Bcl-2作為一個典型的抗氧化劑對抗氧化應激,防止細胞凋亡[25]。

        目前國內(nèi)外對于PFOS和Nano-ZnO的單一毒性研究已經(jīng)有很多報道,但這兩種化合物對于水生生物的聯(lián)合毒性作用,卻很少有報道。本文通過酶活性變化和基因表達情況,以此研究二者復合引起的氧化應激和細胞損傷毒性作用。

        1 材料與方法(Materials and methods)

        1.1 實驗材料

        實驗魚:成年AB品系斑馬魚(Danio rerio)由中國科學院武漢水生生物研究所提供。斑馬魚體長約為3~4 cm,養(yǎng)殖于經(jīng)活性炭和珊瑚砂過濾的標準化紫外滅菌循環(huán)水箱內(nèi)。斑馬魚(雌雄性比例1:2)飼養(yǎng)在水箱中,水溫控制為28±1 ℃,光照周期明暗比為14 h:10 h,控制飼養(yǎng)一個月左右開始收集魚卵。飼養(yǎng)水中加入營養(yǎng)鹽(294 mg·L-1CaCl2·2H2O、123.3mg·L-1MgSO4·7H2O、63.0 mg·L-1NaHCO3和5.5 mg·L-1KCl),pH保持7.0左右,每日喂2次豐年蟲。

        1.2 儀器和試劑

        儀器:水平電泳儀(DYY-6C,北京六一儀器廠),Waters高效液相色譜/串聯(lián)質(zhì)譜儀OA/SPE-MS/MS,掃描電子顯微鏡(SEM, Philips XL30, FEI Company),透射電子顯微電鏡(JEOL, Tokyo, Japan),動態(tài)光散射儀(Brookhaven Instrument Corporation, Holtsville, NY, USA),UVP凝膠圖像分析儀(VilberLourmat),PCR儀和CEX96TM Real-TimePCR儀(Bio-Rad),電感耦合等離子體質(zhì)譜儀(ICP-MS, Thermo Elemental X7, Thermo Electron Co., USA),定量PCR儀器(American, ABI)。

        試劑:全氟辛烷磺酸鉀(PFOS: C8F17KO3S;CAS no: 2795-36-3;純度≥98%,Sigma公司);全氟辛烷磺酸鉀(PFOS: C8F17SO3H;CAS no:2795-36-3;分析標準品,Sigma公司);二甲亞砜(DMSO; ≥99.9%,Sigma公司);納米氧化鋅粒子分散液(CAS no:1314-13-2,<100 nm,Sigma公司);測酶活性試劑盒,南京建成科技有限公司;Trizol試劑,PrimeScript RT reagents Kit試劑盒和SYBR Premix Ex TaqTM試劑盒( TaKaRa)。其他試劑均為國產(chǎn)分析純。

        1.3 實驗方法

        1.3.1 Nano-ZnO的表征分析

        SEM分析:將Nano-ZnO水溶液滴在含導電膠的鋁片上,室溫晾干后噴金,將其置于掃描電鏡下拍照;TEM形貌觀察:將Nano-ZnO水溶液滴在銅網(wǎng)上,用鑷子取出,在濾紙上晾干,將銅片置于透射電鏡下拍照;DLS粒徑分析:配置12.5,25和50 mg·L-1濃度的Nano-ZnO水溶液于10 mL玻璃管中,用動態(tài)光散射(DLS)分析Nano-ZnO在水溶液中的粒徑分布。

        SEM圖片(圖1A)與TEM 圖片(圖1B)顯示其顆?;境蕟晤w粒狀態(tài),雖部分顆粒聚集在一起,但無明顯團聚態(tài)。DLS(圖1B)結(jié)果表明Nano-ZnO顆粒粒徑均分布在100 nm 以下,集中分布在40~60 nm 左右,平均粒徑為50 nm,表明Nano-ZnO粒徑達到納米級別(1~100 nm)。

        1.3.2 斑馬魚毒性實驗

        首先進行預實驗確定暴露濃度。將斑馬魚的胚胎暴露在PFOS溶液(0,1,2,4,8,16 mg·L-1)和Nano-ZnO溶液(1,5,10,20,50,100,200 mg·L-1)中96 h,每個濃度設3個平行,每隔24小時統(tǒng)計胚胎死亡率,用寇氏法[26]算得PFOS 96h的LC50為3.502 mg·L-1(95%的置信區(qū)間為2.369~5.051 mg·L-1),Nano-ZnO的96 h的LC50為60 mg·L-1(95%的置信區(qū)間為83.35~44.16 mg·L-1)。實驗結(jié)果顯示胚胎暴露在1.6 mg·L-1的PFOS中死亡率與暴露在50 mg·L-1的Nano-ZnO的死亡率相同均為25%,表一所示。根據(jù)1:1等毒性配比,我們選擇Nano-ZnO(0,12.5,25,50 mg·L-1)、PFOS(0,0.4,0.8,1.6 mg·L-1)單獨暴露組和Nano-ZnO+PFOS(12.5+0.4,25+0.8,1.6+50 mg·L-1)復合暴露組進行實驗。暴露時間選擇開始于胚胎產(chǎn)出6小時到144小時為止。

        圖1 Nano-ZnO (50 mg·L-1)在掃描電鏡(A)、透射電鏡(B)和動態(tài)光衍射下的粒徑分布情況Fig. 1 SEM images (A) of a Nano-ZnO suspension of 50 mg·L-1; TEM images (B) of a Nano-ZnO suspension of 50 mg·L-1;particle size distribution (B) histogram of Nano-ZnO obtained from DLS

        以斑馬魚培養(yǎng)水為對照溶液,在500 mL燒杯中分別加入上述溶液200 mL,每個燒杯中隨機放入發(fā)育正常的200個斑馬魚胚胎,每個濃度設置3個重復,試驗重復3次。試驗進行6天,每天換1次染毒液。6天后,用離心管收集斑馬魚,勻漿取上清,勻漿前,用PBS(pH=7.4)緩沖液潤洗,用吸管吸去離心管中水分并稱重,加入4倍體積預冷的PBS緩沖液,冰浴下,用玻璃勻漿管勻漿后于4 ℃離心(4 000 rmin-1,20 min),取上清液保存于4℃用于酶活性測定(24 h內(nèi)測完)。在溶液中暴露6天后,收集用于基因分析的樣品并儲存在-80℃冰箱中待用。

        1.3.3 生化指標測定

        蛋白含量的測定采用考馬斯亮藍法,以牛血清白蛋白為標準,樣品與考馬斯亮藍G250按體積比1:5混合,測定波長595 nm。SOD,Gpx,CAT,Caspase-3,Caspase-9活性以及MDA含量測定,均采用購自南京建成生物公司的檢測試劑盒,有關操作參照說明書進行。

        1.3.4 斑馬魚胚胎中相關凋亡基因Real-time PCR測定

        用Trizol抽提出斑馬魚的總RNA,利用核酸蛋白儀測出RNA濃度,UVP凝膠圖像分析儀凝膠電泳,利用PrimeScript RT reagentsKit試劑盒將總RNA反轉(zhuǎn)錄成cDNA;然后用SYBRPremix Ex TaqTM試劑盒進行Real-time PCR。以上實驗步驟均按說明書操作。實驗結(jié)果用2-ΔΔCt方法分析數(shù)據(jù),引物序列見表2。

        1.3.5 化學分析

        新鮮配置一系列濃度的Nano-ZnO懸浮液,每個濃度懸浮液在24 h后采樣分析溶解的Zn2+。Nano-ZnO懸浮液在10 000 g·min-1重力下離心30 min,取上清用ICP-MS測定溶液中Zn2+的含量。

        新鮮配置一系列濃度的PFOS溶液,每個濃度溶液在24 h后采樣,過0.22 μm尼龍濾膜,參照Skutlarek等[27]固相萃取和液體色譜串聯(lián)質(zhì)譜分析方法,進行PFOS濃度分析。

        表1 PFOS andNano-ZnO暴露下斑馬魚胚胎96h的死亡率

        表2 實驗中所用的引物序列

        1.4 數(shù)據(jù)統(tǒng)計分析

        實驗結(jié)果均以“平均值±標準誤差”即(mean±SD)表示。采用SPSS18.0軟件進行統(tǒng)計分析,多組間比較采用方差齊性檢驗和單因素方差分析(One Way ANOVA)。進一步進行組間兩兩比較時,采用LSD和Dunnett T3檢驗,以P<0.05表示表示差異顯著。

        2 結(jié)果與分析(Results and analysis)

        2.1 化學分析

        由ICP-MS的實驗結(jié)果可知,Zn2+的濃度在Nano-ZnO單獨暴露組(12.5,25和50 mg·L-1)的溶液中分別為9.85,9.22和22.58 mg·L-1。此外,Zn2+的濃度在PFOS和Nano-ZnO復合暴露組(0.4+12.5,0.8+25和1.6+50 mgL-1)中分別為5.25,13.15和30.38 mg·L-1。經(jīng)OA/SPE-MS/MS分析,得到線性方程為Y=88133.5X+14149.75 (R2=0.996),其中Y為二級子離子(m/z499.2>79.9)的峰面積,X為PFOS的質(zhì)量濃度。實驗結(jié)果表明PFOS在0.05~1.8 mg·L-1范圍內(nèi)線性關系良好。PFOS在單獨暴露懸浮液(0.4,0.8和1.6 mg·L-1)中的濃度為0.33,0.64和1.23 mg·L-1。PFOS在與Nano-ZnO復合暴露懸浮液(0.4+12.5,0.8+25和1.6+50 mg·L-1)中的濃度分別為0.31,0.54和1.19 mg·L-1。

        2.2 PFOS和Nano-ZnO暴露對斑馬魚氧化酶活性影響

        由圖2A可以看出,PFOS和Nano-ZnO均能誘導斑馬魚SOD酶活性變化。SOD的活性在PFOS和Nano-ZnO處理組中除0.4和0.8 mg·L-1PFOS單獨暴露組外均與對照組相比顯著升高(P<0.05)。0.4和0.8 mg·L-1PFOS 單獨處理組分別與PFOS 0.4 mg·L-1+Nano-ZnO 12.5 mg·L-1和PFOS 0.8 mg·L-1+Nano-ZnO 25 mg·L-1復合暴露組相比差異顯著(P<0.05)。

        由圖2B可知,PFOS和Nano-ZnO均能抑制斑馬魚CAT酶的活性并且與濃度變化呈現(xiàn)劑量效應關系。CAT的活性在Nano-ZnO單獨處理組、Nano-ZnO 12.5 mg·L-1復合處理組和Nano-ZnO 50 mg·L-1復合處理組中與對照相比差異顯著(P<0.05)。在PFOS 1.6 mg·L-1和Nano-ZnO 25 mg·L-1單獨處理組中,與其對應的復合處理組差異顯著,說明在復合溶液中,斑馬魚的氧化損傷程度更加明顯。

        PFOS和Nano-ZnO暴露對斑馬魚幼魚Gpx活性的影響如圖1-C所示,各暴露組Gpx活性顯著上升,不同濃度暴露存在一定的劑量依賴效應。Gpx的活性在PFOS和Nano-ZnO處理組中均高于對照組,除0.4和0.8 mg·L-1PFOS單獨暴露組外,Gpx的活性隨著濃度的升高與對照組相比顯著增加(P<0.05)。通過觀察濃度-劑量關系,1.6 mg·L-1PFOS單獨暴露組誘導率達到對照組的3.33倍,50 mg·L-1Nano-ZnO單獨暴露組誘導率達到對照組的3.74倍。Gpx的活性在PFOS單獨處理組、Nano-ZnO 12.5 mg·L-1單獨處理組和Nano-ZnO 50 mg·L-1單獨處理組中與其等濃度對應的復合處理組相比差異顯著(P<0.05)。

        PFOS和Nano-ZnO暴露對斑馬魚幼魚MDA活性的影響如圖1-D所示,在所有暴露組,不同暴露濃度下,MDA的含量均高于對照組。1.6 mg·L-1PFOS單獨暴露組和所有的復合處理組與對照組相比差異顯著(P<0.05)。在25 mg·L-1及 50 mg·L-1Nano-ZnO復合暴露組中,MDA含量達到最大值,分別為對照組的4.61和5.7倍。0.8、1.6 mg·L-1PFOS單獨處理組合和25、50 mg·L-1Nano-ZnO單獨處理組與其等濃度對應的復合處理組相比差異顯著(P<0.05)。

        2.3 PFOS和Nano-ZnO暴露對斑馬魚細胞凋亡酶活性影響

        為探討PFOS和Nano-ZnO誘導細胞凋亡是否由Caspase依賴性途徑引起,測定了Caspase-3和Caspase-9酶的活性,實驗結(jié)果如圖3所示:在0.8 mg·L-1PFOS復合暴露組和1.6 mg·L-1PFOS單獨與復合暴露組中,Caspase-3和Caspase-9活性相比對照組顯著升高。并且Caspase-3和Caspase-9酶活性在0.8 mg·L-1PFOS單獨暴露組其對應的復合暴露組相比差異顯著(P<0.05)。另外,在Nano-ZnO所有單獨處理組中,Caspase-3及Caspase-9活性與其復合處理組差異顯著(P<0.05)。隨著暴露濃度的增加,Caspase-3及Caspase-9活性誘導率上升,0.8和1.6 mg·L-1PFOS復合暴露時,誘導率達到最大,分別為對照組的6.47和4.21倍顯著高于對照組。Caspase-3及Caspase-9酶活性在1.6 mg·L-1PFOS復合暴露組與對照差異顯著。

        2.4 PFOS和Nano-ZnO暴露對斑馬魚細胞凋亡基因表達影響 不同濃度PFOS和Nano-ZnO暴露6天后,分別測定p53、Bax和Bcl-2的表達情況,測定結(jié)果如圖4所示:相比對照組,其他暴露組p53和Bax表達呈上升趨勢,并與暴露濃度呈現(xiàn)一定的劑量依賴性效應。在PFOS 1.6 mg·L-1復合暴露組中,p53和Bax上調(diào)幅度均大于單獨暴露組,并且為其單獨暴露組的1.31倍和1.68倍。PFOS 1.6 mg·L-1單獨暴露組和Nano-ZnO 50 mg·L-1單獨與復合暴露組與對照相比p53表達顯著上升。PFOS 0.4 mg·L-1與所有Nano-ZnO單獨處理組p53的表達與相應復合暴露組相比差異顯著(P<0.05)。如圖4B所示,PFOS 1.6 mg·L-1單獨暴露組和Nano-ZnO 50 mg·L-1單獨暴露組與對照和相應的復合暴露組相比差異顯著(P<0.05)。而在處理組中Bcl-2基因表達與對照組相比呈現(xiàn)下調(diào)趨勢,最高濃度的復合暴露組與對照有顯著差異(p<0.05),下調(diào)幅度達到對照組的0.31倍。1.6 mg·L-1PFOS單獨處理組和50 mg·L-1Nano-ZnO單獨處理組與其對應的復合處理組相比差異顯著(P<0.05),并且復合暴露組Bcl-2基因下調(diào)的趨勢明顯大于單獨暴露組。

        圖2 PFOS和Nano-ZnO不同濃度處理對斑馬魚SOD (A),CAT (B),Gpx (C)活性和MDA(D)含量的影響注:*代表PFOS或Nano-ZnO單獨處理組與其相同濃度的復合處理組有顯著差異P<0.05。# 代表與對照組有顯著差異P<0.05。Fig. 2 SOD (A), CAT (B) and Gpx activities (C) and MDA content (D) in zebrafish embryos afterexposure in PFOS combined with Nano-ZnONote: *Indicate that PFOS or Nano-ZnOsingle-exposure have statistically significant difference from the same concentration of PFOS andNano-ZnOco-exposure at P<0.05 level. # Indicate a statistically significant difference from control at P<0.05 level.

        圖3 PFOS和Nano-ZnO不同濃度處理對斑馬魚Caspase-3和Caspase-9活性影響注:*代表PFOS或Nano-ZnO單獨處理組與其相同濃度的復合處理組有顯著差異P<0.05。# 代表與對照組有顯著差異P<0.05。Fig. 3 Changes in the Caspase-3 (A) and Caspase-9 (B) activities of zebrafish larvae afterexposure to various concentrations of PFOS and ZnO-NPsNote: *Indicate that PFOS or Nano-ZnOsingle-exposure have statistically significant difference from the same concentrationof PFOS and Nano-ZnO co-exposure at P<0.05 level. # Indicate a statistically significant difference from control at P<0.05 level

        圖4 PFOS和Nano-ZnO不同濃度處理對斑馬魚p53 (A), Bax (B) and Bcl-2 (C)的基因表達影響。注:*PFOS或Nano-ZnO單獨處理組與其相同濃度的復合處理組有顯著差異P<0.05, # 代表與對照組有顯著差異P<0.05。Fig. 4 Expression levels of the p53 (A), Bax (B) and Bcl-2 (C) genes expression levels in zebrafishembryos after exposure in PFOS combined with ZnO-NPsNote: *Indicate that PFOS or Nano-ZnOsingle-exposure have statistically significant difference from the same concentration of PFOS andNano-ZnO co-exposure at P<0.05 level. # Indicate a statistically significant difference from control at P<0.05 level.

        3 討論 (Discussion)

        本研究通過對一些典型氧化應激和凋亡酶活性,以及與凋亡通路相關基因表達的測定,首次證明了PFOS和Nano-ZnO共同暴露可以誘導斑馬魚早期發(fā)育階段的氧化應激和細胞凋亡損傷。在PFOS和Nano-ZnO暴露的整個階段中,協(xié)同效應起著重要的作用。

        SOD是抗氧化酶系統(tǒng)中最先起作用的特異性酶,在生物體胞漿和線粒體中普遍存在,通常比其他抗氧化酶更為敏感。毒物暴露后,SOD以自由基為底物,將超氧陰離子(O2-)催化歧化為O2和H2O2,將ROS維持在適宜范圍內(nèi),保護機體免受O2-毒性損傷[28-29]。CAT是位于過氧化物酶體中的含鐵血蛋白抗氧化酶,能促使機體內(nèi)H2O2代謝為O2和H2O[30],避免毒性更強的·OH的產(chǎn)生,從而保護機體免受毒物傷害。Gpx可清除·OH和ROS等誘導的脂質(zhì)過氧化物,保護細胞膜結(jié)構(gòu)和功能的完整性。MDA作為LPO穩(wěn)定的降解產(chǎn)物,可使酶蛋白交聯(lián)并失活,破壞膜結(jié)構(gòu)和功能[31]。因此,常用MDA含量變化判斷質(zhì)膜損傷及脂質(zhì)過氧化程度。在本研究中,SOD,Gpx的活性和MDA的含量隨著有毒物質(zhì)的濃度增加呈現(xiàn)上升的趨勢,并在復合暴露組中與單獨暴露組相比顯著增加(圖2)。而CAT的活性隨著處理濃度的增加呈現(xiàn)下降的趨勢,在復合暴露組中下降趨勢大于單獨暴露組(圖2)。Zhao等[32]發(fā)現(xiàn)Nano-ZnO能夠誘導斑馬魚胚胎的發(fā)育毒性,氧化應激和DNA損傷。Xiong等[33]報道了5 mg·L-1Nano-ZnO誘導斑馬魚的肝臟和鰓產(chǎn)生氧化應激反應。PFOS同樣也導致鼠肺產(chǎn)生氧化損傷[34]。這些研究結(jié)果與本實驗單獨PFOS和Nano-ZnO毒性結(jié)果類似。同時,Kim等[20]發(fā)現(xiàn)預先暴露PFOS可以影響抗氧化防御機制并且加強Cd的毒性。本實驗中相關酶活性的改變說明氧化應激機制是PFOS和Nano-ZnO誘導斑馬魚體內(nèi)毒性的一個重要機制。

        Caspase是細胞內(nèi)蛋白酶,作為細胞凋亡的感應和引發(fā)劑,是轉(zhuǎn)導凋亡信號的共同通路。細胞凋亡的很多調(diào)控途徑都是由Caspase酶發(fā)揮作用。Caspase-3和Caspase-9也被認定為魚早期生命階段應激誘導細胞凋亡的重要指標[35]。如圖3所示,PFOS和Nano-ZnO暴露顯著誘導了斑馬魚胚胎Caspase-3和Caspase-9的活性上升。Wang等[36]報道了Nano-ZnO誘導星形膠質(zhì)細胞的Caspase-3酶的活性變化。Chen等[34]證明了PFOS能偶誘導老鼠肺部Caspase-3和Caspase-9酶活性的上調(diào)。

        P53是一種腫瘤抑制基因,可以調(diào)控多種基因的表達,p53上調(diào)可以導致細胞周期阻滯和細胞凋亡[37]。被激活的p53基因誘導線粒體膜中促凋亡基因Bax的表達,降低線粒體膜電位,增加膜透性,導致凋亡誘導蛋白細胞色素C的釋放,促使下游的caspase-9激活,進而繼續(xù)激活caspase-3活性[38],加速細胞死亡過程。Bcl-2作為一個典型的抗氧化劑,能夠?qū)寡趸瘔毫?,防止細胞凋亡[25]。本研究為了闡明PFOS和Nano-ZnO暴露誘導的斑馬魚仔魚細胞凋亡途徑,對細胞凋亡相關基因進行了考察,研究結(jié)果顯示,PFOS和Nano-ZnO單獨和復合暴露均能引起細胞凋亡反應,且復合暴露引起的凋亡程度大于單獨暴露,證明在試驗濃度范圍內(nèi)復合暴露對斑馬魚細胞凋亡損傷呈現(xiàn)協(xié)同趨勢。Liu等[39]發(fā)現(xiàn)PFOS能夠誘導Bax的基因在斑馬魚胚胎中表達。Wang等[36]證明Nano-ZnO誘導Bax基因在星形膠質(zhì)細胞中表達。Ahamed等人報道了Nano-ZnO通過p53,Bax和Bcl-2路徑誘導細胞凋亡[40]。以上研究結(jié)果與本實驗結(jié)果類似。

        通過ICP-MC結(jié)果可以看出,在0.8+25 mg·L-1和1.6+50 mg·L-1復合暴露組中Zn2+的濃度大于單獨暴露組,而0.4+12.5 mg·L-1復合暴露組中的Zn2+濃度小于單獨暴露組。經(jīng)OA/SPE-MS/MS分析結(jié)果可知,在復合暴露組中PFOS的濃度小于單獨暴露組。Wang等[41]報道稱Nano-ZnO在溶液中可以釋放Zn2+, Harada等[42]年發(fā)現(xiàn)PFOS在溶液中可以釋放磺酸集團。PFOS和Nano-ZnO在溶液中的共同作用可以解釋為Zn2+和磺酸集團的相互作用。根據(jù)PFOS和Nano-ZnO結(jié)構(gòu)的特點我們推測,復合毒性潛在的原因和機制假設如下:表面活性劑PFOS能夠破壞脂質(zhì)結(jié)構(gòu),破壞細胞膜[43],進而使納米粒子更易穿透細胞膜造成生物體損害。張陽等[44]發(fā)現(xiàn)Nano-ZnO可以在斑馬魚成魚體內(nèi)富集,排除較為緩慢且清除率較低。Desagher和Martinou[45]發(fā)現(xiàn)線粒體膜電位介導通路參與ZnO-NPs誘導細胞凋亡,這些觀點進一步研究證明了我們的推測。Anselmo等[46]發(fā)現(xiàn)PFOS和一些納米粒子損傷機體的一種多異型生物質(zhì)阻力機制,這種機制的破壞可以導致細胞內(nèi)其他化合物含量的增多,增加細胞毒性。以這些理論和實驗基礎,我們認為PFOS和Nano-ZnO在試驗濃度范圍內(nèi)的聯(lián)合毒性作用類型為協(xié)同作用。

        本文研究了PFOS和Nano-ZnO復合后短期暴露對斑馬魚胚胎氧化應激和細胞損傷影響,為環(huán)境中復合污染物的毒性評價提供了依據(jù),但二者復合后在生物體內(nèi)的運輸和代謝機理尚不清楚,還有待進一步的研究。

        [1] Hood E. Nanotechnology: Think before we leap [J]. Environmental Health Perspectives, 2004, 112(3): A740-A749

        [2] Johnston B D, Scown T M, Moger J, et al. Bioavailability of nanoscale metal oxides TiO2, CeO2, and ZnO to Fish [J]. Environmental Science & Technology, 2010, 44(3): 1144-1151

        [3] Navarro E, Baun A, Behra R, et al. Environmental behavior and ecotoxicity of engineered nanoparticles to algae, plants, and fungi [J]. Ecotoxicology (London, England), 2008, 17(5): 372-386

        [4] Gojova A, Guo B, Kotar S, et al. Induction of inflammation in vascular endothelial cells by metal oxide nanoparticles: effect of particle composition [J]. Environmental Health Perspectives, 2007, 115(3): 403-409

        [5] Sharma V, Anderson D, Dhawan A. Zinc oxide nanoparticles induce oxidative DNA damage and ROS-triggered mitochondria mediated apoptosis in human liver cells (HepG2) [J]. Apoptosis: An International Journal On Programmed Cell Death, 2012, 17(8): 852-870

        [6] 劉慧, 朱方偉, 尹穎, 等. 納米ZnO對鯽魚肝臟的毒性[J]. 生態(tài)毒理學報, 2010, 5(5): 698-703

        Liu H, Zhu F W, Yi Y, et al. Toxicity of nano-ZnO on liver of goldfish (Carassius auratus) [J]. Asian Journal of Ecotoxicology, 2010, 5(5): 698-703 (in Chinese)

        [7] Canas J E, Qi B, Li S, et al. Acute and reproductive toxicity of nano-sized metal oxides (ZnO and TiO2) to earthworms (Eiseniafetida) [J]. Journal of Environmental Monitoring, 2011, 13(12): 3351-3357

        [8] Ai D, Alarifi S, Kumar S, et al. Oxidative stress and genotoxic effect of zinc oxide nanoparticles in freshwater snail Lymnaea luteola L[J]. Aquatic Toxicology, 2012, 15(124-125): 83-90

        [9] Key B D, Howell R D, Criddle C S. Fluorinated organics in the biosphere[J]. Environmental Science &Technology, 1997, 31(9): 2445-2454

        [10] Hansen K J, Johnson H O, Eldridge J S, et al. Quantitative characterization of trace levels of PFOS and PFOA in the Tennessee River [J]. Environmental Science &Technology, 2002, 36(8): 1681-1685

        [11] Kannan K, Tao L, Sinclair E, et al. Perfluorinated compounds in aquatic organisms at various trophic levels in a Great Lakes food chain [J]. Archives of Environmental Contamination and Toxicology, 2005, 48(4): 559-566

        [12] Du Y B, Shi X J, Liu C S, et al. Chronic effects of water-borne PFOS exposure on growth, survival and hepatotoxicity in zebrafish: A partial life-cycle test [J]. Chemosphere, 2009, 74(5): 723-729

        [13] 劉曉暉, 胡宏, 李雙月, 等. 全氟辛烷磺酸神經(jīng)發(fā)育毒性機制研究進展[J]. 生態(tài)毒理學報, 2013, 8(5): 643-649

        Liu X H, Hu H, Li S Y, et al. Research progress on mechanisms in the developmental neurotoxicity of PFOS [J]. Asian Journal of Ecotoxicology, 2013, 8(5): 643-649 (in Chinese)

        [14] Kim W K, Lee S K, Jung J. Integrated assessment of biomarker responses in common carp (Cyprinus carpio) exposed to perfluorinated organic compounds[J]. Journalof Hazardous Materials, 2010 180(1-3): 395-400

        [15] Zheng X M, Liu H L, Shi W, et al. Effects of perfluorinated compounds on development of zebrafish embryos [J]. Environmental Science and Pollution Research International, 2011, 19(7): 2498-2505

        [16] Keiter S, Baumann L, Farber H, et al. Long-term effects of a binary mixture of perfluorooctane sulfonate (PFOS) and bisphenol A (BPA) in zebrafish (Danio rerio)[J]. Aquatic Toxicology, 2012, 118: 116-129

        [17] 端正花, 王勛功, 王華, 等. 全氟辛烷羧酸(PFOA)與全氟辛烷磺酸(PFOS)的細胞毒性[J]. 生態(tài)毒理學報, 2014, 9(2): 353-357

        Duan Z H, Wang X G, Wang H, et al. The cytotoxic effect of PFOA and PFOS [J]. Asian Journal of Ecotoxicology, 2014, 9(2): 353-357 (in Chinese)

        [18] 鄭振華, 周培疆, 吳振斌. 復合污染研究的新進展[J]. 應用生態(tài)學報, 2001, 12(3): 469-473

        [19] Zhang X Z, Sun H W, Zhang Z Y, et al. Enhanced bioaccumulation of cadmium in carp in the presence of titanium dioxide nanoparticles [J]. Chemosphere, 2007, 67(1): 160-166

        [20] Kim S, Ji K, Lee S, et al. Perfluorooctane sulfonic acid exposure increases cadmium toxicity in early life stage of zebrafish (Danio rerio) [J]. Environmental Toxicology and Chemistry, 2011, 30(4): 870-877

        [21] Nel A, Xia T, Madler L, et al. Toxic potential of materials at the nanolevel [J]. Science, 2006, 311: 622-627

        [22] Fan T J, Han L H, Cong R S, et al. Caspase family proteases and apoptosis [J]. ActaBiochimica ET Biophysica Sinica, 2005, 37: 719-727

        [23] Langheinrich U, Hennen E, Stott G, et al. Zebrafish as a model organism for the identification and characterization of drugs and genes affecting p53 signaling [J]. Current Biology, 2002, 12: 2023-2028

        [24] Sheikh M S, Fornace, A J. Role of p53 family members in apoptosis[J]. Journal of Cellular Physiology, 2000, 182: 171-181

        [25] Gross A, McDonnell J M, Korsmeyer S J. BCL-2 family members and the mitochondria in apoptosis [J]. Genes Development, 1999, 13: 1899-1911

        [26] 國家環(huán)境保護局. 水生生物監(jiān)測手冊[M]. 南京:東南大學出版社, 1993

        [27] Skutlarek D, Exner M, Farber H. Perfluorinatedsurfactants in surface and drinking water[J]. Environmental Science and Pollution Research, 2006, 13: 299-307

        [28] Hao L H, Chen L. Oxidative stress responses in different organs of carp (Cyprinuscarpio) with exposure to ZnO nanoparticles [J]. Ecotoxicology and Environmental Safety, 2012, 80: 103-110

        [29] Lin C T, Tseng W C, Hsiao N W, et al. Characterization, molecular modelling and developmental expression of zebrafish manganese superoxide dismutase [J]. Fish & Shellfish Immunology, 2009, 27(2): 318-324

        [30] Stanic B, Andric N, Zoric S, et al. Assessing pollution in the Danube River near Novi Sad (Serbia) using several biomarkers in sterlet (Acipenserruthenus L. )[J]. Ecotoxicology and Environmental Safety, 2006, 65(3): 395-402

        [31] 李霞, 閻秀峰, 于濤. 水分脅迫對黃檗幼苗保護酶活性及脂質(zhì)過氧化作用的影響 [J]. 應用生態(tài)學報, 2005, (12): 2353-2356

        [32] Zhao X, Wang S, Wu Y, et al. Acute ZnO nanoparticles exposure induces developmental toxicity, oxidative stress and DNA damage in embryo-larval zebrafish [J]. Aquatic Toxicology, 2013, 136-137: 49-59

        [33] Xiong D W, Fang T, Yu L P, et al. Effects of nano-scale TiO2, ZnO and their bulk counterparts on zebrafish: Acute toxicity, oxidative stress and oxidative damage [J]. Science of the Total Environmental, 2011, 409: 1444-1452

        [34] Chen T, Zhang L, Yue J Q, et al. Prenatal PFOS exposure induces oxidative stress and apoptosis in the lung of rat off-spring [J]. Reproductive Toxicology, 2012, 33: 538-545

        [35] Zou H, Yang R M, Hao J S, et al. Regulation of the Apaf-1/Caspase-9 apoptosome by caspase-3 and XIAP [J]. Journal of Biological Chemistry, 2003, 278(10): 8091-8098

        [36] Wang J, Deng X, Zhang F, et al. ZnO nanoparticle-induced oxidative stress triggers apoptosis by activating JNK signaling pathway in cultured primary astrocytes [J]. Nanoscale Research Letters, 2014, 9(1): 117

        [37] Langheinrich U, Hennen E, Stott G, et al. Zebrafish as a model organis m for the identification and characterization of drugs and genes affecting p53 signaling [J]. Current Biology, 2002, 12(23): 2023-2028

        [38] Zhou J H, Ye J, Zhao X J, et al. JWA is required for arsenic trioxide induced apoptosis in HeLa and MCF-7 cells via reactive oxygen species and mitochondria linked signal pathway [J]. Toxicology and Applied Pharmacology, 2008, 230(1): 33-40

        [39] Liu C S, Yu K, Shi X J, et al. Induction of oxidative stress and apoptosis by PFOS and PFOA in primary cultured hepatocytes of freshwater tilapia (Oreochromis niloticus) [J]. Aquatic Toxicology, 2007, 82: 135-143

        [40] Ahamed M, Akhtar M J, Raja M, et al. ZnO nanorod-induced apoptosis in human alveolar adenocarcinoma cells via p53, survivin and bax/bcl-2 pathways: role of oxidative stress[J]. Nanomedicine-Nanotechnology Biology and Medicine, 2011, 7: 904-913

        [41] Wang D L, Lin Z F, Yao Z F, et al. Surfactants present complex joint effects on the toxicities of metal oxide nanoparticles [J]. Chemosphere, 2014, 108: 70-75

        [42] Harada K, Xu F, Ono K, et al. Effects of PFOS and PFOA on L-type Ca2+currents in guinea-pig ventricular myocytes[J]. Biochemical and Biophsical Research Communication, 2005, 329: 487-494

        [43] Ahn C Y, Joung S H, Jeon J W, et al. Selective control of cyanobacteria by surfactin-containing culture broth of Bacillus subtilis C1 [J]. Biotechnology Letters, 2003, 25: 1137-1142

        [44] 張陽, 周亞, 陳繼淼, 等. 納米ZnO和納米CuO在斑馬魚體內(nèi)的富集與清除[J]. 生態(tài)毒理學報, 2014, 9(6): 1068-1075

        Zhang Y, Zhou Y, Chen J M, et al. Accumulation and Elimination of Nano-ZnO and Nano-CuO in Danio rerio[J]. AsianJournal of Ecotoxicology, 2014, 9(6): 1068-1075

        [45] Desagher S, Martinou J C. Mitochondria as the central control point of apoptosis [J]. Trends Cell Biology, 2000, 10: 369-377

        [46] Anselmo H M, van den Berg J H, Rietjens I M. Inhibition of cellular efflux pumps involved in multi xenobiotic resistance (MXR) in echinoid larvae as a possible mode of action for increased ecotoxicological risk of mixtures [J]. Ecotoxicology, 2012, 21: 2276-2287

        PFOS and ZnO Nanoparticles Induced Oxidative Stress and Apoptosis in Zebrafish (Daniorerio)

        Du Jia,Wang Shutao1, Liu Zheng1, You Hong1,2,*

        1. State Key Laboratory of Urban Water Resource and Environment, Harbin Institute of Technology, 150090 2. School of Marine Science and Technology, Harbin Institute of Technology at Weihai, Weihai64209

        Received 21 November 2014 accepted 4 January 2015

        Oxidative stress and apoptosis to zebrafish (Danio rerio) embryos induced by perfluorooctanesul phonic acid potassium salt, (PFOS) and ZnO nanoparticles (Nano-ZnO) were investigated in this study. The embryos were exposed to PFOS (0、0.4、0.8 and 1.6 mg·L-1) single solutions, Nano-ZnO (0、12.5、25 and 50 mg·L-1) single solutions and PFOS plus Nano-ZnO (0、0.4+12.5、0.8+25 and 1.6+50 mg·L-1) mixture solutions for 144 hour post-fertilisation (hpf). Activities of superoxide dismutase (SOD), catalase (CAT), glutathione peroxidase (Gpx) and malondialdehyde(MDA) contents were measured in zebrafish after exposure for 144 hpf. At the same time, the levels of gene expression related to apoptosis (Bax, p53 and Bcl-2) were also measured. The results demonstrated that both PFOS and Nano-ZnO single- and co-exposure induced oxidative stress and apoptosis. In addition, PFOS plus Nano-ZnO exposure caused more serious oxidative stress and apoptosis than PFOS and Nano-ZnO single-exposure at above exposure concentrations. Several apoptosis pathways related genes such as Bax and p53 were significantly up-regulated in PFOS and Nano-ZnO co-exposure groups. Anti-apoptotic gene such as Bcl-2 was significantly down-regulated in PFOS and Nano-ZnO co-exposure groups. Under the toxicity ratio of 1:1, Nano-ZnO increased the toxicity of PFOS on oxidative stress and apoptosis in zebrafish embryos at the experimental concentrations.

        ZnO nanoparticles (Nano-ZnO); perfluorooctanesul phonic acid potassium salt (PFOS); oxidative stress; apoptosis; joint toxicity

        哈爾濱工業(yè)大學城市水資源與水環(huán)境國家重點實驗室導向類自主課題(2013DX09)

        杜佳(1986-),女,博士,研究方向為環(huán)境毒理學,E-mail: dujia532158064@163.com

        *通訊作者(Corresponding author), E-mail: youhong@hit.edu.cn

        10.7524/AJE.1673-5897-20141121001

        2014-11-21 錄用日期:2015-01-04

        1673-5897(2015)3-238-10

        X171.5

        A

        尤宏(1961-),男,黑龍江省哈爾濱市人,教授,博士,工業(yè)廢水深度處理與回用技術(shù);近五年來主持和參加包括國家“973計劃”課題、國家“863計劃”課題、國家科技重大專項課題、省科技攻關項目、國際合作項目課題等10余項。獲得黑龍江省科技進步二等獎、環(huán)境保護部環(huán)??萍级泉劦仁〔考壙蒲歇?項。發(fā)表論文60余篇,獲得授權(quán)專利5件,軟件著作權(quán)2件。

        杜佳,王樹濤,劉征,等. 全氟辛烷磺酸鉀(PFOS)和納米氧化鋅(Nano-ZnO)單獨與聯(lián)合暴露對斑馬魚胚胎的氧化損傷和細胞凋亡的影響[J]. 生態(tài)毒理學報,2015, 10(3): 238-247

        Du J, Wang S T, Liu Z, et al. PFOS and ZnO nanoparticles induced oxidative Stress and apoptosis in zebrafish (Danio rerio) [J]. Asian Journal of Ecotoxicology, 2015, 10(3): 238-247 (in Chinese)

        猜你喜歡
        氧化應激
        熊果酸減輕Aβ25-35誘導的神經(jīng)細胞氧化應激和細胞凋亡
        中成藥(2021年5期)2021-07-21 08:39:04
        基于炎癥-氧化應激角度探討中藥對新型冠狀病毒肺炎的干預作用
        戊己散對腹腔注射甲氨蝶呤大鼠氧化應激及免疫狀態(tài)的影響
        中成藥(2018年6期)2018-07-11 03:01:24
        基于氧化應激探討參附注射液延緩ApoE-/-小鼠動脈粥樣硬化的作用及機制
        中成藥(2018年5期)2018-06-06 03:11:43
        植物化學物質(zhì)通過Nrf2及其相關蛋白防護/修復氧化應激損傷研究進展
        氧化應激與糖尿病視網(wǎng)膜病變
        尿酸對人肝細胞功能及氧化應激的影響
        DNA雙加氧酶TET2在老年癡呆動物模型腦組織中的表達及其對氧化應激中神經(jīng)元的保護作用
        從六經(jīng)辨證之三陰病干預糖調(diào)節(jié)受損大鼠氧化應激的實驗研究
        乙肝病毒S蛋白對人精子氧化應激的影響
        亚洲国产精品久久又爽av| 欧美中文字幕在线看| 国产在线精品亚洲视频在线 | 91美女片黄在线观看| 亚洲福利网站在线一区不卡| 日本饥渴人妻欲求不满| 亚洲av无码国产精品色午夜洪| 亚洲综合免费| 大岛优香中文av在线字幕| 亚洲最大水蜜桃在线观看| 中文字幕乱码熟女人妻水蜜桃| 亚洲黄色免费网站| 精品国产一区二区三广区| 不卡的av网站在线观看| 免费特级毛片| 精品18在线观看免费视频| 亚洲精品国产av成拍色拍| 五月av综合av国产av| 日韩成人无码一区二区三区| 女人被躁到高潮嗷嗷叫| 亚洲一区二区三区偷拍厕所| 又大又紧又粉嫩18p少妇| 五月天欧美精品在线观看| 国语对白三级在线观看| 国产性自爱拍偷在在线播放| 9lporm自拍视频区| 久久精品中文字幕久久| 丝袜美腿制服诱惑一区二区| 熟女少妇精品一区二区| 99国产超薄丝袜足j在线观看| 少妇裸淫交视频免费看| 国产亚洲成人av一区| 内射无码专区久久亚洲| 国产成人亚洲精品2020| 男女射精视频在线观看网站| 精品www日韩熟女人妻| 97人妻视频妓女网| 亚洲一本二区偷拍精品| 亚洲av无码专区在线观看成人| 免费网站国产| 天堂影院久久精品国产午夜18禁|