馬立坤,葉 鵬,鄧 江,黃文良,田仁元,呂雪峰
(遵義醫(yī)學(xué)院第三附屬醫(yī)院骨科,貴州 遵義 563000)
理想的骨組織工程支架材料首先應(yīng)具備良好的生物相容性,合適的孔徑及生物降解性[1,2]。絲素蛋白(silk fibroin,SF)、殼聚糖(chitosan,CS)、納米羥基磷灰石(nano Hydroxyapatite,HA)均是天然生物材料,具有無毒、良好的生物相容性及降解性[3~5],分別在骨組織工程材料的應(yīng)用研究中取得一定的成果。而單但獨(dú)使用時(shí)都存在一些不足。前期實(shí)驗(yàn)將三者按1∶1∶1比例混合制備出SF/CS/n-HA生物支架,在考察其理化特性及表征的基礎(chǔ)上得出三者材料混合比單獨(dú)應(yīng)用更合符骨組織工程要求[6]。骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞具有自我復(fù)制及向成骨細(xì)胞定向分化潛能而成為骨組織工程的理想種子細(xì)胞之一[7]。因此,本實(shí)驗(yàn)采用支架與骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞共培養(yǎng)通過MTT法及電鏡檢測(cè)其材料毒性。
1.1 試劑及儀器 DMEM培養(yǎng)基、胰酶、胎牛血清(Hyelone公司);MTT(Amresco公司);DMSO(Amresco公司);CO2細(xì)胞培養(yǎng)箱(Thermo,美國);離心機(jī)(Thermo美國),倒置顯微鏡(奧林巴斯,日本);超凈工作臺(tái)(蘇州安泰有限公司);掃描電鏡(日立S-3400N,日本);50萬居里60CO輻照裝置(貴州金農(nóng)輻照科技有限公司)。
1.2 動(dòng)物 新西蘭大白兔,清潔級(jí),1月齡,購于第三軍醫(yī)大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心,實(shí)驗(yàn)動(dòng)物生產(chǎn)許可證號(hào):SCXK(渝)2012-0003;實(shí)驗(yàn)動(dòng)物使用許可證號(hào):SYXK(渝)2012-0002。實(shí)驗(yàn)過程參照2006年頒布的《關(guān)于善待實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的指導(dǎo)意見》對(duì)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物進(jìn)行處置[8]。
2.1 SF/CS/n-HA生物三維支架制備 將SF、CS、n-HA按1∶1∶1比例混合,采用冷凍干燥法制備出SF/CS/n-HA生物三維支架,并通過3000Gy60Co照射滅菌后保存?zhèn)溆茫?]。經(jīng)檢測(cè)平均孔徑為85.67μm,孔隙率91.25%±2.35%。
2.2 兔骨髓間充質(zhì)細(xì)胞(bone marrow derived mesenchymal stem cells.BMSCs)分離培養(yǎng) 取新西蘭大白兔,麻醉后消毒鋪巾,取出雙側(cè)股骨,除去肌肉,PBS清洗。膠骨鉗咬除兩端骨骺,用Hanks液(含肝素抗凝)沖出骨髓,然后用200目過濾篩過濾。1000轉(zhuǎn)/min離心5min,用含10%牛血清蛋白(FBS)低糖DMEM培養(yǎng)液反復(fù)吹打制成單細(xì)胞懸液接種于培養(yǎng)瓶,放于細(xì)胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。48小時(shí)半換液,72小時(shí)小時(shí)全換液,以后視情況每隔兩三天換液,待細(xì)胞生長至80%~85%時(shí),用胰蛋白酶消化,按1:2進(jìn)行傳代培養(yǎng),培養(yǎng)條件同原代。
2.3 支架體外細(xì)胞毒性實(shí)驗(yàn) 按培養(yǎng)基與支架體積比1ml/cm3為100%,37℃ 培養(yǎng)箱中浸提24小時(shí),分別制備出濃度為100%、50%、25%浸提液。取第三代BMSCs,以細(xì)胞濃度為1×108/L每孔100μl接種到96孔板中,培養(yǎng)24小時(shí)后棄原培養(yǎng)基,更換為各濃度組浸提液,以加入完全基為陰性對(duì)照組,繼續(xù)細(xì)胞箱中培養(yǎng),分別于24、48、72h隨機(jī)取一孔板,采用MTT法測(cè)定細(xì)胞活力。依據(jù)ISO10993.5-1999及 GB/T16886.5-2003標(biāo)準(zhǔn),按下式計(jì)算出相對(duì)增殖率并評(píng)價(jià)支架的細(xì)胞毒性[9,10]。支架細(xì)胞毒性相對(duì)增殖率(RGR)=各濃度實(shí)驗(yàn)組吸光值/陰性對(duì)照組吸光值×100%。
2.4 支架細(xì)胞活力測(cè)定 取第3代BMSCs,以細(xì)胞濃度為6×107/L,每孔接種100μl于96孔板中的SF/CS/n-HA支架作為實(shí)驗(yàn)組,以不放支架材料為對(duì)照組,細(xì)胞箱中培養(yǎng),分別于1、3、5、7d隨機(jī)取一孔板,MTT法測(cè)定各孔吸光值。
2.5 細(xì)胞黏附率測(cè)定 取第3代BMSCs,調(diào)整細(xì)胞濃度為5×107/L,每孔100μl接種在48孔板中的SF/CS/n-HA支架作為實(shí)驗(yàn)組,對(duì)照組為不放支架材料,于細(xì)胞箱中培養(yǎng),分別于1、3、5h細(xì)胞計(jì)數(shù)板計(jì)數(shù)未附著細(xì)胞。細(xì)胞黏附率=(接種細(xì)胞數(shù)-未附著細(xì)胞數(shù))/接種細(xì)胞數(shù)×100%
2.6 細(xì)胞在支架上生長情況觀察:每天倒置顯微鏡下觀察支架周邊細(xì)胞生長情況,支架與細(xì)胞共培養(yǎng)7天取出支架用2.5%戊二醛固定2小時(shí),梯度酒精脫水,干燥,噴金,掃描電鏡觀察細(xì)胞生長。
2.7 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 采用SPSS 17.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,所得數(shù)據(jù)用表示。兩者間比較采用獨(dú)立樣本t檢驗(yàn),以P<0.05為有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異。
3.1 支架體外細(xì)胞毒性實(shí)驗(yàn)結(jié)果 分別測(cè)得個(gè)濃度組吸光值及陰性對(duì)照組吸光值,計(jì)算出RGR,通過與材料毒性等級(jí)(CTG)對(duì)比得出支架材料對(duì)BMSCs無細(xì)胞毒性,見表1、2。
表1 SF/CS/n-HA支架各濃度組浸提液與BMSCs培養(yǎng)的RGR和CTG(n=8)Table 1 Various concentrations of SF/CS/n-HA scaffolds extract and BMSCs cultured RGR and CTG
表2 細(xì)胞毒性反應(yīng)分級(jí)標(biāo)準(zhǔn)Table 2 Classification standard of cell toxicity
3.2 細(xì)胞增殖活力測(cè)定結(jié)果 隨著時(shí)間的增長,細(xì)胞在支架上的數(shù)量明顯增加,生長良好,支架材料實(shí)驗(yàn)組與對(duì)照組在第1、3、5、7d兩組比較有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P<0.05),說明支架實(shí)驗(yàn)組隨著時(shí)間增長細(xì)胞增殖活力優(yōu)于不放支架材料的對(duì)照組,見表3。
表3 不同時(shí)間SF/CS/n-HA支架對(duì)細(xì)胞增殖活力OD值(,n=4)Table 3 SF/CS/n-HA scaffolds on cell proliferation activity at different time
表3 不同時(shí)間SF/CS/n-HA支架對(duì)細(xì)胞增殖活力OD值(,n=4)Table 3 SF/CS/n-HA scaffolds on cell proliferation activity at different time
注:①P<0.05,VS對(duì)照組
組數(shù) 時(shí)間(d)1 3 5 7實(shí)驗(yàn)組 0.108±0.019①0.250±0.015①0.406±0.022①0.858±0.066①對(duì)照組 0.068±0.0020.162±0.0080.307±0.0480.612±0.011
3.3 細(xì)胞黏附結(jié)果 隨著時(shí)間增加實(shí)驗(yàn)組與對(duì)照組細(xì)胞黏附率均增大,兩組比較無統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P>0.05),結(jié)果見表4。
3.4 BMSCs原代及傳代培養(yǎng)形態(tài) 原代BMSCs接種24小時(shí)后開始出現(xiàn)梭形細(xì)胞,經(jīng)半換液全換液除去未貼壁細(xì)胞,約72小時(shí)細(xì)胞開始增殖,生長良好,BMSCs成纖維狀、長梭形。約7天時(shí)細(xì)胞生長回合達(dá)80%~90%。傳代后細(xì)胞形態(tài)基本一致,細(xì)胞以梭形為主,增殖正常,6~8d時(shí)細(xì)胞可鋪滿瓶底,見圖1。
表4 SF/CS/n-HA支架細(xì)胞黏附率[×10-2(,n=6)]Table 4 SF/CS/n-HA scaffolds on cell adhesion rate
表4 SF/CS/n-HA支架細(xì)胞黏附率[×10-2(,n=6)]Table 4 SF/CS/n-HA scaffolds on cell adhesion rate
1 3 5支架材料組黏附率組別 時(shí)間(h)77.500±0.06987.500±0.05289.167±0.038對(duì)照組黏附率75.833±0.07485.000±0.05586.667±0.052
圖1 第三代BMSCs培養(yǎng)第7天(×100)Figure 1 The third generation of BMSCs at 7th day(×100)
3.5 細(xì)胞在支架上生長觀察 倒置顯微鏡觀察支架周邊細(xì)胞生長良好,增殖正常,見圖2。掃描電鏡觀察見細(xì)胞在支架材料上伸出偽足緊密黏附在支架孔隙表面。細(xì)胞為橢圓形、圓形或多角形,生長良好,分裂正常,見圖3。
圖2 SF/CS/n-HA支架復(fù)合BMSCs共培養(yǎng)7d(×100)Figure 2 SF/CS/n-HA scaffolds and BMSCs cultured at 7th d(×100)
骨缺損修復(fù)是骨科的重要研究課題之一。當(dāng)前治療骨缺損主要采用自體或異體骨移植,但都存在一定的弊端[11]。隨著骨組織工程的發(fā)展,為骨缺損治療帶來了新的思路。支架材料、種子細(xì)胞、細(xì)胞因子是骨組織工程的研究熱點(diǎn)[12]。一種理想的支架首先必須與種子細(xì)胞具有良好的生物相容性[13]。
圖3 SF/CS/n-HA支架復(fù)合BMSCs共培養(yǎng)7dSEM(×2000)Figure 3 SF/CS/n-HA scaffolds and BMSCs cultured at 7th d(×2000)
目前材料的細(xì)胞毒性評(píng)價(jià)主要首選體外細(xì)胞毒性評(píng)價(jià),通過MTT法檢測(cè)種子細(xì)胞與支架材料共培養(yǎng)的相對(duì)增值率[14]。MTT法具有快速、重復(fù)性好、檢測(cè)結(jié)果靈敏等特點(diǎn)而廣泛用于生物材料的細(xì)胞毒性檢測(cè)[15]。其檢測(cè)原理為活細(xì)胞中具有豐富的琥珀酸脫氫酶,能將MTT還原成不容于水的藍(lán)紫色結(jié)晶物質(zhì),而該結(jié)晶物質(zhì)能溶解于DMSO,通過酶聯(lián)免疫檢測(cè)儀測(cè)定其吸光值來間接反映細(xì)胞存活量[16]。死細(xì)胞中無琥珀酸脫氫酶,不具備此功能。本實(shí)驗(yàn)采用的支架材料為實(shí)驗(yàn)組前期研究中制備的絲素蛋白/殼聚糖/納米羥基磷灰石復(fù)合支架,通過檢測(cè)具有符合骨組織工程支架材料的孔徑、孔隙率等要求[6]。顯示支架材料與組織來源不同的種子細(xì)胞具有不同的相容性[17]。因此,采用此材料與實(shí)驗(yàn)?zāi)康囊恢碌姆N子細(xì)胞BMSCs體外共培養(yǎng)來評(píng)價(jià)支架材料的生物相容性,這樣所得結(jié)果才更加準(zhǔn)確和客觀。
RGR進(jìn)行細(xì)胞毒性分級(jí)評(píng)價(jià)是國內(nèi)外學(xué)者廣泛采用的方法[18]。理想的組織工程支架材料除了要求對(duì)種子細(xì)胞無毒性作用外,還應(yīng)能促進(jìn)種子細(xì)胞的黏附增殖[19]。
BMSCs在CS/SF/n-HA復(fù)合支架上具有良好的黏附作用。隨著時(shí)間的增加能明顯促進(jìn)BMSCs增殖,進(jìn)一步表明此支架具有良好細(xì)胞相容性,是一種理想的骨組織工程支架。但該支架在體內(nèi)的組織相容性、生物降解性、免疫源性及修復(fù)骨缺損的療效需進(jìn)一步研究。
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