高 麗, 諶 顏, 扈廷茂, 李光鵬
內(nèi)蒙古大學(xué)生殖生物學(xué)與生物技術(shù)教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室, 呼和浩特 010021
肌肉生長(zhǎng)抑制素(myostatin,MSTN),也稱(chēng)為生長(zhǎng)分化因子8(growth differentiation factor 8,GDF8),是轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子β(transforming growth factor-β,TGF-β)超家族成員。TGF-β超家族成員在維持組織穩(wěn)態(tài)和對(duì)胚胎發(fā)育、骨骼肌生長(zhǎng)發(fā)育方面發(fā)揮著重要的調(diào)控作用。在研究比利時(shí)蘭牛和皮埃蒙特牛時(shí)發(fā)現(xiàn),這兩種牛的一些個(gè)體,其臀部、上臂、大腿、胸以及起支撐作用的肌肉群非常發(fā)達(dá),人們把這種現(xiàn)象稱(chēng)之為雙肌臀現(xiàn)象,并發(fā)現(xiàn)這種現(xiàn)象與MSTN基因有關(guān)。本文對(duì)MSTN基因在哺乳動(dòng)物中的最新研究進(jìn)展進(jìn)行了綜述,重點(diǎn)闡述和討論了MSTN通路與其他通路之間的相互關(guān)系,及試驗(yàn)條件下MSTN對(duì)肌肉發(fā)育相關(guān)基因的作用等。
在研究具有雙肌臀現(xiàn)象的比利時(shí)藍(lán)牛和皮爾蒙特牛時(shí),發(fā)現(xiàn)比利時(shí)藍(lán)牛的MSTN基因第3外顯子缺失了11 bp(937~947),這一突變使得自缺失區(qū)段后面的第14 個(gè)密碼子開(kāi)始的翻譯功能被破壞,因此C末端只有7個(gè)氨基酸可以翻譯,其余的102個(gè)氨基酸(274~375)都將丟失,從而導(dǎo)致了蛋白質(zhì)功能的缺失[1]。在皮爾蒙特雙肌臀牛中,檢測(cè)出2個(gè)點(diǎn)突變,其中一個(gè)突變是第3號(hào)外顯子的1 056 G→A突變,導(dǎo)致該基因所編碼的氨基酸由半胱氨酸突變成為酪氨酸,結(jié)果肌肉生長(zhǎng)抑制素的功能幾乎全部喪失;通過(guò)Southern雜交分析表明,該雙肌牛在這個(gè)位點(diǎn)是純合的。另一個(gè)突變的外顯子(C→A),導(dǎo)致編碼的亮氨酸突變成為苯丙氨酸。在MSTN無(wú)義動(dòng)物中,骨骼肌顯著增加,與野生型相比其脂肪含量顯著下降[1]。在自然突變的牛、羊、狗和人以及抑制這個(gè)蛋白功能的成體鼠中都觀察到了相似的現(xiàn)象,而過(guò)表達(dá)MSTN會(huì)導(dǎo)致肌肉量的減少。Taylor等[2]研究發(fā)現(xiàn),重組MSTN 可以阻礙細(xì)胞增生,也會(huì)抑制相關(guān)蛋白質(zhì)的合成,從而導(dǎo)致肌肉不發(fā)達(dá)。Ríos等[3]將MSTN蛋白加入培養(yǎng)基時(shí)發(fā)現(xiàn),對(duì)C2C12成肌細(xì)胞的抑制作用與所加蛋白濃度的增加成正比;用小鼠MSTN 的cDNA 重組體瞬時(shí)轉(zhuǎn)染C2C12成肌細(xì)胞,可以有效地抑制細(xì)胞增殖。這些研究結(jié)果都表明MSTN對(duì)于骨骼肌生長(zhǎng)是一個(gè)負(fù)調(diào)控因子。
在胚胎發(fā)育階段,MSTN只在骨骼肌中表達(dá),控制成肌細(xì)胞分化和增殖。但在成年期,它不僅在骨骼肌中表達(dá),也在其他組織中表達(dá)(例如心臟、脂肪和乳腺組織)。在健康心臟中MSTN的表達(dá)是很低的,而且大多是在浦肯野氏纖維中表達(dá),而在心肌細(xì)胞中沒(méi)有檢測(cè)到[4,5]。在發(fā)生心肌梗塞的羊中發(fā)現(xiàn)MSTN表達(dá)有提高,但其表達(dá)只局限在損傷的區(qū)域。George等[4]報(bào)道了在衰竭的心臟中MSTN表達(dá)水平增加,這一結(jié)果與Heineke等[5]的研究結(jié)果一致,證明通過(guò)心肌細(xì)胞產(chǎn)生的MSTN可以刺激心臟的肌肉萎縮。這些研究表明MSTN對(duì)于心肌細(xì)胞也是一個(gè)負(fù)調(diào)控因子,但是其具體機(jī)制與骨骼肌中是否一致還有待進(jìn)一步的研究。
MSTN是一種分泌型多肽,MSTN cDNA由一個(gè)開(kāi)放閱讀框(opening reading frame,ORF)和可以編碼376個(gè)氨基酸的核苷酸序列組成,含有3個(gè)外顯子和2個(gè)內(nèi)含子。未經(jīng)過(guò)剪切加工的全長(zhǎng)蛋白為52 kDa,具有TGF-β超家族共有的分子結(jié)構(gòu),即由信號(hào)肽、編碼前肽(26 kDa)的N-末端區(qū)和編碼成熟肽(12.5 kDa)的 C-末端區(qū)三部分組成52 kDa的前體蛋白,在N-末端區(qū)和C-末端區(qū)之間有一個(gè)蛋白酶解加工位點(diǎn)。52 kDa的前肽經(jīng)過(guò)蛋白酶切加工后,會(huì)釋放出26 kDa的活性肽,這種加工后的成熟肽與特異性受體結(jié)合從而發(fā)揮生物學(xué)效應(yīng)[6]。
哺乳動(dòng)物的MSTN在結(jié)構(gòu)上高度保守,羊、豬、馬和人等不同物種的MSTN基因的編碼區(qū)高度保守,牛和綿羊僅有1~3個(gè)堿基的差別。對(duì)牛的肌肉生長(zhǎng)抑制素基因全序列分析顯示,該基因包含3個(gè)外顯子和2個(gè)內(nèi)含子。第1和第2個(gè)外顯子的長(zhǎng)度分別為506 bp和374 bp。第3個(gè)外顯子的長(zhǎng)度隨著poly(A)尾巴位點(diǎn)的不同而有所不同(1 701 bp、1 812 bp或1 887 bp)。牛MSTN基因序列分析表明僅有一個(gè)轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn)在轉(zhuǎn)錄起始密碼子ATG上游133 bp處。在綿羊中存在一個(gè)接合突變體,它移除了一部分受體結(jié)合區(qū)域的編碼序列,包含256個(gè)氨基酸。這個(gè)接合突變體是MSTN基因的拮抗因子,其所編碼的蛋白可以與MSTN蛋白相結(jié)合從而發(fā)揮拮抗作用,抑制MSTN介導(dǎo)的信號(hào)通路[7]。
與其他TGF-β超家族成員一樣,MSTN通過(guò)激活素受體來(lái)介導(dǎo)信號(hào)傳導(dǎo)?;罨腗STN與激活素受體ActⅡB結(jié)合發(fā)揮功能,抑制細(xì)胞增殖和分化。激活素受體是跨膜的絲蘇氨酸激酶,分為Ⅰ型受體和Ⅱ型受體。Ⅰ型受體ActRⅠ(ALK4和ALK5)有唯一的Gs區(qū)域,該區(qū)域在細(xì)胞內(nèi)與激酶區(qū)域相鄰;而ActRⅡ受體沒(méi)有這一區(qū)域[8]。MSTN與ActRⅡB結(jié)合后再與Ⅰ型受體組裝,使其Gs區(qū)域磷酸化。因此,MSTN的信號(hào)是通過(guò)激活兩個(gè)受體的復(fù)合物來(lái)介導(dǎo)的[8]。
MSTN通過(guò)ActRⅡB發(fā)揮的信號(hào)調(diào)控對(duì)于骨骼肌生長(zhǎng)是決定性的。研究發(fā)現(xiàn),人類(lèi)的ActRⅡB自然缺失會(huì)導(dǎo)致肌肉含量顯著的增加;在鼠類(lèi)中,阻斷這一受體也得到了相同的結(jié)果。但是研究也發(fā)現(xiàn),在MSTN敲除的小鼠中用sActRⅡB(ActRⅡB的可溶形式,可以作為MSTN的誘餌受體)處理,肌肉量增加15%~25%。這表明除了MSTN之外,還至少存在一種配體能夠與受體結(jié)合,來(lái)調(diào)控骨骼肌的量。這就可以解釋為什么在臨床試驗(yàn)中阻礙MSTN對(duì)于肌肉重量沒(méi)有顯著的影響[9]。該發(fā)現(xiàn)表明,MSTN不是調(diào)控肌肉萎縮的信號(hào)通路中的唯一配體。還有研究表明,在一個(gè)特定的水平上,MSTN可以阻止惡質(zhì)病中肌肉萎縮[10]。
骨骼肌含量的維持是通過(guò)兩種分子機(jī)制起作用:蛋白合成和蛋白降解。盡管關(guān)于MSTN在調(diào)控骨骼肌生長(zhǎng)方面了解較多,但其發(fā)揮作用的具體機(jī)制尚不清楚。有研究表明,MSTN與ActRⅡB的結(jié)合導(dǎo)致Smad2或Smad3的羥基端區(qū)域2個(gè)絲氨酸殘基磷酸化,使得Smad2/Smad3與Smad4結(jié)合形成異源二聚體,這個(gè)二聚體可以轉(zhuǎn)移到細(xì)胞核,進(jìn)而激活靶基因的轉(zhuǎn)錄[11]。最近的研究表明,幾個(gè)MSTN的結(jié)合蛋白,包括GDF相關(guān)的血清蛋白1(GASP-1)、血清蛋白2(GASP-2)和卵泡抑素(Follistatin,F(xiàn)STN)可以抑制MSTN與ActRⅡB的結(jié)合而調(diào)控MSTN信號(hào)通路[12]。
肌肉細(xì)胞的決定和最終分化都是由一個(gè)具有4個(gè)生肌調(diào)節(jié)因子(myogenic regulatory factor,MRF)的調(diào)控網(wǎng)絡(luò)所支持:生肌因子5(MYF5)、肌肉特異性調(diào)控因子4、6(MRF4、MYF6)、成肌細(xì)胞決定蛋白(myoblast determination protein, MyoD)和肌細(xì)胞生成素(myogenin,MyoG)。MYF5和MyoD被認(rèn)為是決定因子,而MyoG是對(duì)于最終成肌細(xì)胞分化定型起到關(guān)鍵作用[13]。成對(duì)盒蛋白3(paired box 3,Pax3)基因作為MRF的上游基因,能通過(guò)控制Dmrt2的表達(dá)而激活MYF5,Dmrt2反過(guò)來(lái)會(huì)激活體節(jié)中Myf5的增強(qiáng)子[14]。缺失Pax3和MYF5的小鼠,其軀體肌肉幾乎不發(fā)育,MyoD的表達(dá)會(huì)下調(diào)。這表明MyoD的表達(dá)依賴(lài)于Pax3或MYF5[15]。目前還不能確切了解Pax3怎樣激活MyoD的表達(dá),但使用前體體節(jié)外植塊的實(shí)驗(yàn)已經(jīng)證明WNT信號(hào)通路通過(guò)依賴(lài)于Pax3的方式調(diào)控MyoD的表達(dá)[16]。
由此可以初步得出,MSTN的功能發(fā)揮可能是通過(guò)以下方式進(jìn)行的:活化的MSTN與其受體ActⅡB結(jié)合后使Smad2/3磷酸化,Smad2/3是一個(gè)甲基轉(zhuǎn)移酶,可以通過(guò)溴結(jié)構(gòu)域蛋白BRD4調(diào)控MSTN的表達(dá)[17]。磷酸化的Smad2/3與Smad4結(jié)合形成復(fù)合物,而Smad7會(huì)抑制這一過(guò)程[11]。形成的Smad2/3和Smad4的復(fù)合物通過(guò)抑制Pax3的活性從而抑制MYF5/MRF4的活性,進(jìn)而抑制MyoD和MyoG的活性,并最終抑制肌生成[15]。
MSTN除了能夠與其受體結(jié)合從而發(fā)揮功能外,還可以與其他信號(hào)通路產(chǎn)生對(duì)話(huà)。肌肉生長(zhǎng)的一個(gè)主要的正調(diào)控因子是胰島素樣生長(zhǎng)因子1(insulin-like growth factor-1,IGF-1)[18]。在正常條件下,IGF-1信號(hào)似乎是主導(dǎo)的而且會(huì)阻斷MSTN通路。而且一般認(rèn)為,IGF-1是哺乳動(dòng)物真正的生長(zhǎng)調(diào)節(jié)因子,研究已經(jīng)表明哺乳動(dòng)物的IGF-1基因是介導(dǎo)生長(zhǎng)激素(growth hormone,GH)發(fā)揮促生長(zhǎng)效應(yīng)的主要因子。GH通過(guò)與生長(zhǎng)激素受體(growth hormone receptor,GHR)結(jié)合,可以產(chǎn)生IGF-1,從而調(diào)節(jié)生長(zhǎng)發(fā)育[19]。IGF-1調(diào)控MSTN信號(hào)途徑的機(jī)制包括對(duì)轉(zhuǎn)錄因子的抑制,轉(zhuǎn)錄因子的抑制是通過(guò)PI3K/Akt信號(hào)通路激活而導(dǎo)致的磷酸化所實(shí)現(xiàn)的。當(dāng)IGF-1與其配體結(jié)合后,激活PI3K/Akt信號(hào)通路,使Akt磷酸化,導(dǎo)致叉頭轉(zhuǎn)錄因子(forkhead box class O,F(xiàn)oxO)的活性受到抑制,使其停留在細(xì)胞質(zhì)中而不發(fā)揮作用,從而抑制肌肉萎縮基因表達(dá)。而MSTN可以通過(guò)抑制Akt磷酸化,從而提高FoxO活性,提高肌肉萎縮基因的表達(dá)[20]。
Akt磷酸化后會(huì)導(dǎo)致GSK-3β的激活,周期蛋白E是細(xì)胞周期中G1期的重要成分,也通過(guò)PI3K/Akt通路受到調(diào)控[21]。MSTN下調(diào)后,使得 Akt磷酸化而抑制cyclin E的磷酸化[22],使cyclin E與CDK2結(jié)合激活了CDK2的活性,解除Rb蛋白對(duì)S期基因轉(zhuǎn)錄因子E2F的抑制,促進(jìn)DNA復(fù)制起始復(fù)合物的組裝、著絲粒復(fù)制,以及S期組蛋白基因轉(zhuǎn)錄,使細(xì)胞通過(guò)G1/S期檢驗(yàn)點(diǎn)進(jìn)入S期,從而促進(jìn)增殖和分化。
mTOR是Akt下游的一個(gè)激酶,會(huì)使4E-BP1和p70s6k磷酸化,因此會(huì)誘導(dǎo)蛋白合成的起始[23,24]。在MSTN敲除的小鼠中,Akt/mTOR/p70s6K信號(hào)增加[25],所以激活的Akt誘導(dǎo)產(chǎn)生mTOR信號(hào),導(dǎo)致蛋白合成。
TGF-β信號(hào)通路與Notch信號(hào)通路之間也存在相互作用,激活Notch信號(hào)通路可以抑制TGF-β信號(hào),下調(diào)MSTN的轉(zhuǎn)錄,從而導(dǎo)致肌肉增加[26]。Dlk1(delta-like 1 homolog)是Nocth信號(hào)通路的配體, Dlk1通過(guò)與MSTN信號(hào)通路發(fā)揮作用來(lái)抑制肌管形成,從而抑制成肌細(xì)胞的分化[27],但是具體機(jī)制尚不清楚。還有研究表明,在肌肉形成過(guò)程中存在Wnt信號(hào),可以通過(guò)依賴(lài)和不依賴(lài)β-catenin的方式發(fā)揮作用,雖然其與MSTN的信號(hào)通路之間作用機(jī)制還不清楚,但是已經(jīng)證明了wnt4可以通過(guò)抑制MSTN活性而刺激肌源性分化[28]。
關(guān)于MSTN與其他因子之間的互作關(guān)系,在總結(jié)了已有研究的基礎(chǔ)上,我們做了一些補(bǔ)充和修改。如圖1所示,有4條通路調(diào)控肌肉發(fā)育與分化。①FSTN抑制MSTN與其受體ActⅡB的結(jié)合,從而抑制MSTN信號(hào)通路[29]。②當(dāng)活化的MSTN與其受體ActⅡB結(jié)合后,使Smad2/3磷酸化,磷酸化的Smad2/3與Smad4結(jié)合形成復(fù)合物[11],Smad7會(huì)抑制這一過(guò)程。形成的Smad2/3和Smad4的復(fù)合物抑制Pax3的活性,從而抑制MYF5/MRF4活性,抑制MyoD和MyoG的活性[15],從而抑制肌生成。③當(dāng)活化的MSTN與其受體ActⅡB結(jié)合后,會(huì)抑制PI3K活性,抑制Akt的磷酸化[20],從而激活FoxO。FoxO進(jìn)入細(xì)胞核,激活MuRF1/atrogin1,導(dǎo)致蛋白降解[14,30,31];活化的FoxO與Smad2/3和Smad4的復(fù)合物相互作用,導(dǎo)致蛋白的降解[32],從而抑制肌肉生成。④GH與其受體結(jié)合產(chǎn)生IGF-1,IGF-1與其受體結(jié)合激活PI3K,激活的PI3K可以使Akt磷酸化,進(jìn)而使FoxO磷酸化抑制其活性;激活GSK-3β抑制cyclin E的磷酸化,促進(jìn)cyclin E與CDK2結(jié)合成為復(fù)合體,從而激活CDK2,促進(jìn)細(xì)胞G1/S期的過(guò)渡,促進(jìn)細(xì)胞增殖;激活mTOR促進(jìn)蛋白合成,促進(jìn)肌生成[21]。
圖1 在肌肉發(fā)育與分化過(guò)程中MSTN與其他因子之間的互作關(guān)系
在小鼠中,MSTN無(wú)義的動(dòng)物其骨骼肌顯著增加,且與野生型相比其脂肪含量顯著下降[1,33]。Ríos等[3]發(fā)現(xiàn),鼠MSTN的cDNA重組體瞬時(shí)轉(zhuǎn)染C2C12成肌細(xì)胞時(shí),可以有效地抑制細(xì)胞增殖。本實(shí)驗(yàn)室采用過(guò)表達(dá)載體分別與干擾載體和無(wú)義干擾載體共轉(zhuǎn)染牛肌肉衛(wèi)星細(xì)胞時(shí),發(fā)現(xiàn)MSTN下調(diào)后,引起foxO1、dlk1基因的表達(dá)量下調(diào),而FSTN、IGF1、myoD、myoG、GHR、CDK2和pax3基因的表達(dá)量上調(diào)。
5.1MSTN和Dlk1
Dlk1(delta-like 1 homolog)是表皮生長(zhǎng)因子家族成員[34],Dlk1在骨骼肌生長(zhǎng)發(fā)育中發(fā)揮重要作用。有研究證明,Dlk1通過(guò)與MSTN信號(hào)通路共同發(fā)揮作用來(lái)抑制肌管形成,從而抑制成肌細(xì)胞的分化[27],但是具體機(jī)制尚不清楚。該研究同時(shí)證明MSTN與Dlk1的表達(dá)呈負(fù)相關(guān)[27],即MSTN是肌肉發(fā)育負(fù)調(diào)控因子,Dlk1同樣可以抑制成肌細(xì)胞分化。由此可以認(rèn)為MSTN與Dlk1發(fā)揮協(xié)同作用。
5.2MSTN和FoxO1
FoxO在骨骼肌發(fā)育的基因表達(dá)調(diào)控中起到關(guān)鍵作用[34]。轉(zhuǎn)錄因子FoxO是Fox家族重要成員,包括FoxO1、FoxO3、 FoxO4和FoxO6[35]。研究證明MSTN可以抑制Akt磷酸化,從而提高FoxO活性,達(dá)到提高肌肉萎縮基因表達(dá)的目的[20]。在MSTN下調(diào)后,也下調(diào)了FoxO1的表達(dá)。這可能是因?yàn)镕oxO1可以結(jié)合于MSTN啟動(dòng)子區(qū)域,增強(qiáng)啟動(dòng)子活性,從而上調(diào)MSTN基因的表達(dá)[14]。所以在MSTN表達(dá)下調(diào)的情況下,F(xiàn)oxO1的活性也會(huì)得到負(fù)反饋調(diào)節(jié),從而其表達(dá)量下降。
5.3MSTN和FSTN
FSTN是一種單鏈糖蛋白,是TGF-β超家族成員的天然拮抗劑。FSTN與MSTN結(jié)合通過(guò)抑制其與受體的結(jié)合而抑制其活性[36]。在體內(nèi)過(guò)表達(dá)FSTN導(dǎo)致肌肉肥大,與MSTN無(wú)義的小鼠中觀察到的現(xiàn)象一致[37]。FSTN突變的純合體小鼠肌肉量減少[38],表明FSTN在調(diào)控肌肉生成過(guò)程中發(fā)揮重要作用。本實(shí)驗(yàn)室研究發(fā)現(xiàn),在牛肌肉衛(wèi)星細(xì)胞中,敲減MSTN后,F(xiàn)STN的表達(dá)量得到了提高。
5.4MSTN和IGF-1、GHR
肌肉生長(zhǎng)的一個(gè)主要的正調(diào)控因子是IGF-1。在正常條件下,IGF-1信號(hào)似乎是主導(dǎo)的,而且會(huì)阻斷MSTN的通路[39]。GH通過(guò)與GHR結(jié)合,可以產(chǎn)生IGF-1,IGF-1和GHR對(duì)骨骼肌發(fā)育起到正調(diào)控作用,可以促進(jìn)肌肉的生長(zhǎng)和發(fā)育[40]。在下調(diào)MSTN后,定量檢測(cè)發(fā)現(xiàn)IGF-1和GHR基因表達(dá)得到了上調(diào)[41]。
5.5MSTN和Pax3、MyoD、MyoG
MyoD和MYF5是肌肉特異的轉(zhuǎn)錄因子,組成一個(gè)交叉的轉(zhuǎn)錄調(diào)控網(wǎng)絡(luò),這個(gè)調(diào)控網(wǎng)絡(luò)對(duì)于肌肉細(xì)胞的決定和分化起到核心作用[42],這個(gè)網(wǎng)絡(luò)的破裂會(huì)完全取消骨骼肌的形成。MYF5和MyoD基因被認(rèn)為是決定基因,MyoG是肌細(xì)胞終末端分化的關(guān)鍵因子,促進(jìn)單核成肌細(xì)胞向多核肌細(xì)胞的融合過(guò)程[43]。在敲減MSTN后,通過(guò)實(shí)時(shí)定量的方法檢測(cè)發(fā)現(xiàn)Pax3、MyoD和MyoG的表達(dá)量都得到了下調(diào)。這可能是因?yàn)镸STN通過(guò)TGF-β超家族信號(hào)蛋白Smad3介導(dǎo)抑制Pax3的下調(diào)[44],再由Pax3介導(dǎo)MyoD和MyoG的下調(diào),從而抑制肌分化[45,46]。
5.6MSTN和CDK2
CDK2 是細(xì)胞周期因子[47],研究發(fā)現(xiàn)將CDK2 的抗體注入細(xì)胞或是抑制CDK2 的表達(dá)后,細(xì)胞會(huì)停留在G1期[48], 因此認(rèn)為CDK2 是細(xì)胞進(jìn)入和通過(guò)細(xì)胞周期S期所必需的。在下調(diào)MSTN后,CDK2的活性增強(qiáng)。這可能是由MSTN下調(diào)后,使得Akt磷酸化,從而抑制cyclin E的磷酸化[49],使cyclin E與CDK2結(jié)合,從而激活了CDK2的活性,解除了Rb蛋白對(duì)S期的基因轉(zhuǎn)錄因子E2F的抑制,促進(jìn)DNA復(fù)制起始復(fù)合物的組裝、著絲粒復(fù)制,以及S期組蛋白基因的轉(zhuǎn)錄,使細(xì)胞通過(guò)G1/S期檢驗(yàn)點(diǎn)進(jìn)入S期,從而促進(jìn)增殖和分化。
在山羊成肌細(xì)胞[50]、成纖維細(xì)胞[51]、雞胚胎成纖維細(xì)胞[52]以及綿羊胚胎中[53]用RNAi技術(shù)干擾MSTN基因都會(huì)導(dǎo)致MSTN表達(dá)下調(diào),促進(jìn)細(xì)胞分化和增殖。Hu等[54]獲得了RNAi干擾MSTN的轉(zhuǎn)基因羊,其MSTN的表達(dá)被明顯抑制,轉(zhuǎn)基因羊體重增加加快,肌纖維直徑增加。Kinouchi等[55]通過(guò)去端肽膠原修飾siRNA,使其在體外激活并注射入小鼠骨骼肌中,這種方法解決了傳統(tǒng)質(zhì)粒載體的不安全因素,是臨床應(yīng)用的一個(gè)有效手段。Zheng等[56]在綿羊胎兒成肌細(xì)胞中通過(guò)同源重組技術(shù)成功地定點(diǎn)誘變了陶賽特羊的MSTN基因,使其3′UTR區(qū)上游281 bp的G突變成A,并證明該突變可以有效地下調(diào)MSTN基因的表達(dá)。Zhou等[57]通過(guò)鋅指核酶技術(shù)敲除了五指山小型豬的MSTN基因,并驗(yàn)證發(fā)現(xiàn)敲除MSTN基因不會(huì)對(duì)其胚胎的發(fā)育潛力造成不利影響,這為生產(chǎn)敲除MSTN的家畜物種提供了安全保障。Xu等[58]設(shè)計(jì)了一對(duì)針對(duì)于哺乳動(dòng)物MSTN基因保守區(qū)的TALEN序列,并證明這段TALEN序列在人、牛和鼠的細(xì)胞系中可以高效特異地敲減MSTN的表達(dá)。
敲減或敲除MSTN能夠促進(jìn)肌肉生長(zhǎng),已經(jīng)成為培育高產(chǎn)肉量家畜品種的技術(shù)手段。Luo等[59]利用鋅指核酸酶技術(shù)成功培育出敲除MSTN的新型魯西黃牛個(gè)體,具有明顯的雙肌臀性狀。MSTN基因的變化對(duì)于動(dòng)物及人體健康也非常重要。通過(guò)對(duì)MSTN基因進(jìn)行基因操作或使用抗體敲減或敲除MSTN,能夠增加肌肉量和維持葡萄糖穩(wěn)態(tài)以緩解肌肉減少性肥胖[60]。Jackson等[61]研究發(fā)現(xiàn),在中年鼠中缺失MSTN,其脂肪含量明顯下降,瘦肉明顯增加,這表明敲減MSTN可以減緩老化帶來(lái)的病理學(xué)癥狀;但其心臟相對(duì)于對(duì)照組也較重,這可能會(huì)引起擴(kuò)張性心臟疾病,所以還需要進(jìn)一步的研究來(lái)證明敲減MSTN對(duì)于心臟功能是否有不利影響。目前,在動(dòng)物模型中已經(jīng)有用抗MSTN的療法治療肌肉萎縮癥的報(bào)道。MSTN主要的抑制劑包括MSTN前肽、抗體以及GASP1和FSTN。抑制MSTN增加骨骼肌含量后可以有效抑制糖尿病的發(fā)生,緩解食欲過(guò)盛等現(xiàn)象[62]。另外,有研究表明,MSTN在許多腫瘤細(xì)胞系中也有表達(dá)[63],這或許提示我們癌癥的發(fā)生與肌肉的發(fā)育存在關(guān)聯(lián)。最新的研究發(fā)現(xiàn),MSTN可以引發(fā)明顯的線(xiàn)粒體代謝的改變,并發(fā)現(xiàn)MSTN在調(diào)控癌細(xì)胞的線(xiàn)粒體代謝和凋亡中發(fā)揮重要功能[64]。因此,未來(lái)對(duì)于MSTN的研究也應(yīng)該著重于探索MSTN控制的肌肉發(fā)育與機(jī)體其他組織的代謝通路之間的相互作用,只有把機(jī)體不同組織之間相互關(guān)聯(lián)研究清楚后,才能夠更好的應(yīng)用于動(dòng)物生產(chǎn)與人類(lèi)臨床實(shí)踐。
綜上所述,MSTN基因在肌肉發(fā)育中具有重要的調(diào)控作用,深入研究MSTN基因作用機(jī)制及其與其他信號(hào)通路的互作關(guān)系,對(duì)改善動(dòng)物肌肉生長(zhǎng)性狀和培育高產(chǎn)肉量家畜品種有重要的指導(dǎo)作用,對(duì)人類(lèi)肌肉萎縮、老化、糖尿病及其他相關(guān)疾病甚至癌癥的治療具有重要意義。
[1]McPherron A C,Lee S J. Suppression of body fat accumulation in myostatin-deficient mice[J]. J. Clin. Invest,2002,109:595-601.
[2]Taylor W E,Bhasin S,Artaza J,etal.. Myostatin inhibits cell proliferation and protein synthesis in C2C12 muscle cells[J]. Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab, 2001,280(2):E221-E228.
[4]George I,Bish L T,Kamalakkannan G,etal.. Myostatin activation in patients with advanced heart failure and after mechanical unloading[J]. Eur. J. Heart Fail,2010,12(5):444-453.
[5]Heineke J,Auger-Messier M,Xu J,etal.. Genetic deletion of myostatin from the heart prevents skeletal muscle atrophy in heart failure[J]. Circulation, 2010,121:419-425.
[6]McPherron A C,Lawler A M,Lee S J. Regulation of skeletal muscle mass in mice by a new TGF-beta superfamily member[J]. Nature,1997,387:83-90.
[7]Jeanplong F,F(xiàn)alconer S J,Oldham J M,etal.. Discovery of a mammalian splice variant of myostatin that stimulates myogenesis[J]. PloS ONE, 2013,8:e81713.
[8]Wrana J L,Attisano L,Wieser R,etal.. Mechanism of activation of the TGF-beta receptor [J]. Nature,1994,370:341-347.
[9]Wagner K R,F(xiàn)leckenstein J L,Amato A A,etal.. A phase Ⅰ/Ⅱ trial of MYO-029 in adult subjects with muscular dystrophy[J]. Ann. Neurol.,2008,63:561-571.
[10]Klimek M E B,Aydogdu T,Link M J,etal.. Acute inhibition of myostatin-family proteins preserves skeletal muscle in mouse models of cancer cachexia [J]. Biochem. Biophys. Research Commun.,2010,391:1548-1554.
[11]Joulia-Ekaza D,Cabello G. The myostatin gene:Physiology and pharmacological relevance[J]. Curr. Opin. Pharmacol., 2007,7(3):310-315.
[12]Lee Y S,Lee S J. Regulation of GDF-11 and myostatin activity by GASP-1 and GASP-2[J]. Proc. Nat. Acad. Sci. USA,2013,110:E3713-E3722.
[13]Berkes C A,Tapscott S J. MyoD and the transcriptional control of myogenesis[J]. Semin. Cell Dev. Biol. ,2005,16 (4-5):585-595.
[14]McFarlane C,Plummer E,Thomas M,etal.. Myostatin induces cachexia by activating the ubiquitin proteolytic system through an NF-κB-independent,F(xiàn)oxO1-dependent mechanism [J]. J. Cell Physiol.,2006,209:501-514.
[15]Tajbakhsh S,Rocancourt D,Cossu G,etal.. Redefining the genetic hierarchies controlling skeletal myogenesis:Pax3 and Myf5 act upstream of MyoD [J]. Cell,1997,89:127-138.
[16]Brunelli S,Relaix F,Baesso S,etal.. Beta catenin-independent activation of MyoD in presomitic mesoderm requires PKC and depends on Pax3 transcriptional activity [J]. Dev. Biol.,2007,304(2):604-614.
[17]Proserpio V,F(xiàn)ittipaldi R,Ryall J G,etal.. The methyltransferase SMYD3 mediates the recruitment of transcriptional cofactors at the myostatin and c-Met genes and regulates skeletal muscle atrophy[J]. Genes Dev.,2013,27:1299-1312.
[18]Trendelenburg A U,Meyer A,Rohner D,etal.. Myostatin reduces Akt/TORC1/p70S6K signaling,inhibiting myoblast differentiation and myotube size[J]. Am. J. Physiol. Cell Physiol.,2009,296:C1258-C1270.
[19]Sun X J,Crimmins D L,Myers M G,etal.. Pleiotropic insulin signals are engaged by multisite phosphorylation of IRS-1[J]. Mol. Cell Biol.,1993,13:7418-7428.
[20]Bois P R J,Grosveld G C. FKHR (FOXO1a) is required for myotube fusion of primary mouse myoblasts[J]. EMBO J.,2003,22:1147-1157.
[21]Chen B,Pan H,Zhu L,etal.. Progesterone inhibits the estrogen-induced phosphoinositide 3-kinase→AKT→GSK-3β→cyclin D1→pRB pathway to block uterine epithelial cell proliferation[J]. Mol. Endocrinol.,2005,19:1978-1990.
[22]Yang W,Zhang Y,Li Y,etal.. Myostatin induces cyclin D1 degradation to cause cell cycle arrest through a phosphatidylinositol 3-kinase/AKT/GSK-3β pathway and is antagonized by insulin-like growth factor 1[J]. J. Biol. Chem.,2007,282:3799-3808.
[23]Bodine S C,Stitt T N,Gonzalez M,etal.. Akt/mTOR pathway is a crucial regulator of skeletal muscle hypertrophy and can prevent muscle atrophyinvivo[J]. Nat. Cell Biol., 2001,3(11):1014-1019.
[24]Rommel C,Bodine S C,Clarke B A,etal.. Mediation of IGF-1-induced skeletal myotube hypertrophy by PI (3) K/Akt/mTOR and PI (3) K/Akt/GSK3 pathways [J]. Nat. Cell Biol., 2001,3(11):1009-1013.
[25]Lipina C,Kendall H,McPherron A C,etal.. Mechanisms involved in the enhancement of mammalian targetof rapamycin signalling and hypertrophy in skeletal muscle ofmyostatin-deficient mice[J]. FEBS Lett.,2010,584:2403-2408.
[26]MacKenzie M G, Hamilton D L, Pepin M,etal.. Inhibition of myostatin signaling through notch activation following acute resistance exercise[J]. PloS ONE, 2013,8(7):e68743.
[27]J?rgensen L H,Sellathurai J,Davis E E,etal.. Delta-like 1 homolog (dlk1):A marker for rhabdomyosarcomas implicated in skeletal muscle regeneration[J]. PloS ONE,2013,8:e60692.
[28]Terada K,Misao S,Katase N,etal.. Interaction of Wnt signaling with BMP/Smad signaling during the transition from cell proliferation to myogenic differentiation in mouse myoblast-derived cells[J]. Int. J. Cell Biol.,2013,2013:616294.
[29]Elkina Y,von Haehling S,Anker S D,etal.. The role of myostatin in muscle wasting:An overview[J]. J. Cachexia Sarcopenia Muscle,2011,2(3):143-151.
[30]Cohen S,Brault J J,Gygi S P,etal.. During muscle atrophy,thick, but not thin,filament components are degraded by MuRF1-dependent ubiquitylation [J]. J. Cell Biol.,2009,185:1083-1095.
[31]Zhao J,Brault J J,Schild A,etal.. FoxO3 coordinately activates protein degradation by the autophagic/lysosomal and proteasomal pathways in atrophying muscle cells[J]. Cell Metab.,2007,6(6):472-483.
[32]Allen D L,Unterman T G. Regulation of myostatin expression and myoblast differentiation by FoxO and SMAD transcription factors[J]. Am. J. Physiol. Cell Physiol.,2007,292:C188-C199.
[33]Hamrick M W,Pennington C,Webb C N,etal.. Resistance to body fat gain in ‘double-muscled’ mice fed a high-fat diet[J]. Int. J. Obesity,2006,30:868-870.
[34]Stitt T N,Drujan D,Clarke B A,etal.. The IGF-1/PI3K/Akt pathway prevents expression of muscle atrophy-induced ubiquitin ligases by inhibiting FOXO transcription factors[J]. Mol. Cell,2004,14(3):395-403.
[35]Jacobs F M J,van der Heide L P,Wijchers P J E C,etal.. FoxO6, a novel member of the FoxO class of transcription factors with distinct shuttling dynamics[J]. J. Biol. Chem.,2003,278(38):35959-35967.
[36]Zimmers T A,Davies M V,Koniaris L G,etal.. Induction of cachexia in mice by systemically administered myostatin[J]. Science,2002,296:1486-1488.
[37]Lee S J,McPherron A C. Regulation of myostatin activity and muscle growth [J]. Proc. Nat. Acad. Sci. USA,2001,98:9306-9311.
[38]Matzuk M M,Lu N,Vogel H,etal.. Multiple defects and perinatal death in mice deficient in follistatin [J]. Nature,1995,374:360-363.
[39]Trendelenburg A U,Meyer A,Rohner D,etal.. Myostatin reduces Akt/TORC1/p70S6K signaling,inhibiting myoblast differentiation and myotube size [J]. Am. J. Physiol. Cell Physiol.,2009,296:C1258-C1270.
[40]Argetsinger L S,Carter-Su C. Mechanism of signaling by growth hormone receptor [J]. Physiol Reviews,1996, 76:1089-1107.
[41]Marcell T J,Harman S M,Urban R J,etal.. Comparison of GH, IGF-I,and testosterone with mRNA of receptors and myostatin in skeletal muscle in older men[J]. Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab., 2001,281:E1159-E1164.
[42]Braun T, Gautel M. Transcriptional mechanisms regulating skeletal muscle differentiation,growth and homeostasis[J]. Nat. Rev. Mol. Cell. Biol.,2011, 12(6):349-361.
[43]Lassar A,Münsterberg A. Wiring diagrams:Regulatory circuits and the control of skeletal myogenesis[J]. Curr. Opin. Cell Biol, 1994, 6(3):432-442.
[44]Batonnet S,Leibovitch M P,Tintignac L,etal.. Critical role for lysine 133 in the nuclear ubiquitin-mediated degradation of MyoD[J]. J. Biol. Chem., 2004,279:5413-5420.
[45]Maroto M,Reshef R,Münsterberg A E,etal.. Ectopic Pax-3 activates MyoD and Myf-5 expression in embryonic mesoderm and neural tissue[J]. Cell, 1997,89:139-148.
[46]Mennerich D,Braun T. Activation of myogenesis by the homeobox geneLbx1 requires cell proliferation [J]. EMBO J.,2001,20:7174-7183.
[47]Schwartz G K,Shah M A. Targeting the cell cycle:A new approach to cancer therapy[J]. J. Clin. Oncol.,2005,23:9408-9421.
[48]Tsai L H,Lees E,F(xiàn)aha B,etal.. The cdk2 kinase is required for the G1-to-S transition in mammalian cells[J]. Oncogene,1993,8(6):1593-1602.
[49]Morissette M R,Cook S A,Buranasombati C,etal.. Myostatin inhibits IGF-I-induced myotube hypertrophy through Akt[J]. Am. J. Physiol. Cell Physiol., 2009,297:1124.
[50]Tripathi A K,Ramani U V,Patel A K,etal.. Short hairpin RNA-induced myostatin gene silencing in caprine myoblast cellsinvitro[J]. Appl. Biochem. Biotechnol.,2013,169:688-694.
[51]Jain H,Singh S,Kadam M,etal.. Knockdown of the myostatin gene by RNA interference in caprine fibroblast cells[J]. J. Biotechnol.,2010,145(2):99-102.
[52]Tripathi A K,Aparnathi M K,Vyavahare S S,etal.. Myostatin gene silencing by RNA interference in chicken embryo fibroblast cells[J]. J. Biotechnol., 2012,160:140-145.
[53]Tang D,Zhu H,Wu J,etal.. Silencing myostatin gene by RNAi in sheep embryos[J]. J. Biotechnol.,2012,158:69-74.
[54]Hu S,Ni W,Sai W,etal.. Knockdown of myostatin expression by RNAi enhances muscle growth in transgenic sheep [J]. PloS ONE, 2013,8(3):e58521.
[55]Kinouchi N,Ohsawa Y,Ishimaru N,etal.. Atelocollagen-mediated local and systemic applications of myostatin-targeting siRNA increase skeletal muscle mass[J]. Gene Ther.,2008,15(15):1126-1130.
[56] Zheng Y L, Ma H M, Zheng Y M,etal.. Site-directed mutagenesis of the myostatin gene in ovine fetal myoblast cellsinvitro[J]. Res. Veterin. Sci, 2012, 93:763-769.
[57]Zhou Z R,Zhong B S,Jia R X,etal.. Production of myostatin-targeted goat by nuclear transfer from cultured adult somatic cells[J]. Theriogenology, 2013,79(2):225-233.
[58]Xu L,Zhao P,Mariano A,etal.. Targeted myostatin gene editing in multiple mammalian species directed by a single pair of TALE nucleases[J]. Mol. Ther. Nucleic. Acids.,2013,2:e112.
[59]Luo J,Song Z,Yu S,etal.. Efficient generation of myostatin (MSTN) biallelic mutations in cattle using zinc finger nucleases [J]. PloS ONE,2014,9:e95225.
[60]Sakuma K,Yamaguchi A. Sarcopenic obesity and endocrinal adaptation with age [J]. Int. J. Endocrinol.,2013,2013:204164.
[61]Jackson M F,Luong D,Vang D D,etal.. The aging myostatin null phenotype:Reduced adiposity,cardiac hypertrophy,enhanced cardiac stress response,and sexual dimorphism [J]. J. Endocrinol.,2012, 213(3):263-275.
[62]McPherron A C,Guo T,Bond N D,etal.. Increasing muscle mass to improve metabolis [J]. Adipocyte,2013,2:92-98.
[63]Smith R C,Lin B K. Myostatin inhibitors as therapies for muscle wasting associated with cancer and other disorders[J]. Curr. Opin. Support Palliat Care,2013,7(4):352-360.
[64]Liu Y,Cheng H,Zhou Y,etal.. Myostatin induces mitochondrial metabolic alteration and typical apoptosis in cancer cells[J]. Cell Death Dis., 2013,4:e494.