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        小鼠腹腔巨噬細(xì)胞不同分離方法的比較

        2015-03-02 06:43:58杜莉莉呂潤瀟于艷秋金玉楠
        關(guān)鍵詞:洗液灌洗腹腔

        杜莉莉,呂潤瀟,于艷秋,辛 娜,金玉楠

        (1.中國醫(yī)科大學(xué) 基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院 病理生理教研室,遼寧 沈陽110013;2. 第二軍醫(yī)大學(xué)2008 級臨床醫(yī)學(xué)8年制,上海200433;3.第二軍醫(yī)大學(xué)附屬長海醫(yī)院 脊柱外科,上海200433)

        巨噬細(xì)胞是機(jī)體免疫系統(tǒng)的重要細(xì)胞成分,具有抗感染、抗腫瘤和參與免疫應(yīng)答、免疫調(diào)節(jié)等生物學(xué)功能[1-2]。巨噬細(xì)胞來源于骨髓,廣泛分布于機(jī)體各種組織中,如肝、脾、骨髓、胸腺、胸腔、腹腔等。近年來關(guān)于巨噬細(xì)胞的研究越來越多,如何獲得數(shù)量充足、功能良好的巨噬細(xì)胞至關(guān)重要。小鼠價格便宜,其腹腔巨噬細(xì)胞多游離存在于腹水中易于獲得,因此,許多實驗室在進(jìn)行巨噬細(xì)胞研究時,往往選用小鼠腹腔巨噬細(xì)胞為研究對象。建立一種高效分離小鼠腹腔巨噬細(xì)胞的方法,是巨噬細(xì)胞研究工作者的首要任務(wù)。

        現(xiàn)有的小鼠腹腔巨噬細(xì)胞分離方法有兩類,一類為先向腹腔注入刺激物,再通過腹腔灌洗及貼壁培養(yǎng)獲得巨噬細(xì)胞。另一類為不經(jīng)刺激直接腹腔灌洗并貼壁培養(yǎng)。但兩種方法均有不足之處,前者收集到的細(xì)胞與腹腔內(nèi)未經(jīng)抗原刺激原始狀態(tài)的巨噬細(xì)胞有很大差異,而后者獲得的巨噬細(xì)胞數(shù)量較少。

        本實驗對現(xiàn)有方法加以改良,嘗試用一種新的簡便經(jīng)濟(jì)的方法分離小鼠腹腔巨噬細(xì)胞。并將新方法提取的巨噬細(xì)胞與原有方法提取的巨噬細(xì)胞相比較,從獲得細(xì)胞數(shù)量,形態(tài),遷移能力及分泌細(xì)胞因子能力等方面,篩選出一種更優(yōu)化的小鼠腹腔巨噬細(xì)胞分離方法,為巨噬細(xì)胞的體外研究提供實驗基礎(chǔ)。

        1 材料和方法

        1.1 實驗動物與儀器

        健康昆明小鼠,18 只,18 ~22 g,雌性,6 ~8 周。中國醫(yī)科大學(xué)實驗動物部提供。美國Thermo Fisher公司二氧化碳培養(yǎng)箱,日本Olympus 公司倒置顯微鏡及照相系統(tǒng),德國Sigma3K30 低溫高速離心機(jī),蘇州凈化設(shè)備廠超凈工作臺。

        1.2 試 劑

        DMEM 培養(yǎng)基購自美國Gibco 公司,臺盼藍(lán)染料購自美國Sigma 公司,LPS 購自美國Sigma 公司,胎牛血清購自美國Gibco 公司,PE 標(biāo)記的抗小鼠CD14 購自美國BioLegend 公司。

        1.3 實驗方法

        1.3.1 實驗分組:隨機(jī)將18 只小鼠分為3 組,每組6 只。5%淀粉肉湯組:5%淀粉肉湯,注射器注入小鼠腹腔,每次1 mL,每天1 次,注射3 d 后用5 mL 無血清DMEM 灌洗小鼠腹腔,重復(fù)灌洗1 次。無血清DMEM 組:直接用5 mL DMEM 液灌洗小鼠腹腔,重復(fù)灌洗1 次。75% 血清DMEM 組:將5 mL 75%DMEM 液注入小鼠腹腔,30 min 后回收液體并用5 mL 無血清DMEM 灌洗小鼠腹腔。

        1.3.2 5%淀粉肉湯制備:蒸餾水100 mL,牛肉膏0.3 g,蛋白胨1.0 g,氯化鈉0.5 g,可溶性淀粉5 g,加熱助溶,煮沸滅菌,4 ℃保存。

        1.3.3 小鼠腹腔灌洗:頸椎脫臼法處死小鼠,浸入75%酒精溶液5 min。取出小鼠,置于無菌操凈臺上,仰臥位固定小鼠,無菌條件下將小鼠皮膚剪一小口,眼科鑷子提起該處皮膚,雙手將皮膚沿著開口向上撕開,暴露腹膜,此時腹膜應(yīng)完整,向腹腔內(nèi)注入預(yù)冷的無血清DMEM 5 mL,輕柔小鼠腹部5 min后,用吸管反復(fù)沖洗腹膜腔后,回收灌洗液。

        1.3.4 貼壁純化培養(yǎng)巨噬細(xì)胞:將回收的灌洗液注入干凈的離心管中,1000 r/min 離心10 min,連續(xù)2次,棄上清液。細(xì)胞沉淀經(jīng)DMEM 培養(yǎng)液洗滌后,用10%血清DMEM 培養(yǎng)液重懸細(xì)胞,細(xì)胞懸液接種于6 cm 培養(yǎng)皿,置于37 ℃、5%CO2、飽和濕度的培養(yǎng)箱中靜置培養(yǎng),2 h 后,棄培養(yǎng)上清,用10%血清DMEM 培養(yǎng)液輕輕沖洗培養(yǎng)皿1 ~2 次,棄去未貼壁的細(xì)胞,獲得的貼壁細(xì)胞即為巨噬細(xì)胞。

        1.3.5 巨噬細(xì)胞形態(tài)觀察:細(xì)胞培養(yǎng)后每日用倒置顯微鏡觀察細(xì)胞形態(tài)。

        1.3.6 巨噬細(xì)胞純度檢測:細(xì)胞培養(yǎng)48 h 后,用0.25%胰酶消化,調(diào)整細(xì)胞濃度為1 ×106/mL,1000 r/min,離心5 min 棄上清。100 μL PBS 重懸細(xì)胞,再加入PBS 稀釋的50 μL PE 標(biāo)記的抗小鼠CD14 ,避光作用30 min,1000 r/min,離心5 min,棄上清液后,PBS 洗2 次,然后加入200 μL PBS 吹打混勻細(xì)胞,流式細(xì)胞儀檢測細(xì)胞表面CD14 表達(dá)水平。每組檢測重復(fù)3 次。

        1.3.7 巨噬細(xì)胞數(shù)量及存活率檢測:細(xì)胞培養(yǎng)48 h后,用0.25%胰酶消化,計數(shù)。統(tǒng)計每只小鼠腹腔中分離的巨噬細(xì)胞數(shù)。取細(xì)胞懸液0.5 mL,滴加等量0.4%臺盼藍(lán)染液置于Eppendorf 管中,混勻,取1滴染色細(xì)胞懸液加入細(xì)胞計數(shù)板中,顯微鏡下計數(shù)。

        1.3.8 巨噬細(xì)胞遷移能力檢測:用marker 筆在24孔培養(yǎng)板背側(cè)劃線,0.5 ~1 cm 一道,劃線橫穿孔,用0.25%胰酶消化巨噬細(xì)胞,調(diào)整細(xì)胞濃度后接種于24 孔板,5 ×104個/孔,每組3 個復(fù)孔,過夜。第2天用200 μL 槍頭垂直劃痕,PBS 洗3 次后換10%血清DMEM 培養(yǎng)液,置于37 ℃,5%CO2,飽和濕度的培養(yǎng)箱6 h、12 h 后顯微鏡下觀察細(xì)胞遷移距離。將巨噬細(xì)胞不同時間點的遷移距離與0 h 劃痕距離相比,計算巨噬細(xì)胞遷移指數(shù)。

        1.3.9 LPS 刺激巨噬細(xì)胞分泌細(xì)胞因子能力檢測:用0.25%胰酶消化巨噬細(xì)胞,調(diào)整細(xì)胞濃度2 ×105個/mL,取100 uL 細(xì)胞懸液接種于96 孔板,放入37℃,5%CO2、飽和濕度的培養(yǎng)箱,細(xì)胞貼壁后,每孔加入50 μL LPS(1 μg/mL),3 h 或6 h 后收集細(xì)胞上清,ELISA 檢測TNFα 和IL-1β(3 h)。ELISA 檢測IL-6(6 h)。

        1.4 統(tǒng)計學(xué)方法

        實驗數(shù)據(jù)用SPSS19.0 統(tǒng)計軟件處理,計量數(shù)據(jù)用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示,組間比較采用單因素方差分析,P <0.05 為差異有顯著性意義。

        2 結(jié) 果

        2.1 巨噬細(xì)胞形態(tài)觀察

        不同分離方法提取的巨噬細(xì)胞貼壁培養(yǎng)24 h 后顯微鏡下觀察,各組細(xì)胞形態(tài)相似,均呈圓形,橢圓形,梭形等。體積大,胞漿豐富,少量有偽足,見圖1。

        圖1 巨噬細(xì)胞形態(tài)觀察(×100)Fig 1 Observation of the morphology of macrophage(×100)

        2.2 巨噬細(xì)胞純度檢測

        流式細(xì)胞儀檢測各組細(xì)胞CD14 的表達(dá)情況,5%淀粉肉湯組為(82.40 ±2.45)%,無血清DMEM組為(84. 41 ± 1. 18)%,75% 血清DMEM 組為(81.32 ±2.73)%,各組間比較差異無顯著性意義,P >0.05。見圖2。

        圖2 巨噬細(xì)胞細(xì)胞CD14 表達(dá)情況Fig 2 The expression of CD14 of macrophage

        2.3 巨噬細(xì)胞數(shù)量及存活率檢測

        75%血清DMEM 組分離出的巨噬細(xì)胞數(shù)量,與其他兩組比較差異有顯著性意義,P <0.05。5%淀粉肉湯組分離的巨噬細(xì)胞數(shù)量多于無血清DMEM組,差異有顯著性意義,P <0.05。3 組的巨噬細(xì)胞存活率比較,差異無顯著性意義,P >0.05。見表1。

        2.4 巨噬細(xì)胞遷移能力檢測

        劃痕實驗6 h 后,75%血清DMEM 組巨噬細(xì)胞遷移距離遠(yuǎn),遷移指數(shù)明顯高于其他兩組,差異有顯著性意義,P <0.05。劃痕實驗12 h后,75%血清DMEM 組劃痕各區(qū)域均有巨噬細(xì)胞,遷移指數(shù)高于其他兩組,差異有顯著性意義,P <0.05。與無血清DMEM 組相比,5%淀粉肉湯組巨噬細(xì)胞遷移距離遠(yuǎn),遷移指數(shù)高,差異有顯著性意義,P <0.05。見圖3、表2。

        表1 巨噬細(xì)胞數(shù)量及存活率Tab 1 The number and survival rate of macrophage

        圖3 巨噬細(xì)胞遷移(×100)Fig 3 The migration of macrophage(×100)

        表2 巨噬細(xì)胞遷移指數(shù)Tab 2 Migration index of macrophage

        2.5 LPS 刺激巨噬細(xì)胞分泌細(xì)胞因子能力檢測

        75%血清DMEM 組分離的巨噬細(xì)胞經(jīng)LPS 刺激后,分泌TNFα,IL -1β,IL -6 明顯多于其他兩組,差異有顯著性意義,P <0.05。無血清DMEM 組與5%淀粉肉湯組中巨噬細(xì)胞分泌的TNFα,IL -6差異均無顯著性意義,P >0.05。無血清DMEM 組中巨噬細(xì)胞分泌IL-1β 多于5%淀粉肉湯組,差異有顯著性意義,P <0.05。見表3。

        表3 LPS 刺激巨噬細(xì)胞分泌細(xì)胞因子能力檢測Tab 3 The cytokines secretion ability of macrophage stimulated by LPS

        3 討 論

        巨噬細(xì)胞屬免疫細(xì)胞,在機(jī)體內(nèi)可抗感染、抗腫瘤、參與免疫應(yīng)答及免疫調(diào)節(jié),是研究細(xì)胞吞噬、細(xì)胞免疫和分子免疫學(xué)的重要對象。

        近年來有關(guān)巨噬細(xì)胞的研究越來越受到人們的關(guān)注。巨噬細(xì)胞的提取是體外研究巨噬細(xì)胞的前提。隨著體外分離培養(yǎng)細(xì)胞技術(shù)的發(fā)展,提取方法越來越多,提取的部位也不盡相同,如肺血管巨噬細(xì)胞、腎小球巨噬細(xì)胞,骨髓基質(zhì)巨噬細(xì)胞、腹腔巨噬細(xì)胞等。小鼠來源容易,價格便宜,腹腔腹水中有很多巨噬細(xì)胞存在,因此,小鼠腹腔巨噬細(xì)胞成為很好的巨噬細(xì)胞來源。

        從文獻(xiàn)可知,現(xiàn)有的小鼠腹腔巨噬細(xì)胞分離方法大致相似,灌洗腹腔后吸出含巨噬細(xì)胞的灌洗液,利用巨噬細(xì)胞貼壁生長的特點將其分離。但每種方法也各有差異。有研究者先注入腹腔巨噬細(xì)胞刺激劑(如淀粉肉湯、LPS 等),吸引大量的巨噬細(xì)胞進(jìn)入腹腔后再用灌洗液灌洗[3]。也有報道直接應(yīng)用灌洗液灌洗小鼠腹腔分離巨噬細(xì)胞[4]。前者雖能收集到大量的巨噬細(xì)胞,但由于經(jīng)過刺激,所獲得的巨噬細(xì)胞與體內(nèi)原始狀態(tài)的巨噬細(xì)胞差異較大,不適合做功能方面的研究。而直接灌洗所獲得的細(xì)胞雖然細(xì)胞狀態(tài)較好,但是數(shù)量有限。本實驗采用一種新的方法分離小鼠腹腔巨噬細(xì)胞,即將預(yù)冷的含75%血清的DMEM 液注入小鼠腹腔,按摩30 min 后回收液體并用無血清DMEM 灌洗,貼壁培養(yǎng)分離出其中的巨噬細(xì)胞。將此方法獲得的巨噬細(xì)胞與其他方法分離的巨噬細(xì)胞相比較,結(jié)果表明,不同方法分離的巨噬細(xì)胞在細(xì)胞形態(tài)及存活率等方面無明顯差異。流式細(xì)胞儀檢測巨噬細(xì)胞特異性表面標(biāo)記CD14[5-6],結(jié)果表明各組細(xì)胞CD14 的陽性率無明顯差異,即所提取巨噬細(xì)胞的純度無差異。但新方法獲得的巨噬細(xì)胞數(shù)量最多,且細(xì)胞遷移能力及分泌TNFα、IL-1β 及IL -6 的能力明顯增強(qiáng)。炎癥發(fā)生時,巨噬細(xì)胞遷移至炎癥局部并釋放炎癥因子,TNFα、IL-1β 及IL -6 在激活細(xì)胞因子級聯(lián)、趨化炎性細(xì)胞[7-8]、催化炎癥反應(yīng)進(jìn)程[9-10]等方面均起到了重要作用。由于新方法提取巨噬細(xì)胞的遷移能力及分泌炎癥因子的能力明顯增強(qiáng),因此更有利于體外對其功能的研究。

        本實驗所用新方法提取的巨噬細(xì)胞在數(shù)量及功能上都具有優(yōu)勢,該方法在操作時應(yīng)注意以下幾個關(guān)鍵點:(1)小鼠處死前一天應(yīng)空腹,饑餓至少8 h。(2)剪開小鼠腹部皮膚時,可先在下腹部剪一小口,再用手向上將皮膚撕開,這樣既能充分暴露腹膜,也能保證腹膜的完整,減少污染的機(jī)會。(3)腹腔注入的75% 血清DMEM 液提前4 ℃預(yù)冷效果好。(4)向腹腔注入灌洗液時,應(yīng)先用小鑷子將腹膜提起,在腹膜與腸道的空隙處橫向進(jìn)針,防止刺破腸道出血,避免提取細(xì)胞中混入紅細(xì)胞。(5)回吸灌洗液時,注射器針頭容易被腸系膜堵塞,可無菌條件下打開腹腔,利用無針頭的注射器,在腹腔最低處回吸灌洗液,這樣既可避免針眼被堵塞,也可迅速而又接近完全地回吸灌洗液。關(guān)于75%血清DMEM液促進(jìn)巨噬細(xì)胞向腹腔內(nèi)聚集的機(jī)制,本實驗并未涉及,需要在以后的實驗中進(jìn)一步探討。

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