劉亞秋 郭忠娣 胡 雨 高勝濤 王志堅(jiān)

(西南大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院, 淡水魚類資源與生殖發(fā)育教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室, 水產(chǎn)科學(xué)重慶市市級(jí)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,重慶 400715)

研究簡(jiǎn)報(bào)

大鱗副泥鰍仔稚魚生長(zhǎng)與消化酶活性變化

劉亞秋 郭忠娣 胡 雨 高勝濤 王志堅(jiān)

(西南大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院, 淡水魚類資源與生殖發(fā)育教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室, 水產(chǎn)科學(xué)重慶市市級(jí)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,重慶 400715)

大鱗副泥鰍(Paramisgurnus dabryanus)隸屬于鯉形目,鰍科, 花鰍亞科, 副泥鰍屬, 主要分布于長(zhǎng)江中下游[1]。其肉質(zhì)鮮美, 營(yíng)養(yǎng)豐富。近年來, 大鱗副泥鰍的市場(chǎng)需求量逐年上升, 人工養(yǎng)殖規(guī)模不斷擴(kuò)大, 對(duì)大鱗副泥鰍魚苗的需求量也逐漸增加。但是, 大鱗副泥鰍苗種階段的高死亡率,成為了規(guī)?；斯ど唐肤~養(yǎng)殖生產(chǎn)的巨大阻礙。掌握大鱗副泥鰍仔稚魚發(fā)育過程中攝食和消化的變化規(guī)律, 對(duì)于其苗種培育十分必要。消化酶活力是衡量仔稚魚營(yíng)養(yǎng)狀況的重要的指標(biāo)[2—4]。目前, 有關(guān)海水魚類消化酶發(fā)育的研究較多[5—7], 而有關(guān)淡水魚類的相關(guān)研究相對(duì)較少。大鱗副泥鰍仔稚魚發(fā)育過程中消化酶活性變化的研究還沒有報(bào)道。本研究探究了仔稚魚的生長(zhǎng)過程和主要消化酶活性變化過程, 為大鱗副泥鰍苗種培育技術(shù)開發(fā)提供理論依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 實(shí)驗(yàn)魚

大鱗副泥鰍初孵仔魚由重慶市墊江水產(chǎn)站提供, 所獲仔魚均由同一批受精卵于4月20日孵化出膜, 飼養(yǎng)50d, 于6月10日結(jié)束, 魚苗飼養(yǎng)于容積100 L的3個(gè)循環(huán)水族缸內(nèi), 每個(gè)水族缸內(nèi)飼養(yǎng)2000尾。5 DAH (日齡, Day after hatching)仔魚開始投喂豐年蟲(天津市丹陽(yáng)水產(chǎn)科技有限公司), 10 DAH之后投喂混合餌食(豐年蟲, 微顆粒S1飼料)20 DAH后全部投喂微顆粒S1飼料(山東升索漁業(yè)飼料研究中心), 投喂之前清除污物。飼養(yǎng)期間每天飽食投喂4次, 投喂時(shí)間為7:00、12:00、17:00和22:00。

1.2 飼養(yǎng)條件

飼養(yǎng)期間, 每天 8:00、14:00和 20:00測(cè)量水溫取平均值, 循環(huán)水族缸水溫變化范圍為 20.5—25.5℃, 循環(huán)水族缸保持24h充氧, 溶氧保持在(7.21±0.63) mg/L。

1.3 樣品采集

全長(zhǎng)與體重測(cè)量時(shí)間安排為1、2、3、4、5、7、9、10、12、15、20、25、30、35、40、45和50 DAH(孵化當(dāng)日記為 0 DAH), 并選取 1、2、3、4、5、7、9、12、15、20、25、30和45 DAH樣品用于測(cè)量消化酶活性測(cè)定。為了準(zhǔn)確測(cè)量魚體內(nèi)消化酶活性, 實(shí)驗(yàn)在中午 12:00投喂完以后2h取樣, 從3個(gè)水族缸中隨機(jī)撈取魚苗分別放入裝有清水的不同燒杯中, 1h后撈出, 各取10尾測(cè)量全長(zhǎng), 稱總體重。稱量過程中樣本置于冰上, 以免消化酶失活。20 DAH之前樣品取全魚, 20 DAH開始的樣品去除頭部和尾部, 僅保留軀干。樣品立即置于–80℃超低溫冰箱保存, 用于進(jìn)一步消化酶測(cè)定。

1.4 特定生長(zhǎng)率的測(cè)定

根據(jù)樣品總質(zhì)量計(jì)算個(gè)體的平均質(zhì)量。特定生長(zhǎng)率的計(jì)算公式: SGR=100×(lnFBW–lnIBW)/T, 其中FBW為個(gè)體終末體量(g), IBW為個(gè)體初始體重(g), T為時(shí)間(d)。

1.5 可溶性蛋白含量和消化酶活性的測(cè)定

從冰箱中取出待測(cè)樣品, 置于冰上解凍。解凍完成后將樣品稱重, 按質(zhì)量 ∶體積為 1∶4加入勻漿稀釋液, 以勻漿器進(jìn)行勻漿。所得勻漿液用低溫超速離心機(jī) 4℃, 3000 r/min轉(zhuǎn)速離心20min后取上清液用于消化酶活力測(cè)定。實(shí)驗(yàn)中的消化酶及可溶性蛋白均使用南京建成公司生產(chǎn)的試劑盒檢測(cè)。在pH 8.0, 37℃條件下, 每毫克蛋白質(zhì)中含有的胰蛋白酶每分鐘使吸光度變化0.003定義為1個(gè)胰蛋白酶活力單位。在 37℃條件下, 每克組織蛋白在反應(yīng)體系中與底物反應(yīng)1min, 每消耗1 μmol底物定義為1個(gè)脂肪酶活力單位。組織中每毫克蛋白在 37℃與底物作用30min, 水解10 mg淀粉定義為1個(gè)淀粉酶活力單位。每克組織蛋白在37℃與基質(zhì)作用15min產(chǎn)生1 mg酚定義為1個(gè)堿性磷酸酶活力單位。實(shí)驗(yàn)中測(cè)定酶的全活力表示為1個(gè)個(gè)體所含有的酶活力單位的量(U/larva); 酶的比活力表示為 1 mg可溶性蛋白所含有的酶活力單位的量(U/mg protein)。本實(shí)驗(yàn)使用全波長(zhǎng)酶標(biāo)儀(Thermo)和紫外分光光度計(jì)(UV-2450)測(cè)定吸光度。

1.6 數(shù)據(jù)分析

采用單因子方差分析(ANOVA)檢驗(yàn)不同測(cè)定日期間可溶性蛋白含量和各消化酶活性差異顯著性。如差異顯著,則采用多重比較方法比較平均數(shù)之間的差異。顯著性水平為0.05。數(shù)據(jù)分析采用SPSS 17.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行。實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)均用平均值±標(biāo)準(zhǔn)差(means± SD)表示。

2 結(jié)果

2.1 生長(zhǎng)以及投喂?fàn)顩r

大鱗副泥鰍仔稚魚經(jīng)過 50d飼喂后, 其生長(zhǎng)情況如圖1所示。體重由0.70 mg增至998 mg。特定生長(zhǎng)率為14.52%, 全長(zhǎng)由3.25 mm增至55.24 mm。在發(fā)育過程中,全長(zhǎng)和體重分別呈線性和指數(shù)形式增長(zhǎng), 擬合方程分別為: y=1.1129x(R2=0.9914)和y= 0.0014e0.1536x(R2=0.9244)。

2.2 可溶性蛋白含量

大鱗副泥鰍仔稚魚的可溶性蛋白含量的變化情況如圖2所示, 在1—3 DAH, 可溶性蛋白含量下降, 并3 DAH時(shí)到達(dá)最小值(0.16±0.01) mg/mL。5 DAH后, 可溶性蛋白質(zhì)含量快速上升, 15 DAH后顯著下降, 20 DAH后蛋白質(zhì)含量逐漸增加, 45 DAH時(shí)達(dá)到(1.58±0.05) mg/mL。

2.3 消化酶的全活力

大鱗副泥鰍仔稚魚消化酶全活力的變化如圖3所示。初孵仔魚均可檢測(cè)到淀粉酶、脂肪酶、胰蛋白酶以及堿性磷酸酶活性。仔魚淀粉酶全活力在1—15 DAH緩慢上升, 在15 DAH后快速上升, 30 DAH后趨于穩(wěn)定。脂肪酶全活力在1—9 DAH變化不顯著(P＞0.05), 9—15 DAH緩慢上升, 15 DAH 后顯著上升(P＜0.05), 45 DAH 達(dá)到(0.40±0.05) U/larva。胰蛋白酶全活力在1—5 DAH無顯著變化(P＞0.05), 5 DAH后緩慢上升, 15 DAH后顯著升高(P＜0.05), 30 DAH增長(zhǎng)速度變慢, 漸趨于穩(wěn)定。堿性磷酸酶全活力從1 DAH至15 DAH逐漸增加, 到20 DAH顯著上升(P＜0.05)。到30 DAH以后上升速度逐漸變慢。

2.4 消化酶比活力

圖1 大鱗副泥鰍仔稚魚個(gè)體全長(zhǎng)和體重隨日齡變化Fig. 1 Total length and body weight of Paramisgurnus dabryanuslarvae and juveniles during the experiment

圖2 大鱗副泥鰍仔稚魚可溶性蛋白含量隨日齡變化曲線Fig. 2 Fluctuation of souble protein content of Paramisgurnus dabryanus larvae and juveniles during the experiment

圖3 大鱗副泥鰍仔稚魚發(fā)育過程中消化酶全活力變化曲線Fig. 3 Fluctuations of total activities of digestive enzymes for Paramisgurnus dabryanus larvae and juveniles during the experiment

大鱗副泥鰍仔稚魚發(fā)育過程中消化酶比活力變化曲線如圖4所示。淀粉酶比活力1—5 DAH間快速上升, 5 DAH達(dá)到峰值(2.65±0.09) U/mg protein。隨后淀粉酶比活力顯著下降(P＜0.05), 到 15 DAH, 淀粉酶比活力下降至(0.87±0.04) U/mg protein。20 DAH淀粉酶比活力小幅上升(1.33±0.02) U/mg protein, 隨后又緩慢下降, 30 DAH后趨于穩(wěn)定。脂肪酶比活力在5 DAH和20 DAH有兩個(gè)明顯的峰值分別為(0.32±0.02)和(0.84±0.13) U/mg protein,分別是仔魚卵黃囊耗盡, 由混合營(yíng)養(yǎng)期向外源性營(yíng)養(yǎng)期轉(zhuǎn)變以及仔魚向稚魚轉(zhuǎn)變關(guān)鍵點(diǎn)。5—15 DAH比活力呈現(xiàn)一定的波動(dòng), 并在 9 DAH出現(xiàn)一個(gè)最小值(0.13±0.02) U/mg protein。20 DAH之后比活力顯著下降(P＜0.05), 到25 DAH趨于穩(wěn)定。胰蛋白酶比活力1—7 DAH間快速升高, 7 DAH達(dá)到最大值(78.97±8.09) U/mg protein, 隨后顯著下降(P＜0.05), 到15 DAH降至最低點(diǎn)(10.12±0.90) U/mg protein; 25 DAH后, 比活力逐漸趨于平穩(wěn)。堿性磷酸酶比活力從2 DAH開始顯著上升(P＜0.05), 在5 DAH達(dá)到最大值(0.78±0.05) U/mg protein, 之后迅速降低, 15 DAH降至最低值(0.22±0.06) U/mg protein, 20 DAH到另一個(gè)峰值(0.36±0.04) U/mg protein, 到25 DAH, 比活力趨于穩(wěn)定狀態(tài)。

3 討論

在本實(shí)驗(yàn)(21.5±1.50)℃條件下, 大鱗副泥鰍仔稚魚的生長(zhǎng)較梁秩 燊等[8]報(bào)道要慢, 可能是因?yàn)楸緦?shí)驗(yàn)中養(yǎng)殖水溫較低的原因所致(后者實(shí)驗(yàn)溫度為25℃以上)。仔魚發(fā)育到出膜后5 DAH開始投喂豐年蟲, 并能在體視顯微鏡下檢測(cè)到消化管中豐年蟲的存在?？扇苄缘鞍缀吭? DAH降至最低, 5 DAH后開始上升。1—3 DAH, 仔魚尚未開口, 主要由卵黃囊里的營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)為其生長(zhǎng)發(fā)育提供能量, 隨著卵黃蛋白不斷消耗, 總蛋白含量呈下降趨勢(shì)。5 DAH開始投喂, 仔魚蛋白含量開始明顯上升。因此, 可溶性蛋白含量變化過程與仔稚魚魚營(yíng)養(yǎng)方式轉(zhuǎn)換過程相關(guān)。

本研究大鱗副泥鰍1 DAH仔魚中檢測(cè)出淀粉酶, 胰蛋白酶, 脂肪酶, 堿性磷酸酶的活性。其他一些淡水和海水魚類, 例如塞內(nèi)加爾鰨( Solea senegalensis)[9]、細(xì)點(diǎn)牙鲆 (Dentex dentex)[7]、 斑 帶 副 鱸 (Paralabrax maculatofasciatus)[10]、黃尾(Seriola lalandi)[11]、胭脂魚(Myxocyprinus asiaticus)[12]、瓦氏黃顙魚(Pelteobagrus vachelli)[13]等, 在開口前也可以檢測(cè)到消化酶的活性。這表明消化酶的發(fā)生并不是外源食物的誘導(dǎo), 可能是受到魚類自身基因的調(diào)控[7, 10, 14, 15]。

大鱗副泥鰍仔魚消化酶全活力和比活力表現(xiàn)出完全不同的變化模式, 全活力的上升趨勢(shì), 而比活力呈先上升后下降的變化趨勢(shì), 這與仔魚體內(nèi)可溶性蛋白的累積有關(guān)[9]。在實(shí)驗(yàn)中, 5 DAH初次投喂后, 胰蛋白酶活力顯著上升, 并在7 DAH達(dá)到最大值。這說明外源食物對(duì)于胰蛋白酶分泌起到了一定刺激作用[16]。7—15 DAH胰蛋白酶活力顯著下降, 這一方面是由于大鱗副泥鰍體內(nèi)的可溶性蛋白的累積[5], 另一方面是由于消化器官尚未發(fā)育完全。在仔魚開始攝食后, 消化酶活性主要受到消化器官發(fā)育的影響。在20 DAH達(dá)到峰值后逐漸下降, 25 DAH后趨于穩(wěn)定。20 DAH是大鱗副泥鰍仔魚向稚魚轉(zhuǎn)變的關(guān)鍵點(diǎn)。胰蛋白酶的全活力在此期間快速增加。證明了在這一時(shí)期仔魚消化體系更加完善。

圖4 大鱗副泥鰍仔稚魚發(fā)育過程中消化酶比活力變化曲線Fig. 4 Fluctuations of specific activities of digestive enzymes for Paramisgurnus dabryanus larvae and juveniles during the experiment

有學(xué)者研究表明早期仔魚體內(nèi)存在脂酶和磷脂酶 A2兩種不同類型的脂肪酶。磷脂酶 A2可被磷脂激活, 而仔魚的卵黃囊富含磷脂, 脂酶能被三酸甘油酯激活, 它的活性與外源食物中脂肪消化密切相關(guān)[17, 18]。初次攝食后脂肪酶比活力顯著下降是這兩種脂肪酶相互轉(zhuǎn)變引起的[5, 10]。5—15 DAH脂肪酶比活力呈現(xiàn)一定的波動(dòng)變化后開始顯著上升, 這是由于胰腺外分泌功能以及利用食物中脂肪能力增強(qiáng)所致[2]。20 DAH之后顯著下降后趨于穩(wěn)定。這可能是魚體自身對(duì)于食物攝入量的變化和可溶性蛋白沉積所致[19]。

仔魚在開口攝食之前, 淀粉酶已具有較高的比活力。這與卵黃囊中含有較豐富的糖原有關(guān)。大鱗副泥鰍淀粉酶比活力的兩個(gè)峰值分別出現(xiàn)在內(nèi)源向外源性營(yíng)養(yǎng)轉(zhuǎn)變期和仔魚向稚魚的轉(zhuǎn)變期[8]。淀粉酶比活力在5 DAH后顯著下降, 是由于仔魚腸道上皮細(xì)胞增加, 仔魚對(duì)蛋白質(zhì)和脂肪的利用能力增強(qiáng), 而對(duì)糖類的利用能力減弱。20 DAH后停止投喂豐年蟲, 全部投喂糖類含量相對(duì)較低的飼料可能是導(dǎo)致淀粉酶比活力的下降的原因[20]。也有學(xué)者認(rèn)為在仔魚消化系統(tǒng)的發(fā)育過程中會(huì)出現(xiàn)淀粉酶分泌功能減弱的現(xiàn)象[21, 22]。

堿性磷酸酶是一類單酯磷酸水解酶, 主要存在于魚類前腸上皮細(xì)胞的淺部和紋狀緣上, 體外的堿性磷酸酶在堿性條件下起催化無機(jī)和有機(jī)磷酸酯水解的作用[5]。并有多數(shù)學(xué)者提出, 將堿性磷酸酶活性顯著上升作為仔魚腸道功能發(fā)育完全的標(biāo)志[2, 5, 21]。大鱗副泥鰍初孵仔魚就檢測(cè)到活性, 這種現(xiàn)象在其他多種魚類中也有報(bào)道[9, 10]。仔魚在2—5 DAH顯著上升, 表明了大鱗副泥鰍仔魚腸道消化功能在這個(gè)階段的快速發(fā)育。15—20 DAH 堿性磷酸酶比活力顯著性上升, 提示這個(gè)期間腸細(xì)胞逐漸成熟,腸道消化功能逐漸完善。

4 結(jié)論

大鱗副泥鰍仔稚魚在發(fā)育過程中, 消化酶的活性隨仔魚消化系統(tǒng)的發(fā)育變化顯著。大鱗副泥鰍為雜食性魚類,在早期對(duì)糖類物質(zhì)消化能力較強(qiáng), 隨著消化系統(tǒng)發(fā)育完善, 對(duì)于蛋白質(zhì), 脂肪利用率提高, 而減弱了對(duì)糖類物質(zhì)的利用。在培育苗種過程中, 可根據(jù)不同發(fā)育時(shí)期消化酶活性的變化來相應(yīng)調(diào)整餌料配方, 從而促進(jìn)仔稚魚的生長(zhǎng)和提高育苗成活率。

[1] Ding R H. The Fishes of Sichuan, China [M]. Sichuan: Sichuan Science and Technology Press. 1994, 120-122 [丁瑞華. 四川魚類志. 四川: 四川科學(xué)技術(shù)出版社. 1994, 120—122]

[2] Comabella Y, Mendoza R, Aguilera C, et al. Digestive enzyme activity during early larval development of the Cuban gar (Atractosteus tristoechus) [J]. Fish Physiology Biochemistry, 2006, 32(2): 147—157

[3] Uebersch? r B. Measurement of Proteolytic Enzyme Activity: Significance and Application in Larval Fish Research [M]. Physiological and Biochemical Aspects of Fish Development. University of Bergen, Norway. 1993, 233—237

[4] Ji H, Sun H T, Tian J J, et al. Digestive enzyme activity during early larval development of the paddlefish Polyoodon spathula [J]. Acta Hydrobiologica Sinca, 2012, 36(3): 458—463. [吉紅,孫海濤, 田晶晶, 等. 匙吻鱘仔稚魚消化酶發(fā)育的研究. 水生生物學(xué)報(bào), 2012, 36(3): 458—463]

[5] Alvarez-González C A, Cervantes-Trujano M, Tovar-Ramírez D, et al. Development of digestive enzymes in California halibut Paralichthys californicus larvae [J]. Fish Physiology Biochemistry, 2005, 31(1): 83—93

[6] Reza A, Gholamreza R, Soheil E, et al. Ontogeny of the digestive enzyme activities in hatchery produced Beluga (Huso huso) [J]. Aquaculture, 2013, 416: 33—40

[7] Gisbert E, Giménez G, Fernández I, et al. Development of digestive enzymes in common dentex Dentex dentex during early ontogeny [J]. Aquaculture, 2009, 287(3—4): 381—387

[8] Liang Z X, Liang J Y, Chen C, et al. The embryonic development and fingerling culture of loach, Paramisgurnus dabryanus sauvage [J]. Acta Hydrobiologica Sinica, 1988, 12(1): 28—39 [ 燊梁秩 , 梁堅(jiān)勇, 陳朝, 等. 大鱗副泥鰍的胚胎發(fā)育以及魚種培育. 水生生物學(xué)報(bào), 1988, 12(1): 28—39]

[9] Martínez I, Moyano F J, Fernández-Díaz C, et al. Digestive enzyme activity during larval development of the Senegal sole (Solea senegalensis) [J]. Fish Physiology Biochemistry, 1999, 21(4): 317—323

[10] Alvarez-González C A, Moyano-López F J, Civera-Cerecedo R, et al. Development of digestive enzyme activity in larvae of spotted sand bass Paralabrax maculatofasciatus. Biochemical analysis [J]. Fish Physiology Biochemistry, 2008, 34(4): 373—384

[11] Ben N C, Jian G Q, Martin S K, Ontogenetic development of digestive enzymes in yellowtail kingfish Seriola lalandi larvae [J]. Aquaculture, 2006, 260: 489—501

[12] Zheng K D, Chen G L, Sun B, et al, Variations of growth and digestive enzymes activities in the developmental Chinese sucker larvae (Myxocyprinus asiaticus Bleeker) [J]. Freshwater Fisheries, 2010, 40(6): 9—14 [鄭凱迪, 陳桂來, 孫彬,等．胭脂魚仔魚的生長(zhǎng)和消化酶活力變化．淡水漁業(yè), 2010, 40(6): 9—14]

[13] Li Q, Long Y, Qu B, et al. Assessment of digestive enzymes activities during larval development of Pelteobagrus vachelli [J]. Journal of Fishes Sciences of China, 2008, 15(1): 73—78 [李芹, 龍勇, 屈波, 等. 瓦氏黃顙魚仔稚魚發(fā)育過程中消化酶活性變化研究. 中國(guó)水產(chǎn)科學(xué), 2008, 15(1): 73—78]

[14] Lazo J P, Mendoza R, Holt G J, et al．Characterization of digestive enzymes during larval development of red drum (Sciaenops ocellatus) [J]. Aquaculture, 2007, 265: 194—205

[15] abaei S S, Abedian Kenari A, Nazari R, et al. Developmental changes of digestive enzymes in Persiansturgeon (Acipenser persicus) during larval ontogeny [J]. Aquaculture, 2011, 318(1—2): 138—144

[16] Chen B N, Qin J G, Carragher J F, et al. Deleterious effects of food restrictions in yellowtail kingfish Seriola lalandi during early development [J]. Aquaculture, 2007, 271(1—4): 326—335

[17] Oozeki Y, Bailey K M．Ontogenetic development of digestive enzyme in activities in larval walleye pollock Theragra chalcogramma [J]．Marine Biology, 1995, 122(2): 177—186

[18] Izquierdo M S, Socorro J, Arantzamendi L, et al．Recent advances in lipid nutrition in fish Larvae [J]. Fish Physiology Biochemistry, 2000, 22(2): 97—107

[19] Morals S, Cahu C, Dinis M T, et al. Dietary TAG source level affect performance and lipase expression in larval sea bass (Dicentrarchus labrax) [J]. Lipids, 2004, 39(5): 449—458

[20] Ma H, Cahu C, Zambonino-Infante J L, et al. Activities of selected digestive enzymes during larval development of large yellow croaker (Pseudosciaena crocea) [J]. Aquaculture, 2005, 245(1—4): 239—248

[21] Rbeiro L, Zambonino-Infante J L, Cahu C, et al. Development of digestive enzymes in larvae of Sole asenegalensis, Kaup1858 [J]. Aquaculture, 1999, 179(1): 465—473

[22] Zmbonino-Infante J L, Cahu C L．Development and response to a diet change of some digestive enzymes in sea bass (Dicentrar-chus labrax) larvae [J]. Fish Physiology Biochemistry, 1994, 12(5): 399—408

GROWTH AND FLUCTUATIONS OF DIGESTIVE ENZYMES ACTIVITIES IN PARAMISGURNUS DABRYANUS DURING LARVAL AND JUVENILE STAGES

LIU Ya-Qiu, GUO Zhong-Di, HU Yu, GAO Sheng-Tao and WANG Zhi-Jian
(Key Laboratory of Freshwater Fish Reproduction and Development, Ministry of Education, the Key Laboratory of Aquatic Science of Chongqing, School of Life Science, Southwest University, Chongqing 400715, China)

大鱗副泥鰍; 仔稚魚; 生長(zhǎng); 消化酶活力

Paramisgurnus dabryanus; Larvae and juveniles; Growth; Digestive enzymes activities

Q175

A

1000-3207(2015)06-1236-05

10.7541/2015.161

2014-10-30;

2015-05-17

公益性行業(yè)(農(nóng)業(yè))科研專項(xiàng)(201203086); 重慶市科委重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室專項(xiàng)經(jīng)費(fèi)資助

劉亞秋(1990—), 男, 湖北武漢人; 碩士研究生; 主要研究方向?yàn)樗飳W(xué)。E-mail: 393386160@qq.com

王志堅(jiān)(1969—)男, 教授; E-mail: wangzj1969@126.com