唐鋼梁, 李向義, 林麗莎, 李 磊, 魯建榮
(1. 中國(guó)科學(xué)院新疆生態(tài)與地理研究所, 烏魯木齊 830011; 2. 中國(guó)科學(xué)院大學(xué), 北京 100049; 3. 新疆策勒荒漠草地生態(tài)系統(tǒng)國(guó)家野外科學(xué)觀測(cè)研究站, 策勒 848300; 4. 中國(guó)科學(xué)院干旱區(qū)生物地理與生物資源重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室, 烏魯木齊 830011)
環(huán)割是指割除樹干或主枝的整圈韌皮部,這樣就阻止了光合作用同化物的向下運(yùn)輸。自1932年Kobel從碳氮比的角度研究環(huán)割促花的生理機(jī)制以來(lái),許多學(xué)者相繼從營(yíng)養(yǎng)、激素、和核酸等不同的角度進(jìn)行了深入研究。環(huán)割后較多的光合產(chǎn)物分配給上部枝條的花和果實(shí),進(jìn)而促進(jìn)果實(shí)的豐產(chǎn)[1]。由于環(huán)割顯著提高了葉片的可溶性糖含量,降低了葉片的含氨量,因而顯著提高了葉片的碳氮比值。這一結(jié)果為經(jīng)典的碳氮比成花學(xué)說(shuō)提供了證據(jù)。近年來(lái),國(guó)內(nèi)外許多果樹研究人員對(duì)環(huán)割環(huán)剝技術(shù)在果樹生產(chǎn)上的應(yīng)用進(jìn)行了許多有效的探索,并且發(fā)現(xiàn),環(huán)割效果會(huì)因供試品種、樹齡、環(huán)割方式、時(shí)期、部位、寬度甚至栽培條件等因素的不同而有不同程度的影響[2]。但是關(guān)于環(huán)割的內(nèi)部機(jī)制,環(huán)割之后會(huì)對(duì)哪些生理過(guò)程產(chǎn)生影響,影響程度有多深都缺乏直接的研究報(bào)道,尤其是環(huán)割對(duì)灌木的生長(zhǎng),水分有機(jī)物和養(yǎng)分運(yùn)輸將會(huì)產(chǎn)生的影響更是未見報(bào)道。
疏葉駱駝刺(Alhagisparsifolia)(以下簡(jiǎn)稱駱駝刺)不僅具有適應(yīng)性強(qiáng)、耐干旱、耐鹽堿等優(yōu)點(diǎn),在防風(fēng)固沙、維護(hù)綠洲生態(tài)安全方面也發(fā)揮著重要作用;同時(shí),駱駝刺又是一種重要的植物資源,在畜牧業(yè)生產(chǎn)中占有一定的地位[3]。長(zhǎng)期以來(lái),駱駝刺的相關(guān)問(wèn)題一直是國(guó)內(nèi)外學(xué)者研究的熱點(diǎn)[4]。目前關(guān)于環(huán)割的研究多見于果樹中,環(huán)割對(duì)松樹等高大喬木的生理特性的影響也已見報(bào)道[5]。而環(huán)割對(duì)于灌木的生理性狀的影響卻未見報(bào)道[6],生理性狀的變化往往能夠指示植物體內(nèi)部的生理機(jī)制,為對(duì)其進(jìn)行更進(jìn)一步的研究提供理論依據(jù)。本文選擇駱駝刺作為實(shí)驗(yàn)材料,旨在明確研究短期的環(huán)割處理對(duì)于駱駝刺氣孔導(dǎo)度,葉綠素含量及葉綠素?zé)晒鈪?shù)和曲線的影響,并通過(guò)這幾項(xiàng)生理參數(shù)的變化推斷環(huán)割可能對(duì)植物體運(yùn)輸哪些離子和營(yíng)養(yǎng)元素產(chǎn)生影響,為以后進(jìn)一步研究韌皮部和木質(zhì)部對(duì)灌木的物質(zhì)運(yùn)輸提供數(shù)據(jù)支持和理論基礎(chǔ)。此外,塔克拉瑪干沙漠南緣綠洲地區(qū)的野兔和昆蟲,在植物生長(zhǎng)季經(jīng)常對(duì)駱駝刺莖葉造成破壞,通過(guò)對(duì)駱駝刺的環(huán)割研究也可以模擬野兔和昆蟲對(duì)駱駝刺的干擾,為塔克拉瑪干沙漠南緣駱駝刺及其它灌木的干擾傷害機(jī)制及其防護(hù)提供理論依據(jù)。
試驗(yàn)在中國(guó)科學(xué)院策勒荒漠草地生態(tài)系統(tǒng)國(guó)家野外研究站荒漠實(shí)驗(yàn)區(qū)進(jìn)行。研究區(qū)位于塔南策勒綠洲外圍的綠洲-荒漠過(guò)渡帶間(35°17′55″—39°30′00″N, 80°03′24″—82°10′34″E)。該研究區(qū)屬典型內(nèi)陸暖溫帶荒漠氣候。夏季炎熱,干旱少雨;年平均氣溫11.9 ℃,極端最高氣溫41.9 ℃,極端最低氣溫-23.9 ℃;10℃以上積溫達(dá)到4340℃。年平均降水量34.4 mm,蒸發(fā)量高達(dá)2595.3 mm。光熱資源豐富:平均日照時(shí)數(shù)2697.5h,年太陽(yáng)總輻射能604.2 kJ/cm2,僅次于青藏高原,高于華北平原。但光能利用率僅為0.3%,遠(yuǎn)低于全國(guó)1%的水平。駱駝刺在綠洲-荒漠過(guò)渡帶廣泛分布,是當(dāng)?shù)氐闹饕ㄈ悍N。
試驗(yàn)材料為綠洲-荒漠過(guò)渡帶自然生長(zhǎng)的駱駝刺植株。于2012年8月中旬,在中國(guó)科學(xué)院策勒荒漠草地生態(tài)系統(tǒng)國(guó)家野外研究站荒漠實(shí)驗(yàn)區(qū)進(jìn)行,挑選同一生境條件下生長(zhǎng)良好大小長(zhǎng)勢(shì)相似的6個(gè)駱駝刺植株進(jìn)行環(huán)割處理,駱駝刺高度約為80cm。每個(gè)駱駝刺剪去多余枝條,留下一個(gè)長(zhǎng)勢(shì)相似的枝條進(jìn)行環(huán)割處理,試驗(yàn)設(shè)對(duì)照(CK)、韌皮部半割(PS)、韌皮部全割(PF)、木質(zhì)部半割(XS)4個(gè)處理。環(huán)割寬度為1cm,環(huán)割以后,該寬度的傷口不能隨時(shí)間的推移完全愈合(圖1)。試驗(yàn)處理24個(gè)駱駝刺,分成6組共6個(gè)重復(fù)。分別于處理后的第5天和第10天對(duì)駱駝刺氣孔導(dǎo)度和葉綠素?zé)晒膺M(jìn)行測(cè)定,第9天對(duì)駱駝刺葉綠素含量進(jìn)行測(cè)定。
圖1 駱駝刺環(huán)割處理示意圖
1.3.1 氣孔導(dǎo)度的測(cè)定
分別在環(huán)割處理后第5天和第10天,用SC- 1穩(wěn)態(tài)氣孔計(jì)(Decagon,Pullman,USA)對(duì)3個(gè)處理的駱駝刺葉片進(jìn)行氣孔導(dǎo)度的測(cè)定,每個(gè)測(cè)量6個(gè)重復(fù),其中環(huán)割處理后的第5天和第10天均為晴朗無(wú)云的天氣,測(cè)量時(shí)間為北京時(shí)間10:00。
1.3.2 葉綠素含量的測(cè)定
2012年8月下旬,駱駝刺環(huán)割處理之后的第10天,在每個(gè)處理的駱駝刺枝條上采集3—4個(gè)葉子,6個(gè)駱駝刺共計(jì)18—24個(gè)葉子作為一個(gè)混合樣。將所采集的葉片擦凈污物,剪碎去脈混勻。葉綠素(Chl)含量和類胡蘿卜素(Car)含量測(cè)定采用95%乙醇提取法[7];每個(gè)指標(biāo)測(cè)量5個(gè)重復(fù)。
1.3.3 葉綠素?zé)晒獾臏y(cè)定
葉綠素?zé)晒鈩?dòng)力學(xué)參數(shù):采用PEA連續(xù)激發(fā)式熒光儀(Hansatech Ltd., King′s Lynn, Northfolk UK),2012年8月下旬選擇晴朗無(wú)云的天氣,也就是在環(huán)割處理之后的第5天和第10天,根據(jù)Strasser等[8]的方法進(jìn)行葉綠素?zé)晒庹T導(dǎo)曲線及其參數(shù)的測(cè)定。葉片暗適應(yīng)20 min后,用3000μmol m-2s-1飽和紅閃光照射記錄熒光信號(hào),測(cè)得快速葉綠素?zé)晒鈩?dòng)力學(xué)曲線及其參數(shù),測(cè)定時(shí)間為北京時(shí)間12:00。葉綠素?zé)晒鈪?shù)參考Strasser等[8]及李鵬民等[9]的計(jì)算方法。熒光動(dòng)力學(xué)各參數(shù):Fo初始熒光或固定熒光,F(xiàn)m最大熒光產(chǎn)量,F(xiàn)v最大可變熒光,F(xiàn)v/Fm最大光化學(xué)量子產(chǎn)量,F(xiàn)v/FoPSⅡ的潛在活性,MOQA被還原的最大速率,ABS/RC單位反應(yīng)中心吸收的能量,TRo/RC單位反應(yīng)中心捕獲的能量,ETo/RC單位反應(yīng)中心用于電子傳遞的能量,DI0/RC單位反應(yīng)中心用于熱耗散的能量,φp0PSⅡ最大光化學(xué)效率,ψo(hù)在反應(yīng)中心捕獲的激子中用來(lái)推動(dòng)電子傳遞到電子傳遞鏈中超過(guò)QA的其它電子受體的激子占用來(lái)推動(dòng)QA還原激子的比率,ΦEo反應(yīng)中心吸收的光能用于電子傳遞的量子產(chǎn)額,RC/CS單位面積反應(yīng)中心數(shù)目,PIABS性能指數(shù)。
3種不同環(huán)割處理的駱駝刺葉片的光合色素、氣孔導(dǎo)度、熒光動(dòng)力學(xué)參數(shù)之間的差異,采用SPSS18.0統(tǒng)計(jì)分析軟件對(duì)各項(xiàng)參數(shù)使用單因素方差分析(One-way ANOVA)方法檢驗(yàn),多重比較采用LSD方法,P<0.05為差異顯著,參數(shù)以平均值加減1個(gè)標(biāo)準(zhǔn)誤(mean ±SE)表示。采用Microsoft Excel 2010,Origin8.0(OriginLab Inc., Hampton, USA)和CorelDRAW X4進(jìn)行數(shù)據(jù)計(jì)算處理和繪圖。
從圖2可以看出,駱駝刺環(huán)割處理5d后,韌皮部半割處理的駱駝刺氣孔導(dǎo)度幾乎沒有發(fā)生變化,而韌皮部全割和木質(zhì)部半割的駱駝刺氣孔導(dǎo)度分別下降了54.8%和33.2%,差異達(dá)到顯著水平(P<0.05)。而環(huán)割處理10d之后,3種處理下的駱駝刺氣孔導(dǎo)度均有了一定幅度的降低,其中韌皮部半割,韌皮部全割和木質(zhì)部半割處理的駱駝刺氣孔導(dǎo)度分別降低33.1%, 51.8%和46.1%,并且差異均達(dá)到顯著水平(P<0.05)。
圖2 不同環(huán)割處理下駱駝刺氣孔導(dǎo)度的變化
從圖3可以看出,環(huán)割處理以后,駱駝刺葉片葉綠素(Cal)含量和類胡蘿卜素(Car)含量均表現(xiàn)出相似的趨勢(shì)。其中韌皮部全割下駱駝刺葉片葉綠素a含量,總?cè)~綠素含量,類胡蘿卜素含量,葉綠素a/b分別下降21.1%,18.3%,23.6%,10.7%,并且差異達(dá)顯著水平(0<0.05),葉綠素b含量下降11.9%,但差異未達(dá)顯著水平。而韌皮部半割和木質(zhì)部全割處理下的光合色素各指標(biāo)有小幅下降,但差異均未達(dá)到顯著水平(P>0.5)。
從圖5可以看出,環(huán)割處理5d和10d后,韌皮部半割的各項(xiàng)熒光動(dòng)力學(xué)參數(shù)除了PSⅡ潛在活性Fv/Fo以外均未發(fā)生顯著變化(P>0.05),而韌皮部全割下的各項(xiàng)熒光動(dòng)力學(xué)參數(shù)變化均達(dá)到顯著水平(P<0.05)。其中韌皮部全割下初始熒光Fo在第5天和第10天分別上升了28.7%和7.7%,木質(zhì)部半割下初始熒光Fo在第5天和第10天分別上升了11.5%和11.1%,差異顯著(P<0.05)。韌皮部全割處理下,最大熒光Fm,可變熒光Fv和PSⅡ最大光化學(xué)量子產(chǎn)量Fv/Fm差異達(dá)到顯著水平(P<0.05)。
圖3 不同環(huán)割對(duì)駱駝刺葉片光合色素的影響
該處理下Fm在第5天和第10天分別下降了6.1%和24.6%,F(xiàn)v在第5天和第10天分別下降了12.7%和30.9%,而Fv/Fm在第5天和第10天分別下降7.2%和8.7%。PSⅡ潛在活性Fv/Fo和熒光誘導(dǎo)曲線初始斜率Mo變化幅度比較大,韌皮部全割和木質(zhì)部半割兩種處理下均達(dá)到了顯著水平,其中韌皮部全割處理在第5天和第10天Fv/Fo下降32.0%和35.3,Mo上升46.4%和22.9%;木質(zhì)部半割處理在第5天和第10天后Fv/Fo下降17.9%和13.2,Mo上升35.6%和12.6%。
圖4 不同環(huán)割對(duì)駱駝刺PSⅡ原初光化學(xué)效率和初始熒光參數(shù)的影響
從表1可以看出,與對(duì)照組相比,韌皮部半割下的駱駝刺葉片跟能量有關(guān)的各個(gè)主要的熒光參數(shù)都未達(dá)到顯著水平(P>0.05),而韌皮部全割下駱駝刺葉片中,第5天和第10天各熒光動(dòng)力學(xué)參數(shù)差異均達(dá)到顯著(P<0.05)或極顯著水平(P<0.01)。木質(zhì)部半割下駱駝刺葉片大部分參數(shù)在第5天差異顯著(P<0.05)而第10天差異不顯著(P>0.05)。
表1 環(huán)割處理后駱駝刺葉片主要葉綠素?zé)晒鈪?shù)的變化
4種不同處理下駱駝刺葉片熒光動(dòng)力學(xué)曲線如圖5所示,從圖中可以看出相比于對(duì)照組,韌皮部全割下的駱駝刺葉片初始熒光強(qiáng)度增大而最大熒光強(qiáng)度減小,在處理后第10天,韌皮部全割的熒光強(qiáng)度變化更為明顯,而其他處理的變化都不大。四種處理的熒光動(dòng)力學(xué)曲線呈O-J-I-P4相,沒有出現(xiàn)明顯的K點(diǎn)。
圖5 不同環(huán)割處理對(duì)駱駝刺葉綠素?zé)晒鈩?dòng)力學(xué)曲線的影響
氣孔是植物葉片與環(huán)境進(jìn)行水分、CO2交換的主要通道,其開啟程度直接影響植株體內(nèi)的水分平衡、光合效率以及作物的生產(chǎn)性能[10- 13]。因此氣孔的開閉程度是光合作用和蒸騰作用強(qiáng)度的重要決定因素[14],蒸騰強(qiáng)度與氣孔導(dǎo)度有十分顯著的相關(guān)關(guān)系[15],同時(shí)氣孔導(dǎo)度在一定范圍內(nèi)受到土壤含水量、光照強(qiáng)度、大氣CO2濃度和空氣相對(duì)濕度的影響[16- 17]。在干旱條件下,因?yàn)橹参锏慕琴|(zhì)或蠟質(zhì)發(fā)達(dá)抑制了非氣孔通道的氣體交換,氣孔的作用更加突出。
本文研究結(jié)果顯示,環(huán)割對(duì)駱駝刺葉片氣孔導(dǎo)度造成的影響較為明顯,在環(huán)割之后的第5天,韌皮部全割和木質(zhì)部半割的駱駝刺氣孔導(dǎo)度分別下降了54.8%和33.2%,差異達(dá)到顯著水平(P<0.05),韌皮部半割的駱駝刺氣孔導(dǎo)度上升了1.5%,差異未達(dá)顯著水平(P>0.05)。而在環(huán)割處理后的第10天,韌皮部半割,韌皮部全割和木質(zhì)部半割處理的駱駝刺氣孔導(dǎo)度分別降低33.1%, 51.8%和46.1%,差異均達(dá)到顯著水平(P<0.05)。說(shuō)明在短期內(nèi),駱駝刺葉片就可以通過(guò)氣孔開閉,降低氣孔導(dǎo)度,以適應(yīng)環(huán)割對(duì)于駱駝刺枝條造成的傷害。韌皮部半割和木質(zhì)部半割的氣孔導(dǎo)度在第10天相比于第5天有了較為明顯的下降,而韌皮部全割的氣孔導(dǎo)度不再持續(xù)下降,說(shuō)明短期內(nèi)環(huán)割對(duì)于駱駝刺氣孔導(dǎo)度的影響控制在一定范圍內(nèi),不會(huì)隨著時(shí)間的推移無(wú)限制下降。氣孔導(dǎo)度和水勢(shì)存在著很好的相關(guān)性,水勢(shì)越高,氣孔導(dǎo)度也越大[18],考慮到氣孔導(dǎo)度與植物水勢(shì)和光合速率的密切關(guān)系,駱駝刺氣孔導(dǎo)度的降低可能指示了駱駝刺環(huán)割之后葉片水分供應(yīng)的不足,氣孔導(dǎo)度下降引起的CO2供應(yīng)不足很有可能作為駱駝刺光合作用下降的前奏。若植物體的環(huán)割傷口在較長(zhǎng)時(shí)間內(nèi)得不到愈合,很可能會(huì)對(duì)植物的生長(zhǎng)產(chǎn)生限制,造成不利影響,同時(shí)環(huán)割對(duì)駱駝刺的這種傷害機(jī)制,很可能對(duì)大部分荒漠區(qū)的灌木都適用。
光合色素在植物光合作用原初光反應(yīng)中起著關(guān)鍵作用,其含量變化往往與葉片生理活性、植物對(duì)環(huán)境的適應(yīng)和抗逆性有關(guān)[19]。葉片光合色素含量的消長(zhǎng)規(guī)律是反映葉片生理活性變化的重要指標(biāo)之一,與葉片光合機(jī)能大小具有密切關(guān)系[20],光合色素含量的高低也可作為植物受脅迫及外界環(huán)境因子干擾的指示器[21- 22]。了解和掌握葉片的葉綠素含量變化規(guī)律及其光合速率的關(guān)系是提高植物光合生產(chǎn)效率增強(qiáng)植物抗病性的理論基礎(chǔ)[23]。
我們的研究結(jié)果表明,短期韌皮部半割對(duì)于駱駝刺光合色素含量及葉綠素a/b的變化不明顯。韌皮部全割下,駱駝刺葉片葉綠素a,b含量都有了顯著的下降。說(shuō)明韌皮部全割對(duì)于駱駝刺已經(jīng)產(chǎn)生了明顯的傷害,葉綠素含量的降低也會(huì)降低植物對(duì)于光合產(chǎn)物的同化,對(duì)植物的生長(zhǎng)產(chǎn)生不利影響。這可能是環(huán)割口上部光合產(chǎn)物的增加,葉片通過(guò)葉綠素含量的降低這種反饋調(diào)節(jié)機(jī)制來(lái)減小光合產(chǎn)物在環(huán)割口上部的繼續(xù)增加,該反饋調(diào)節(jié)機(jī)制與源庫(kù)理論的光合產(chǎn)物的增加能夠降低光合作用的反饋調(diào)節(jié)機(jī)制相似[24];葉綠素含量的下降也有可能是環(huán)割導(dǎo)致根部呼吸作用的降低繼而影響無(wú)機(jī)離子的吸收進(jìn)而使得光合色素的合成受阻造成的。木質(zhì)部半割下,駱駝刺葉綠素a,b含量沒有明顯的下降,而葉綠素a/b卻有了顯著的下降。這說(shuō)明雖然木質(zhì)部半割在光合色素的絕對(duì)含量方面下降不明顯,但葉綠素a/b的下降將導(dǎo)致直接參與光化學(xué)反應(yīng)的分子減少,光合作用也會(huì)因此而降低。這也說(shuō)明雖然木質(zhì)部半割對(duì)于駱駝刺產(chǎn)生的傷害不如木質(zhì)部全割來(lái)的明顯,但是它對(duì)于駱駝刺光合作用的抑制作用也是不可忽略的,并且該抑制作用有可能會(huì)隨著處理時(shí)間的增加而增強(qiáng)。在韌皮部全割和木質(zhì)部半割處理下,駱駝刺類胡蘿卜素含量都是顯著下降的。這將使得植物通過(guò)類胡蘿卜素使吸收的多余光能以熱的形式耗散的能力降低,使得葉綠體避免強(qiáng)光損害的保護(hù)能力降低?;哪畢^(qū)灌木在遭受韌皮部環(huán)狀破壞和木質(zhì)部破壞后可能因?yàn)楣夂仙睾康慕档投鴮?dǎo)致光合作用受抑,繼而導(dǎo)致灌木叢的生長(zhǎng)限制甚至死亡。
葉綠素?zé)晒庹T導(dǎo)(fluorescence induction, FI)是目前植物生理學(xué)中研究光合作用應(yīng)用最廣泛的方法之一,它可以靈敏檢測(cè)激發(fā)能的傳遞、光系統(tǒng)原初光化學(xué)反應(yīng)、電子傳遞及光合碳同化效率等光合作用的各個(gè)過(guò)程以及光合結(jié)構(gòu)的狀態(tài)和效率,是研究葉片功能的靈敏探針[25]。同時(shí),因?yàn)槿~綠素?zé)晒庑盘?hào)包含了十分豐富的光合作用過(guò)程變化的信息,它也被視為植物光合作用與環(huán)境關(guān)系的內(nèi)在探針[26]。目前,國(guó)內(nèi)外對(duì)植物體內(nèi)葉綠素?zé)晒鈩?dòng)力學(xué)的研究已經(jīng)成為一大熱點(diǎn)。
當(dāng)經(jīng)暗適應(yīng)的植物葉片在照光瞬間,熒光以納米級(jí)升到O,這部分熒光稱為初始熒光或固定熒光Fo,反映的實(shí)際是葉綠素分子吸收的光能中,始終無(wú)法被應(yīng)用于光能電子傳遞的份額,其大小取決于PSⅡ天線色素的最初激子密度、天線色素之間以及天線色素到PSⅡ反應(yīng)中心的激發(fā)能傳遞機(jī)率的結(jié)構(gòu)狀態(tài)。因此,這部分熒光強(qiáng)度與光合作用反應(yīng)無(wú)關(guān),而與激發(fā)光的強(qiáng)度和葉綠素含量有關(guān),在一定程度上可反映PSⅡ甚至葉綠素含量[27]。研究發(fā)現(xiàn),在韌皮部全割和木質(zhì)部半割兩種處理下,駱駝刺初始熒光Fo都顯著增大,說(shuō)明在這兩種處理下,捕光色素復(fù)合物(LHCII)結(jié)構(gòu)發(fā)生異化,PSⅡ反應(yīng)中心發(fā)生了不易逆轉(zhuǎn)的破壞,阻礙了光合作用中電子的傳遞。同時(shí)韌皮部全割下的Fo上升幅度更大一些,說(shuō)明韌皮部全割下葉綠體類囊體膜受到損害更大。Fm表示最大熒光產(chǎn)量[28],反映的是PS II的電子傳遞狀況[29]。研究發(fā)現(xiàn),在韌皮部全割這種處理下,駱駝刺最大熒光產(chǎn)量Fm在處理后第5天和第10天顯著減小,說(shuō)明韌皮部全割導(dǎo)致了PSⅡ的電子傳遞能力的降低。最大可變熒光Fv能夠反映出開放狀態(tài)的PSⅡ反應(yīng)中心捕獲激發(fā)能的效率,同時(shí)也能反映出光合作用中PSⅡ原初電子受體QA的氧化還原狀態(tài)和其它可能耗散能量的途徑[30]。研究發(fā)現(xiàn),在韌皮部全割這種處理下,駱駝刺最大可變熒光Fv在處理后第5天和第10天顯著減小,表明韌皮部全割導(dǎo)致駱駝刺開放狀態(tài)的PSⅡ反應(yīng)中心捕獲激發(fā)能的效率顯著降低而其他處理下光合作用中PSⅡ原初電子受體QA的氧化還原狀態(tài)和其它可能耗散能量的途徑變化不大。最大光化學(xué)量子產(chǎn)量Fv/Fm反映PSⅡ系統(tǒng)反應(yīng)中心內(nèi)部光能轉(zhuǎn)化效率,非脅迫條件下比較穩(wěn)定[31],F(xiàn)v/Fo則反映了PSⅡ的潛在活性,也是反應(yīng)植物光化學(xué)反應(yīng)情況的重要參數(shù)[32],在植物受到逆境脅迫時(shí)兩者一般呈下降趨勢(shì)[33]。在韌皮部全割和木質(zhì)部半割處理下,駱駝刺Fv/Fm,F(xiàn)v/Fo的下降反映了這兩種處理在一定程度上破壞了駱駝刺PSⅡ的結(jié)構(gòu),降低了PSⅡ的活性,使得植物產(chǎn)生了明顯的脅迫。上述的結(jié)果表明,駱駝刺等灌木在受到韌皮部環(huán)割和木質(zhì)部半割等干擾脅迫之后,葉綠素PSⅡ受到破壞繼而導(dǎo)致植物體光合速率的降低,不可恢復(fù)的韌皮部和木質(zhì)部機(jī)械損傷將可能導(dǎo)致植物生長(zhǎng)的嚴(yán)重限制甚至死亡。
研究表明,熒光動(dòng)力學(xué)曲線中K相的出現(xiàn)是放氧復(fù)合體(OEC)受傷害的一個(gè)標(biāo)志。研究發(fā)現(xiàn)四種處理下,駱駝刺葉片葉綠素?zé)晒鈩?dòng)力學(xué)曲線均未出現(xiàn)明顯的K相,依舊為典型的O-J-I-P曲線。表明短期環(huán)割對(duì)駱駝刺葉片放氧復(fù)合體(OEC)未造成明顯的傷害,干擾造成的脅迫尚在一定范圍內(nèi)。但在環(huán)割處理后的第10天,韌皮部全割的熒光動(dòng)力學(xué)曲線較其它三者有了很顯著的變化,這可能說(shuō)明隨著時(shí)間的推移,韌皮部全割對(duì)駱駝刺光系統(tǒng)Ⅱ產(chǎn)生的傷害在逐步加重。3種機(jī)械損傷中,韌皮部的完全損傷可能對(duì)灌木的光系統(tǒng)Ⅱ破壞最為嚴(yán)重,并且不容易隨著時(shí)間推移得到恢復(fù),植物的光合作用也因此可能長(zhǎng)期受到抑制并最終導(dǎo)致植物的死亡。
韌皮部環(huán)割直接導(dǎo)致韌皮部篩管破壞,繼而引起由葉片生產(chǎn)的光合產(chǎn)物通過(guò)韌皮部向下運(yùn)輸?shù)倪^(guò)程受阻。而木質(zhì)部環(huán)割主要導(dǎo)致木質(zhì)部導(dǎo)管的破壞,使得植物通過(guò)根吸收的水分和無(wú)機(jī)離子向上運(yùn)輸?shù)倪^(guò)程受阻。韌皮部半割對(duì)于策勒綠洲駱駝刺的傷害在短期內(nèi)表現(xiàn)得并不明顯。而韌皮部全割在短期內(nèi)就能使得駱駝刺氣孔導(dǎo)度,葉綠素含量,類胡蘿卜素含量降低,駱駝刺的光合原初反應(yīng)遭到抑制,PSⅡ結(jié)構(gòu)和功能遭到損害,活性降低,使得光合器官對(duì)光能的吸收、傳遞、轉(zhuǎn)化和電子捕獲等過(guò)程遭到抑制。木質(zhì)部半割對(duì)于駱駝刺的傷害處于兩者之間,其中氣孔導(dǎo)度和與能量有關(guān)的幾個(gè)熒光動(dòng)力學(xué)參數(shù)變化較大。3種處理對(duì)駱駝刺的傷害程度是PF>XS>PS。在處理之后的第5天和第10天,氣孔導(dǎo)度和熒光參數(shù)大多沒有發(fā)生明顯改變,短期內(nèi)環(huán)割對(duì)駱駝刺的傷害程度隨時(shí)間推移變化較小。由于試驗(yàn)只在一個(gè)較短的時(shí)間內(nèi)進(jìn)行,而且也沒有測(cè)量環(huán)割之后駱駝刺的光合速率及光合產(chǎn)物的數(shù)據(jù),關(guān)于環(huán)割對(duì)于駱駝刺生理影響的長(zhǎng)期和更全面的機(jī)制還需深入研究。
致謝:感謝劉波、李嘗君、羅維成、宋聰、韓章勇、馬洋、郭自春對(duì)實(shí)驗(yàn)的幫助。
:
[1] Wang W J, Hu Y, Wang H M, Zu Y G, Li X Y. Effects of girdling on carbohydrates in the xylem wood and phloem bark of Korean pine (Pinuskoraiensis). Acta Ecologica Sinica, 2007, 27(8): 3472- 3481.
[2] Yano T, Shinkai S, Moriguchi K. Investigations on the control of physiological fruit dropping in the ′Tonewase′ Japanese persimmon. Bulletin of Ehime Fruit Tree Experiment Station, 1999, (13): 11- 18.
[3] Zeng F J, Liu B, He J X, Zhang X L, Liu Z, An G X, Zeng J. Effect of irrigation on nitrogen characteristics ofAlhagisparsifoliaseedlings. Acta Ecologica Sinica, 2010, 30(8): 2118- 2127.
[4] Luo W C, Zeng F J, Liu B, Zhang L G, Song C, Peng S L. Response of root systems to soil heterogeneity and interspecific competition inAlhagisparsifolia. Chinese Journal of Plant Ecology, 2012, 36(10): 1015- 1023.
[5] Bhupinderpal-Singh, Nordgren A, Ottosson L?fvenius M, H?gberg M N, Mellander P E, H?gberg P. Tree root and soil heterotrophic respiration as revealed by girdling of boreal Scots pine forest: extending observations beyond the first year. Plant, Cell & Environment, 2003, 26(8): 1287- 1296.
[6] Sun M, Xie L J, Kang M L, Tian Z H, Li Y H. Studies on the correlation between flower formation of rhododendron moulmainense Hook. f. and soil factors and some physiological charactors. Journal of Anhui Agricultural Sciences, 2009, 37(16): 7392- 7395.
[7] Li H S. Plant Physiological Biochemical Experiment Principles and Techniques. Beijing: Higher Education Press, 1999: 131- 261.
[8] Strasser R J, Srivastava A, Tsimilli-Michael M. The fluorescence transient as a tool to characterize and screen photosynthetic samples // Yunus M, Pathre U, Mohanty P, eds. Probing Photosynthesis: Mechanisms, Regulation and Adaptation. London: Taylor and Francis, 2000: 445- 483.
[9] Li P M, Gao H Y, Strasser R J. Application of the fast chlorophyll fluorescence induction dynamics analysis in photosynthesis study. Acta Photophysiologica Sinica, 2005, 31(6): 559- 566.
[10] Casson S, Gray J E. Influence of environmental factors on stomatal development. New Phytologist, 2008, 178(1): 9- 23.
[11] Qin Y Y, Gan X M, Jiang X X, Li J W, Wei F, Liang S C. Dynamics in leaf stomatal conductance ofSpartinaalterniflorain mangrove habitats. Chinese Journal of Ecology, 2009, 28(10): 1991- 1995.
[12] Wang R Y, Yang X G, Zhao H, Liu H Y. Eco-physiological characteristics of wheat leaf photosynthesis and their responses to environmental factor in semi-arid rain-fed region. Chinese Journal of Ecology, 2006, 25(10): 1161- 1166.
[13] Zuo Y M, Chen Q B, Deng Q Q, Tang J, Luo H W, Wu T K, Yang Z F. Effects of soil moisture, light, and air humidity on stomatal conductance of cassava. Chinese Journal of Ecology, 2011, 30(4): 689- 693.
[14] Warren C R, Dreyer E. Temperature response of photosynthesis and internal conductance to CO2: results from two independent approaches. Journal of Experimental Botany, 2006, 57(12): 3057- 3067.
[15] Ruan C J, Li D Q. Transpiration characteristics and influence factors ofHippophaerhamnoidesL. in Loess Hilly Region. Chinese Journal of Applied and Environmental Biology, 2001, 7(4): 327- 331.
[16] Calatayud P A, Llovera E, Bois J F, Lamaze T. Photosynthesis in drought-adapted cassava. Photosynthetica, 2000, 38(1): 97- 104.
[17] Si J H, Chang Z Q, Su Y H, Xi H Y, Feng Q. Stomatal conductance characteristics ofPopuluseuphraticaleaves and response to environmental factors in the extreme arid region. Acta Botanica Boreali-Occidentalia Sinica, 2008, 28(1): 125- 130.
[18] Sun G C, Zhao P, Zeng X P, Cai X A. Hydraulic responses of stomatal conductance in leaves of successional tree species in subtropical forest to environmental moisture. Acta Ecologica Sinica, 2009, 29(2): 698- 708.
[19] Su X, Hu D Q, Lin Z F, Lin G Z, Kong G H, Peng C L. Effect of air pollution on the chlorophyll fluorescence characters of two afforestation plants in Guangzhou. Acta Phytoecologica Sinica, 2002, 26(5): 599- 604.
[20] Zheng P Y, Jiang Z H, Wang J W. Studies on the changing rule of chlorophyll con-tents in individual leaf blades of summer maize Jing-Zao. Acta Agriculturae Boreali-Sinica, 1988, 3(1): 21- 27.
[21] Richardson A D, Duigan S P, Berlyn G P. An evaluation of noninvasive methods to estimate foliar chlorophyll content. New Phytologist, 2002, 153(1): 185- 194.
[22] Shang Y X, Zhang B, Zhu P J, Shi S B. Response of Gentiana straminea to UV-B radiation by analysis of photosynthetic pigment contents and leaf thickness. Acta Botanica Boreali-Occidentalia Sinica, 2010, 30(12): 2472- 2478.
[23] Curran P J, Dungan J L, Gholz H L. Exploring the relationship between reflectance red edge and chlorophyll content in slash pine. Tree Physiology, 1990, 7(4): 33- 48.
[24] Arp W J. Effects of source-sink relations on photosynthetic acclimation to elevated Cos. Plant, Cell & Environment, 1991, 14(8): 869- 875.
[25] Kooten O, Snel J F H. The use of chlorophyll fluorescence nomenclature in plant stress physiology. Photosynthesis Research, 1990, 25(3): 147- 150.
[26] Bolhar-Nordenkampf H R, Long S P, Baker N R, Oquist G, Schreiber U, Lechner E G. Chlorophyll fluorescence as a probe of the photosynthetic competence of leaves in the field: a review of current instrumentation. Functional Ecology, 1989, 3(4): 497- 514.
[27] Zhang S R. A discussion on chlorophyll fluorescence kinetics parameters and their significance. Chinese Bulletin of Botany, 1999, 16(4): 444- 448.
[28] Kooten O, Snel J F H. The use of chlorophyll fluorescence nomenclature in plant stress physiology. Photosynthesis Research, 1990, 25(3): 147- 150.
[29] Krause G H, Weis E. Chlorophyll fluorescence and photosynthesis: the basics. Annual Review of Plant Physiology and Plant Molecular Biology, 1991, 42(1): 313- 349.
[30] Chen Y Z, Li X P, Xia L, Guo J Y. The application of chlorophyll fluorescence technique in the study of responses of plants to environmental stresses. Journal of Tropical and Subtropical Botany, 1995, 3(4): 79- 86.
[31] Schreiber U, Bilger W, Neubauer C. Chlorophyll fluorescence as a nonintrusive indicator for rapid assessment of in vivo photosynthesis. Ecological Studies: Analysis and Synthesis, 1994, 100: 49- 70.
[32] Genty B, Briantais J M, Baker N R. The relationship between the quantum yield of photosynthetic electron transport and quenching of chlorophyll fluorescence. Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-General Subjects, 1989, 990(1): 87- 92.
[33] Zhang M, Wang H J, Yu C Q. The examination of high temperature stress ofAmmopiptanthusmongolicusby chlorophyll fluorescence induction parameters. Ecology and Environmental Sciences, 2009, 18(6): 2272- 2277.
[34] Strasser R J, Srivastava A, Tsimilli-Michael M. The fluorescence transient as a tool to characterize and screen photosynthetic samples // Yunus M, Pathre U, Mohanty P, eds. Probing Photosynthesis: Mechanisms, Regulation and Adaptation. London: Taylor and Francis, 2000: 445- 483.
[35] Strasser R J, Tsimilli-Michael M, Srivastava A. Analysis of the chlorophyll a fluorescence transient. Chlorophyll a Fluorescence, 2004, 19: 321- 362.
[36] van Heerden P D R, Tsimilli-Michael M, Krüger G H J, Strasser R J. Dark chilling effects on soybean genotypes during vegetative development: parallel studies of CO2assimilation, chlorophyll a fluorescence kinetics O-J-I-P and nitrogen fixation. Physiologia Plantarum, 2003, 117(4): 476- 491.
參考文獻(xiàn):
[1] 王文杰, 胡英, 王慧梅, 祖元?jiǎng)? 李雪瑩. 環(huán)剝對(duì)紅松 (Pinuskoraiensis) 韌皮部和木質(zhì)部碳水化合物的影響. 生態(tài)學(xué)報(bào), 2007, 27(8): 3472- 3481.
[3] 曾凡江, 劉波, 賀俊霞, 張曉蕾, 劉鎮(zhèn), 安桂香, 曾杰. 駱駝刺幼苗氮素特征對(duì)不同灌溉量的響應(yīng). 生態(tài)學(xué)報(bào), 2010, 30(8): 2118- 2127.
[4] 羅維成, 曾凡江, 劉波, 張利剛, 宋聰, 彭守蘭. 疏葉駱駝刺根系對(duì)土壤異質(zhì)性和種間競(jìng)爭(zhēng)的響應(yīng). 植物生態(tài)學(xué)報(bào), 2012, 36(10): 1015- 1023.
[6] 孫敏, 謝利娟, 康美麗, 田自華, 李永紅. 毛棉杜鵑成花與土壤因子和某些生理特性的相關(guān)研究. 安徽農(nóng)業(yè)科學(xué), 2009, 37(16): 7392- 7395.
[7] 李合生. 植物生理生化實(shí)驗(yàn)原理和技術(shù). 北京: 高等教育出版社, 1999: 131- 261.
[12] 王潤(rùn)元, 楊興國(guó), 趙鴻, 劉宏誼. 半干旱雨養(yǎng)區(qū)小麥葉片光合生理生態(tài)特征及其對(duì)環(huán)境的響應(yīng). 生態(tài)學(xué)雜志, 2006, 25(10): 1161- 1166.
[13] 左應(yīng)梅, 陳秋波, 鄧權(quán)權(quán), 唐建, 羅海偉, 巫鐵凱, 楊重法. 土壤水分, 光照和空氣濕度對(duì)木薯氣孔導(dǎo)度的影響. 生態(tài)學(xué)雜志, 2011, 30(4): 689- 693.
[15] 阮成江, 李代瓊. 黃土丘陵區(qū)沙棘的蒸騰特性及影響因子. 應(yīng)用與環(huán)境生物學(xué)報(bào), 2001, 7(4): 327- 331.
[17] 司建華, 常宗強(qiáng), 蘇永紅, 席海洋, 馮起. 胡楊葉片氣孔導(dǎo)度特征及其對(duì)環(huán)境因子的響應(yīng). 西北植物學(xué)報(bào), 2008, 28(1): 125- 130.
[18] 孫谷疇, 趙平, 曾小平, 蔡錫安. 亞熱帶森林演替樹種葉片氣孔導(dǎo)度對(duì)環(huán)境水分的水力響應(yīng). 生態(tài)學(xué)報(bào), 2009, 29(2): 698- 708.
[19] 蘇行, 胡迪琴, 林植芳, 林桂珠, 孔國(guó)輝, 彭長(zhǎng)連. 廣州市大氣污染對(duì)兩種綠化植物葉綠素?zé)晒馓匦缘挠绊? 植物生態(tài)學(xué)報(bào), 2002, 26(5): 599- 604.
[20] 鄭丕堯, 蔣鐘懷, 王經(jīng)武. 夏播 “京早 7 號(hào)” 玉米葉片葉綠素含量消長(zhǎng)規(guī)律的研究. 華北農(nóng)學(xué)報(bào), 1988, 3(1): 21- 27.
[22] 尚艷霞, 張波, 朱鵬錦, 師生波. 麻花艽葉片光合色素含量及厚度對(duì) UV-B 輻射的響應(yīng). 西北植物學(xué)報(bào), 2010, 30(12): 2472- 2478.
[27] 張守仁. 葉綠素?zé)晒鈩?dòng)力學(xué)參數(shù)的意義及討論. 植物學(xué)通報(bào), 1999, 16(4): 444- 448
[30] 陳貽竹, 李曉萍, 夏麗, 郭俊彥. 葉綠素?zé)晒饧夹g(shù)在植物環(huán)境脅迫研究中的應(yīng)用. 熱帶亞熱帶植物學(xué)報(bào), 1995, 3(4): 79- 86.
[33] 張謐, 王慧娟, 于長(zhǎng)青. 超旱生植物沙冬青高溫脅迫下的快速葉綠素?zé)晒鈩?dòng)力學(xué)特征. 生態(tài)環(huán)境學(xué)報(bào), 2009, 18(6): 2272- 2277.