李慧玲,劉祖艷,趙 敏*
(1.東北林業(yè)大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,黑龍江哈爾濱 150040;2.黑龍江中醫(yī)藥大學(xué)藥學(xué)院,黑龍江哈爾濱 150040)
β-甘露聚糖酶(β-mannanase,EC 3.2.l.78)是一種內(nèi)切水解酶,可以斷裂β-1,4-D-甘露糖苷鍵,其屬于半纖維素酶類(lèi)[1-2]。人們研究β-甘露聚糖酶始于20世紀(jì)50年代末60年代初,1958年Courtios[3]等首次發(fā)現(xiàn)產(chǎn)β-甘露聚糖酶的真菌;1960 年 Williams和 Doetsch[4]從細(xì)菌中得到 β-甘露聚糖酶;1965年Shibata和Reese[5]第1次提出β-甘露聚糖酶的概念。目前β-甘露聚糖酶已經(jīng)在醫(yī)藥衛(wèi)生、紙漿漂白、功能低聚糖的研發(fā)和石油開(kāi)采等方面得到廣泛應(yīng)用。
目前對(duì)β-甘露聚糖酶產(chǎn)生菌選育的主要手段是通過(guò)誘變育種方式進(jìn)行菌種改良,從而篩選到適應(yīng)環(huán)境能力強(qiáng)、繁殖力高的高產(chǎn)菌株。誘變育種具有操作簡(jiǎn)便、速度快、效果顯著等優(yōu)點(diǎn)。該研究采用紫外線(xiàn)和甲基磺酸乙酯相結(jié)合的誘變方法,提高了β-甘露聚糖酶的活力。
1.1 材料
1.1.1 出發(fā)菌株。東北林業(yè)大學(xué)微生物及免疫學(xué)實(shí)驗(yàn)室保存菌株Bacillus subtilis WD23。
1.1.2 主要培養(yǎng)基。產(chǎn)酶培養(yǎng)基:魔芋膠30 g/L,酵母膏5 g/L,NaCl 4 g/L,KNO36 g/L,K2HPO45 g/L,MgSO4·7H2O 0.2 g/L,pH 為 8.0。初篩培養(yǎng)基:魔芋膠 3 g/L,CaCl20.5 g/L,KH2PO40.05 g/L,NaCl 0.8 g/L,MgSO4·7H2O 0.025 g/L,KNO30.7 g/L,酵母膏2 g/L,蛋白胨5 g/L,瓊脂18 g/L,pH 7.0。
1.2 方法
1.2.1 出發(fā)菌株生長(zhǎng)曲線(xiàn)的測(cè)定。取適量菌體接入LB培養(yǎng)基培養(yǎng)約12 h。取種子液1 ml移入到50 ml LB液體培養(yǎng)基培養(yǎng),間隔2 h取樣測(cè)菌液的OD600值,繪制生長(zhǎng)曲線(xiàn)。每次測(cè)量取3組平行。
1.2.2 出發(fā)菌株產(chǎn)酶歷程的測(cè)定。取適量菌體接入LB培養(yǎng)基培養(yǎng)12 h左右。將600 μl種子液移入魔芋膠產(chǎn)酶培養(yǎng)基培養(yǎng)。間隔2 h取樣,用DNS方法測(cè)定發(fā)酵液中酶的活性。每次測(cè)量取3組平行。
1.2.3 酶活測(cè)定。采用改進(jìn)的3,5-二硝基水楊酸法(DNS方法)測(cè)定酶活力[6]。
1.2.4 菌株的紫外誘變。將菌體培養(yǎng)至對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的后期,用生理鹽水調(diào)整菌懸液濃度為108cfu/ml。紫外燈下照射劑量分別為0、10、15、20、25、30、35、40、45、50 s。用無(wú)菌生理鹽水稀釋誘變菌液和未誘變菌液,涂布于LB固體平板培養(yǎng)基上,37℃倒置培養(yǎng)過(guò)夜,計(jì)算致死率,致死率=(對(duì)照菌液的活菌數(shù)-處理菌液的活菌數(shù))/對(duì)照菌液的活菌數(shù)×100%。隨機(jī)選取120個(gè)誘變后的菌株點(diǎn)種在魔芋膠初篩培養(yǎng)基上,首先測(cè)量單菌落直徑,再加入剛果紅染液染色,測(cè)量透明水解圈直徑,計(jì)算H/C比值。選擇H/C比值較高的菌株采用DNS方法進(jìn)行復(fù)篩。
1.2.5 菌株的甲基磺酸乙酯誘變。選擇紫外誘變活性最高的菌株進(jìn)行甲基磺酸乙酯(EMS)誘變。用磷酸緩沖液洗滌菌體,制備菌懸液濃度為108cfu/ml。EMS的使用濃度是1%(V/V)。誘變5、10、15、20、25、30 min。用無(wú)菌生理鹽水稀釋誘變菌液和未誘變菌液,涂布于LB固體平板培養(yǎng)基上,37℃倒置培養(yǎng)過(guò)夜,計(jì)算致死率,初篩和復(fù)篩的方法同紫外誘變。
2.1 出發(fā)菌株的生長(zhǎng)曲線(xiàn) 由圖1可看出,在培養(yǎng)初期菌體數(shù)量較少,隨著培養(yǎng)時(shí)間增加菌體數(shù)量呈上升趨勢(shì),當(dāng)培養(yǎng)約13 h時(shí)菌體數(shù)量達(dá)到最大值,隨后菌體數(shù)量開(kāi)始下降,所以紫外誘變時(shí)液體培養(yǎng)時(shí)間確定為13 h。
2.2 出發(fā)菌株的產(chǎn)酶歷程 出發(fā)菌株產(chǎn)酶歷程如圖2所示,發(fā)酵初期菌株誘導(dǎo)產(chǎn)酶水平較低,在發(fā)酵培養(yǎng)11 h時(shí)OD值最高,由于OD值與酶活性成正相關(guān),所以這時(shí)酶活力最高。以此確定發(fā)酵產(chǎn)酶培養(yǎng)時(shí)間為11 h。
圖1 B.subtilis WD23生長(zhǎng)曲線(xiàn)
2.3 紫外誘變結(jié)果
2.3.1 紫外誘變的致死率。根據(jù)誘變劑量選擇原則,紫外誘變致死率在70% ~80%時(shí),正突變率最高。所以,紫外照射時(shí)間選為20~30 s。
2.3.2 初篩和復(fù)篩結(jié)果。經(jīng)剛果紅染色后,測(cè)量水解圈直徑和菌落直徑,并計(jì)算H/C比值,H/C比值大說(shuō)明降解底物的能力強(qiáng);菌落直徑大說(shuō)明菌落適宜在該環(huán)境中生長(zhǎng)。與對(duì)照組相比,分別選擇20株正突變菌株,進(jìn)行復(fù)篩。DNS方法測(cè)定初篩所得的20株突變株,最終獲得的酶活最高的正突變菌株為B.subtilis W12(酶活力為3 532.01 U/ml),出發(fā)菌株酶活力為3 248.82 U/ml,紫外誘變使酶活力提高8.72%。
圖2 B.subtilis WD23的產(chǎn)酶歷程
2.4 甲基磺酸乙酯誘變結(jié)果
2.4.1 甲基磺酸乙酯誘變致死率。甲基磺酸乙酯屬于化學(xué)誘變劑,該研究中誘變劑濃度選為1%。甲基磺酸乙酯對(duì)菌體的致死率在70% ~80%之間,正突變率最高,所以菌株B.subtilis W12的甲基磺酸乙酯誘變時(shí)間選為10 min。
2.4.2 初篩和復(fù)篩結(jié)果。在初篩平板選擇20株正突變菌株,進(jìn)行復(fù)篩。測(cè)定初篩所得的20株突變株,最終得到的酶活最高的突變菌株 B.subtilis WL-12,酶活力為3 577.57 U/ml,甲基磺酸乙酯使酶活力提高了1.29%。
微生物的誘變育種包括物理誘變、化學(xué)誘變和生物誘變,其中經(jīng)常應(yīng)用的紫外線(xiàn)誘變和甲基磺酸乙酯誘變。紫外線(xiàn)照射可以使DNA形成胸腺嘧啶二聚體,影響DNA正常復(fù)制和堿基的正常配對(duì),最終引起基因突變[7]。甲基磺酸乙酯屬于烷化劑,堿基烷基化后影響mRNA正常轉(zhuǎn)錄,從而使蛋白質(zhì)表達(dá)紊亂而改變性狀。該研究中采用了紫外線(xiàn)、甲基磺酸乙酯分別誘變菌株,結(jié)果表明紫外線(xiàn)誘變效果好于甲基磺酸乙酯,也就是物理誘變效果好于化學(xué)誘變。
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