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        維A酸軟膏中維A酸的含量測定及有關(guān)物質(zhì)的檢查

        2015-01-05 11:27:14解放軍總醫(yī)院藥品保障中心北京100853

        蔡 樂,姚 蘭,白 林(解放軍總醫(yī)院藥品保障中心,北京 100853)

        ·實(shí)驗研究·

        維A酸軟膏中維A酸的含量測定及有關(guān)物質(zhì)的檢查

        蔡 樂,姚 蘭,白 林(解放軍總醫(yī)院藥品保障中心,北京 100853)

        目的:建立維A酸軟膏中維A酸的含量測定及有關(guān)物質(zhì)檢查的方法。方法:采用HPLC法測定維A酸的含量。色譜柱:Agilent Zorbax SB C18柱(250 mm×4.6 mm,5 μm),流動相:甲醇-2%冰醋酸(85 : 15),流速:1.0 mL·min-1,檢測波長:354 nm,柱溫:45 ℃。結(jié)果:維A酸與其他雜質(zhì)分離良好,與異維A酸的分離度> 5。維A酸在0.934 4 ~ 18.687 2 μg·mL-1范圍內(nèi)線性關(guān)系良好(r = 1.000 0);維A酸的平均回收率為99.4%(RSD = 1.44%,n = 9)。結(jié)論:采用該方法測定維A酸軟膏中維A酸的含量操作簡單,結(jié)果準(zhǔn)確,可作為該制劑的質(zhì)量控制方法。

        高效液相色譜法;維A酸軟膏;含量測定;維A酸;異維A酸

        維A酸軟膏收載于《中國人民解放軍醫(yī)療機(jī)構(gòu)制劑規(guī)范》(2002年版)[1],由維A酸、凡士林和液體石蠟組成,其中維A酸是維生素A的活性代謝產(chǎn)物,具有促進(jìn)表皮細(xì)胞更新、調(diào)節(jié)表皮細(xì)胞增殖和分化作用,該藥常用于各種類型的扁平苔蘚、毛囊角化病、痤瘡及其他角化異常類皮膚病的治療。在《中國人民解放軍醫(yī)療機(jī)構(gòu)制劑規(guī)范》(2002年版)中并未記載維A酸軟膏的含量測定方法,維A酸不穩(wěn)定見光易轉(zhuǎn)化為其順勢異構(gòu)體異維A酸,為提高維A酸軟膏的質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn),更好地控制該制劑的質(zhì)量,提高臨床用藥的安全性和有效性,本研究建立了測定維A酸軟膏中維A酸的含量及檢查有關(guān)物質(zhì)異維A酸的HPLC方法。

        1 儀器與試藥

        Agilent 1200型高效液相色譜儀(包括1200系列在線脫氣機(jī)、四元梯度泵、自動進(jìn)樣器、柱溫箱、VWD檢測器和色譜工作站,美國Agilent公司);AG-285型電子天平(瑞士Mettler公司);UV-2550型紫外分光光度儀(日本島津公司)。

        維A酸對照品(中國食品藥品檢定研究院,純度99.4%,批號100224-200903);異維A酸對照品(中國食品藥品檢定研究院,純度99.8%,批號100224-200903);維A酸軟膏(本院自制,規(guī)格:0.025%、20 g/盒,批號20140120-1、20140120-2、20140121);甲醇為色譜純;乙醇、冰醋酸為分析純;水為重蒸餾水。

        2 方法與結(jié)果

        2.1 色譜條件

        色譜柱:Agilent Zorbax SB C18柱(250 mm×4.6 mm,5 μm);流動相:甲醇-2%冰醋酸(85 : 15);流速:1.0 mL·min-1;檢測波長:354 nm;柱溫:45 ℃;進(jìn)樣量:10 μL。

        2.2 溶液的制備

        2.2.1對照品溶液 精密稱定維A酸對照品9.4 mg,置100 mL棕色量瓶中,加甲醇溶解并稀釋至刻度,搖勻,作為維A酸對照品儲備液。精密稱定異維A酸對照品12.3 mg,置100 mL棕色量瓶中,加甲醇溶解并稀釋至刻度,搖勻,作為異維A酸對照品儲備液A。精密量取異維A酸對照品儲備液A 1 mL,置10 mL量瓶中,加流動相稀釋至刻度,搖勻,作為異維A酸對照品儲備液B。精密量取維A酸對照品儲備液2.5 mL和異維A酸對照品儲備液B 4 mL,置100 mL量瓶中,加流動相稀釋至刻度,搖勻,即得對照品溶液(含維A酸2.335 9 μg·mL-1和異維A酸0.491 0 μg·mL-1)。

        2.2.2供試品溶液 避光操作,取供試品約1.0 g(含維A酸約0.25 mg),精密稱定,置具塞錐形瓶中,精密加入無水乙醇50 mL,稱定重量,于60 ℃水浴中充分振搖15 min,再置于冰浴中冷卻2 h。取出后用無水乙醇補(bǔ)足重量,迅速濾過,放至室溫后,取續(xù)濾液5 mL置10 mL棕色量瓶中,加流動相稀釋至刻度,搖勻,用0.22 μm微孔濾膜濾過,取續(xù)濾液,作為供試品溶液。

        2.2.3陰性對照溶液 另按處方比例及制備工藝,取除維A酸以外的其余成分,配制不含維A酸的空白制劑,依供試品溶液制備方法制備陰性對照溶液。

        2.3 系統(tǒng)適用性實(shí)驗

        分別取對照品溶液、供試品溶液、陰性對照溶液按“2.1”項下色譜條件,各進(jìn)樣10 μL,測定HPLC圖譜,考察供試品中維A酸、異維A酸和其他組分色譜峰分離情況。在此色譜條件下,維A酸的保留時間為18.4 min,異維A酸的保留時間為16.3 min,維A酸和異維A酸色譜峰峰形對稱尖銳,分離度大于5,基線平穩(wěn),與其他色譜峰分離良好,陰性對照無干擾,見圖1。

        2.4 線性關(guān)系考察

        精密量取維A酸儲備液適量,加流動相配制成含維A酸分別為0.934 4、2.335 9、4.671 8、9.343 6、14.015 4、18.687 2 μg·mL-1的標(biāo)準(zhǔn)溶液。分別精密吸取標(biāo)準(zhǔn)溶液各10 μL,按“2.1”項下色譜條件進(jìn)行測定。以峰面積值為縱坐標(biāo)(Y),濃度為橫坐標(biāo)(X)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,計算得維A酸的回歸方程為Y = 89.383 X + 1.874 2,r = 1.000 0。結(jié)果表明,維A酸在0.934 4 ~18.687 2 μg·mL-1范圍內(nèi)與峰面積呈良好線性關(guān)系。

        圖1 維A酸軟膏的HPLC色譜圖A – 陰性對照,B – 對照品,C – 供試品;1 – 異維A酸,2 – 維A酸Fig 1 HPLC chromatogram of tretinoin ointmentA – negative reference substance, B – reference substance, C – sample; 1 – isotretinoin, 2 – tretinoin

        2.5 精密度實(shí)驗

        取“2.2.1”項下對照品溶液,按“2.1”項下色譜條件,連續(xù)進(jìn)樣6次測定,計算維A酸的峰面積RSD為0.06%(n = 6),表明儀器精密度良好。

        2.6 重復(fù)性實(shí)驗

        取同一供試品(批號20140120-1)約1.0 g,共6份,精密稱定,分別按“2.2.2”項下方法制備供試品溶液,按“2.1”項下色譜條件進(jìn)行測定,計算含量RSD為1.73%(n = 6),表明方法重復(fù)性良好。

        2.7 回收率實(shí)驗

        取“2.2.3”項下空白制劑9份,分成3組,每組3份,每份約1.0 g。分別精密加入一定量的維A酸對照品儲備液,于50 ℃微溫下與空白制劑混合,再按供試品溶液制備方法制成含量約為供試品標(biāo)示量的80%、100%、120%的樣品溶液。按“2.1”項下色譜條件進(jìn)行測定,計算回收率,結(jié)果見表1。

        表1 維A酸軟膏回收率實(shí)驗測定結(jié)果.n= 9Tab 1 Results of recovery test about tretinoin ointment.n= 9

        2.8 樣品含量測定

        取3批樣品(批號20140120-1、20140120-2、20140121),每批3份,按“2.2.2”項下方法制備供試品溶液,按“2.1”項下色譜條件進(jìn)行測定,以外標(biāo)法計算各個樣品中維A酸的含量,結(jié)果見表2。

        表2 維A酸軟膏中維A酸的含量.n= 3Tab 2 Determination of contents of tretinoin in tretinoin ointment.n= 3

        2.9 異維A酸限量檢查

        取3批樣品(批號20140120-1、20140120-2、20140121),按“2.2.2”項下方法制備供試品溶液,依照“2.1”項下色譜條件,40 μL進(jìn)樣測定。供試品溶液色譜圖中若有與異維A酸保留時間一致的色譜峰,其峰面積不得大于對照品溶液10 μL進(jìn)樣時異維A酸峰面積的5%。經(jīng)測定,3批樣品異維A酸的限量均符合規(guī)定。

        3 討論

        3.1 維A酸含量測定方法的選擇

        維A酸的含量測定方法主要有UV法[2-3]和HPLC法[4-6]。經(jīng)實(shí)驗發(fā)現(xiàn),維A酸軟膏中凡士林等基質(zhì)和異維A酸等雜質(zhì)在維A酸最大吸收波長處均有吸收,對紫外分光光度法測定存在影響,采用HPLC法則可避免基質(zhì)和雜質(zhì)對維A酸測定的干擾,并可對制劑中的雜質(zhì)進(jìn)行限量檢查。由于軟膏基質(zhì)黏度大,成分復(fù)雜,處理不當(dāng)易造成色譜柱堵塞。因此,本實(shí)驗在參考文獻(xiàn)基礎(chǔ)上,對提取條件等進(jìn)行了優(yōu)化。

        3.2 色譜條件的選擇

        研究中曾參考文獻(xiàn)[6]維A酸原料藥含量測定項下的流動相甲醇-2%冰醋酸(81 : 19)進(jìn)行實(shí)驗,但采用該配比測定時維A酸的出峰時間偏長(約30 min),且峰形寬。經(jīng)實(shí)驗發(fā)現(xiàn)維A酸對甲醇的比例變化敏感,維A酸在甲醇-2%冰醋酸(90∶10)的條件下,出峰時間可縮短為10 min左右,但維A酸與異維A酸的分離度 < 5;而維A酸在甲醇-2%冰醋酸(85∶15)的條件下,出峰時間為18 min左右,維A酸與異維A酸的分離良好(分離度 > 5),為此確定流動相為甲醇-2%冰醋酸(85∶15)。通過掃描維A酸標(biāo)準(zhǔn)溶液的紫外圖譜,發(fā)現(xiàn)維A酸在354 nm處有最大吸收,因此選擇354 nm為檢測波長。

        3.3 提取條件的選擇

        本研究分別以無水乙醇、甲醇和流動相作為溶劑提取樣品,發(fā)現(xiàn)無水乙醇的提取率明顯高于甲醇和流動相。為減小供試品溶液對色譜柱的損壞,使用無水乙醇提取后,可冰浴2 h使軟膏基質(zhì)沉淀,濾過后再用流動相稀釋進(jìn)一步析出雜質(zhì),最后用0.22 μm微孔濾膜濾過后進(jìn)樣[7]。此外,對提取時間和溫度進(jìn)行優(yōu)化,發(fā)現(xiàn)60 ℃水浴時充分振搖15 min即可完全提取樣品。

        3.4 維A酸的穩(wěn)定性

        本研究考察了光線對維A酸穩(wěn)定性的影響。實(shí)驗結(jié)果表明,維A酸溶液在室溫光照條件下極不穩(wěn)定,1 h含量下降近20%,8 h含量下降超過60%;而維A酸在室溫避光條件下,12 h基本穩(wěn)定,因此實(shí)驗操作中要注意嚴(yán)格避光。

        由于維A酸不穩(wěn)定,見光易轉(zhuǎn)化為異維A酸,而異維A酸具有較強(qiáng)的致畸作用,因此應(yīng)對制劑中異維A酸的含量進(jìn)行限制。參考文獻(xiàn)[6]維A酸乳膏中的檢查方法,本研究將供試品40 μL進(jìn)樣中異維A酸峰面積限定為不大于對照品溶液(10 μL進(jìn)樣)中異維A酸峰面積的5%,經(jīng)檢查所配制的3批樣品均符合規(guī)定。

        綜上,采用HPLC法操作簡便,準(zhǔn)確性高,重復(fù)性好,可作為維A酸軟膏中維A酸含量測定及有關(guān)物質(zhì)檢查的方法。

        [1] 中國人民解放軍總后勤衛(wèi)生部.中國人民解放軍醫(yī)療機(jī)構(gòu)制劑規(guī)范(2002年版)[S].北京:人民軍醫(yī)出版社,2003:166.

        [2] 姜武民,黃波.維A酸乳膏(0.025%)含量測定方法的探究[J].實(shí)用藥物與臨床,2011,14(3):229-230.

        [3] 吳畏,陳雅,楊征,等.紫外分光光度法測定維 A 酸軟膏的含量[J].中國藥業(yè),2012,21(2):36-37.

        [4] 王福霞,馮文菊,姜武民.HPLC法測定維A酸與異維A酸含量[J].藥物分析雜志,2007,27(4):585-587.

        [5] 魏立明,宋霞,宋三孔,等.HPLC雙波長法同時測定復(fù)方維A酸軟膏中2主藥的含量[J].中國藥房,2012,23(8):737-739.

        [6] 國家藥典委員會.中華人民共和國藥典(二部)[S]. 2010年版.北京:中國醫(yī)藥科技出版社,2010:893-894.

        [7] 蔡樂,白林,徐風(fēng)華,等.HPLC法測定薄荷苯酚軟膏中苯酚的含量[J].中國藥物應(yīng)用與監(jiān)測,2014,11(2):82-84.

        Determination of tretinoin and its related substance in tretinoin ointment

        CAI Le, YAO Lan, BAI Lin(Department of Pharmaceutical Care, PLA General Hospital, Beijing 100853, China)

        Objective:To establish the HPLC method for determination of tretinoin and its related substance in tretinoin ointment.Methods:HPLC analysis was carried out on a column of Agilent Zorbax SB C18(250 mm × 4.6 mm, 5 μm) with mobile phase consisted of methanol -2% glacial acetic acid solution (85 : 15), the flow rate was 1.0 mL·min-1, the detection wavelength was set at 354 nm and column temperature was 45 ℃.Results:The separation between tretinoin and other impurities was well under this chromatographic condition, and separating degree of tretinoin and isotretinoin was > 5. The calibration curve of tretinoin was linear in the ranger of 0.934 4 – 18.687 2 μg·mL-1(r = 1.000 0). The average recovery of tretinoin was 99.4% (RSD = 1.44%, n = 9).Conclusion:This method is simple, accurate and feasible, which can be applied as the quantitative method for the determination of tretinoin in tretinoin ointment.

        HPLC; Tretinoin ointment; Content determination; Tretinoin; Isotretinoin

        R917

        A

        1672 – 8157(2015)03 – 0144 – 03

        2014-09-08

        2015-01-20)

        軍隊醫(yī)療機(jī)構(gòu)制劑標(biāo)準(zhǔn)提高科研專項重點(diǎn)課題:半固體制劑標(biāo)準(zhǔn)提高系列研究(13ZJZ05)

        白林,女,主任藥師,研究方向:藥物分析、醫(yī)院藥學(xué)。E-mail:bailin301@126.com

        蔡樂,男,主管藥師,主要從事藥物分析、醫(yī)院藥學(xué)工作。E-mail:caile15009@163.com

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