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        siRNA對(duì)預(yù)分化骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞β2M表達(dá)的影響*

        2014-08-09 00:41:18范時(shí)洋金海東蔡建武
        中國病理生理雜志 2014年8期
        關(guān)鍵詞:免疫原性充質(zhì)孵育

        戴 兵, 范時(shí)洋, 陳 龍, 金海東, 蔡建武, 潘 駿

        (溫州醫(yī)科大學(xué)附屬第二醫(yī)院骨科, 浙江 溫州 325027)

        骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(bone marrow mesenchymal stem cells, BMSCs)具有多向分化潛能,特定培養(yǎng)條件下可分化為成骨細(xì)胞、軟骨細(xì)胞、肌腱細(xì)胞、內(nèi)皮細(xì)胞、真皮細(xì)胞、神經(jīng)細(xì)胞等中胚層組織[1],是組織工程理想的種子細(xì)胞。鑒于自體細(xì)胞臨床大范圍應(yīng)用的限制,異體種子細(xì)胞的免疫逃逸問題是組織工程發(fā)展無法回避的問題之一。MSCs隨具有低免疫原性,但植入體內(nèi)的干細(xì)胞可以分化為多種類型的細(xì)胞,干細(xì)胞的分化是否影響其免疫原性的表達(dá),這是我們要考慮的問題。對(duì)影響細(xì)胞移植成功的主要障礙是T細(xì)胞介導(dǎo)的免疫應(yīng)答。MHC I分子和CD8+T細(xì)胞的相互作用在同種異體或異種移植的排斥反應(yīng)中起到重要作用[2-3]。BMSCs只表達(dá)MHCⅠ,不表達(dá)MHCⅡ, MHCⅠ在免疫系統(tǒng)中占有極其重要的地位,廣泛表達(dá)于一切有核細(xì)胞表面,由重鏈α鏈和輕鏈β2-微球蛋白(beta 2-microglobulin, β2M)組成。 β2M是一種低分子量的蛋白質(zhì),與重鏈ɑ鏈以非共價(jià)鍵連接方式相連,使MHCⅠ在細(xì)胞表面能夠穩(wěn)定表達(dá),并能促進(jìn)抗原肽與MHCⅠ結(jié)合[4-6]。RNAi技術(shù)是特異性降解與其序列相應(yīng)的單個(gè)內(nèi)源基因的mRNA[7]。近年來,使用RNAi技術(shù)阻斷特定基因的表達(dá)比反義寡核苷酸等更特異、高效、穩(wěn)定和低濃度[8-9]。通過RNAi減少或下調(diào)MHC I分子蛋白的表達(dá),成功克服了一些限制細(xì)胞治療的免疫反應(yīng)[10]。我們擬通過RNAi技術(shù)使預(yù)分化BMSCs的β2M沉默,降低β2M蛋白的表達(dá),為軟骨組織工程提供低免疫原性的種子細(xì)胞。

        材 料 和 方 法

        1 動(dòng)物和材料

        健康雄性清潔級(jí)4周齡SD大鼠10只,體質(zhì)量200~240 g,購自溫州醫(yī)科大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心,有關(guān)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)的相關(guān)內(nèi)容通過了溫州醫(yī)科大學(xué)倫理委員會(huì)的審批。

        低糖DMEM和胎牛血清購自Sigma;SD大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞成軟骨誘導(dǎo)液購自廣州賽業(yè);抗生素和抗真菌劑溶液購自Life Technologies;Lipofectamine 2000購自Gibco;FAM-siRNA及轉(zhuǎn)染相關(guān)試劑均購自上海吉瑪公司;siRNA的序列見表1;β2M 抗體和兔抗羊 IgG-HRP均購自 Santa Cruz;GAPDH antibody購自Bioworld;總RNA快速提取試劑盒購自Generay;逆轉(zhuǎn)錄試劑盒RevertAid First Strand cDNA Synthesis Kit購自Fermentas;qPCR試劑IQ SYBR Green Supermix購自Bio-Rad。所用引物由上海英濰捷基(Invitrogen)有限公司根據(jù)設(shè)計(jì)合成,見表2。

        表1 siRNA序列

        表2 引物序列

        2 主要方法

        2.1骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的分離培養(yǎng) 無菌操作下取4周齡SD大鼠股骨及脛骨干,用一次性注射器吸取無血清DMEM培養(yǎng)基反復(fù)沖洗骨髓腔,1 000 r/min離心5 min,棄上清,加入含10% FBS、1%雙抗的DMEM培養(yǎng)基吹打混勻后移入25 cm2培養(yǎng)瓶?jī)?nèi),置37 ℃、5% CO2、飽和濕度培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng),24 h后除去未貼壁細(xì)胞,以后每3~4 d更換培養(yǎng)基,待細(xì)胞鋪滿瓶底80%以上,0.25%胰酶/0.1% EDTA消化細(xì)胞,1 000 r/min離心5 min,按1∶3傳代培養(yǎng)。

        2.2細(xì)胞成軟骨誘導(dǎo) 取第3代MSCs加入含10% FBS成軟骨誘導(dǎo)液(含基本培養(yǎng)基97 mL, 地塞米松10 μL, 抗壞血酸鹽300 μL, 胰島素-轉(zhuǎn)鐵蛋白-硒1 mL, 丙酮酸鈉鹽100 μL, 脯氨酸100 μL, TGF-β31 mL),置37 ℃、5% CO2、飽和濕度培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng),3 d更換培養(yǎng)基,誘導(dǎo)21 d,終止誘導(dǎo)。

        2.3細(xì)胞轉(zhuǎn)染 實(shí)驗(yàn)所需β2MsiRNA由上海吉瑪公司設(shè)計(jì)合成,實(shí)驗(yàn)分為5組:實(shí)驗(yàn)組3組,分為siRNA-1、siRNA-2和siRNA-3組;對(duì)照組2組,分為空白對(duì)照組 (negative control,NC)和非特異siRNA組(non-specific siRNA,NS)。取成軟骨誘導(dǎo)21 d的MSCs,種植于放置細(xì)胞爬片的24孔板中(5×104cells/well),培養(yǎng)24 h后進(jìn)行轉(zhuǎn)染。實(shí)驗(yàn)組和非特異siRNA組每孔轉(zhuǎn)染體積100 μL(轉(zhuǎn)染方法參照Lipofectamine 2000說明書),對(duì)照組每孔加等體積的無血清opti-MEM I培養(yǎng)基,避光培養(yǎng)。

        2.4Western blotting法檢測(cè)β2M蛋白表達(dá) 冷的PBS洗滌細(xì)胞2遍,冰上裂解細(xì)胞、離心并收集上清后行蛋白定量,采用10% SDS-PAGE凝膠電泳。蛋白分離后經(jīng)恒流電轉(zhuǎn)移到PVDF膜,使用含5%脫脂牛奶的封閉液室溫封閉1 h,與β2M抗體4 ℃孵育過夜,次日加入Ⅱ抗室溫孵育1 h,TBST洗膜3次,取出膜后加入ECL發(fā)光液,移入凝膠成像分析儀,化學(xué)光敏模式曝光顯影。

        2.5實(shí)時(shí)熒光定量PCR 收集各組細(xì)胞,總RNA抽提按Trizol試劑說明書操作,分光光度計(jì)測(cè)量RNA的純度及濃度,使用RevertAid First Strand cDNA Synthesis Kit逆轉(zhuǎn)錄為cDNA,采用SYBR Green染色法,以各組cDNA為模板,加入緩沖液、引物等進(jìn)行PCR,各樣本重復(fù)3次。反應(yīng)條件如下:95 ℃變性2 min,95 ℃ 10 s,60 ℃ 20 s,72 ℃ 20 s,循環(huán)40次。

        2.6激光共聚焦顯微鏡下觀察β2M 取對(duì)照組和siRNA-3組細(xì)胞用PBS洗2遍,5% BSA 室溫封閉1 h,PBS洗3遍。孵育β2M熒光Ⅰ抗, 37 ℃避光1 h, PBS洗2遍。10 μL DiI染色, 室溫, 避光15 min, PBS洗2遍,30%甘油封片。

        2.7甲苯胺藍(lán)染色檢測(cè)蛋白聚糖多聚體 轉(zhuǎn)染24 h后,吸去原液, PBS 洗細(xì)胞3遍,4%多聚甲醛固定30 min,PBS洗細(xì)胞2遍,加入 1 mL 甲苯胺藍(lán)染液覆蓋細(xì)胞表面,室溫下孵育 30 min,PBS 洗細(xì)胞2遍,常規(guī)乙醇脫水、透明及30%甘油封片。倒置顯微鏡下觀察細(xì)胞,拍照。

        2.8Ⅱ型膠原(collagen type Ⅱ,Col Ⅱ)免疫熒光 轉(zhuǎn)染12 h后,吸去原液, PBS 洗細(xì)胞3遍,4%多聚甲醛固定30 min,PBS洗細(xì)胞2遍,0.2% Triton X-100破膜30 min,PBS 洗細(xì)胞2遍;5% BSA固定1 h,PBS洗細(xì)胞2遍;以0.1% Triton X-100稀釋Col II Ⅰ抗(1∶100),37 ℃孵育細(xì)胞1 h,PBS洗細(xì)胞2遍;以0.1% Triton X-100 稀釋FITC熒光Ⅱ抗(1∶500),37 ℃孵育細(xì)胞1 h,PBS洗細(xì)胞2遍;以10 μg/L的DAPI標(biāo)記孵育15 min,標(biāo)記細(xì)胞核,PBS洗細(xì)胞2遍;熒光顯微鏡下觀察細(xì)胞,拍照。

        3 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理

        采用SPSS 18.0軟件分析。數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(mean±SD)表示,組間均數(shù)比較采用單因素方差分析,以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

        結(jié) 果

        1 不同siRNA對(duì) β2M mRNA表達(dá)的影響

        將MSCs成軟骨誘導(dǎo)21 d后,進(jìn)行siRNA干擾。siRNA-1、siRNA-2和siRNA-3各轉(zhuǎn)染組均比對(duì)照組細(xì)胞的β2M mRNA表達(dá)有不同程度降低。siRNA-3組細(xì)胞的目的基因表達(dá)減少最明顯,siRNA-2和siRNA-1次之(P<0.01),見圖1。

        2 不同siRNA對(duì) β2M蛋白表達(dá)的影響

        Western blotting結(jié)果表明,siRNA-1、siRNA-2和siRNA-3各轉(zhuǎn)染組均比對(duì)照組細(xì)胞的β2M蛋白表達(dá)有不同程度降低。siRNA-3組細(xì)胞目的蛋白含量減少最明顯,siRNA-2和siRNA-1次之(P<0.01),表明用3種siRNA均成功沉默BMSCs的β2M基因表達(dá),siRNA-3的沉默效果最佳,見圖2。

        Figure 1. The mRNA expression of β2M in the pre-differentiated (21 d) BMSCs determined by real-time qPCR analysis.NC: negative control; NS: non-specific siRNA; 1: siRNA-1; 2: siRNA-2; 3: siRNA-3.Mean±SD.n=3. **P<0.01 vs NC or NS.

        Figure 2. The protein expression of β2M in the pre-differentiated (21 d) BMSCs determined by Western blotting.NC: negative control; NS: non-specific siRNA; 1: siRNA-1; 2: siRNA-2; 3: siRNA-3.Mean±SD.n=3. **P<0.01 vs NC or NS.

        3 激光共聚焦顯微鏡下觀察β2M

        成軟骨誘導(dǎo)液中培養(yǎng)21 d后,對(duì)照組和siRNA-3 轉(zhuǎn)染組細(xì)胞的β2M分布均比較均勻, siRNA-3 轉(zhuǎn)染組的BMSCs相比未轉(zhuǎn)染組β2M明顯減少,表明β2MsiRNA可有效沉默β2M基因的表達(dá),見圖3。

        Figure 3. The protein expression of β2M in the pre-differentiated (21 d) BMSCs observed by laser confocal microscopy.Scale bar = 50 μm.

        4 甲苯胺藍(lán)法染色觀察

        甲苯胺藍(lán)法染色顯示:成軟骨誘導(dǎo)21 d后,NC組和siRNA-3組的BMSCs蛋白聚糖多聚體染色均呈陽性反應(yīng),差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),見圖4。

        Figure 4. Aggrecan production in the pre-differentiated (21 d) BMSCs detected by toluidine blue staining. Scale bar = 50 μm.A: NC; B: siRNA-3.

        5 Ⅱ型膠原免疫熒光

        Ⅱ型膠原免疫熒光顯示:成軟骨預(yù)誘導(dǎo)21 d后,BMSCs呈多角形,細(xì)胞形態(tài)清晰,NC組預(yù)誘導(dǎo)BMSCs細(xì)胞的Ⅱ型膠原免疫熒光強(qiáng)度較siRNA-3轉(zhuǎn)染組的細(xì)胞略低,但差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),見圖5。

        討 論

        在長(zhǎng)期移植過程中,考慮到免疫反應(yīng),自體細(xì)胞是理想的移植供體細(xì)胞。其中,BMSCs因其在哺乳動(dòng)物體中含量豐富,具有顯著的優(yōu)勢(shì)。BMSCs因其取材方便、體外擴(kuò)增能力強(qiáng),具有多向分化潛能、不涉及倫理道德問題等優(yōu)點(diǎn),受到廣泛關(guān)注[11]。然而自體移植前,細(xì)胞的分離、擴(kuò)增往往十分耗時(shí)。這種情況下,同種異體BMSCs因其低免疫原性而成為軟骨移植較好的種子來源。BMSCs移植應(yīng)用于臨床將是一個(gè)漫長(zhǎng)的過程,一旦應(yīng)用于臨床,那么對(duì)患者來說有很大好處。充足的種子細(xì)胞儲(chǔ)存,避免了不必要的自體細(xì)胞分離擴(kuò)增,更能滿足不適合自體BMSCs移植的老人的需求。近年來越來越多的研究主要集中在同種異體BMSCs的使用上。

        Figure 5. Collagen type II in the pre-differentiated (21 d) BMSCs detected by immunofluorescence. Scale bar = 50 μm.A: NC; B: siRNA-3.

        來源于成人的BMSCs已被證明具有免疫調(diào)節(jié)活性。比如可以抑制T細(xì)胞增殖,調(diào)節(jié)B細(xì)胞功能和樹突狀細(xì)胞的成熟[12]。但是移植的異體BMSCs在特定環(huán)境分化過程中,免疫原性是否發(fā)生變化呢?Huang等[13]發(fā)現(xiàn)預(yù)分化的骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞相比未分化的骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞,增加了免疫原性。其他研究小組證實(shí),將異體間充質(zhì)干細(xì)胞移植到幼齡小鼠[14-15]和豬[16]體內(nèi)會(huì)引起免疫反應(yīng)。這說明植入的同種異體BMSCs雖然具有低免疫原性,但在體內(nèi)分化過程中,其免疫原性是增加的,使得它們更易受到免疫排斥。

        Isakova等[17]發(fā)現(xiàn)將MHCⅠ陽性的雄性獼猴的骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞移植到雌性幼齡獼猴中樞系統(tǒng),引起急性移植排斥反應(yīng)。但是敲除MHCⅠ或MHCⅡ或兩者同時(shí)敲除的小鼠胚胎神經(jīng)元,其免疫原性降低,移植到大鼠腦中可長(zhǎng)期存活[18-19],這些證據(jù)說明,抑制MHCⅠ的表達(dá)對(duì)于BMSCs移植的安全性至關(guān)重要。MHCⅠ分子存在于所有有核細(xì)胞,包括重鏈α鏈和輕鏈β2M,α鏈和β2M都是MHCⅠ分子折疊、加工所必須的。有研究表明在缺乏β2M的情況下,細(xì)胞的表面不能有效表達(dá)MHC I分子[20-21],這為降低細(xì)胞免疫原性提供了新的途徑。

        siRNA具有高效、特異、低毒、周期短、操作簡(jiǎn)單等特點(diǎn),作用于哺乳動(dòng)物細(xì)胞蛋白表達(dá)上游的mRNA,是傳統(tǒng)的基因敲除技術(shù)所不能比擬的。本研究針對(duì)β2M mRNA序列,設(shè)計(jì)了3對(duì)β2MsiRNA。Lipofectamine 2000因其轉(zhuǎn)染效率高、安全等特點(diǎn),目前得到了廣泛應(yīng)用。我們使用Lipofectamine 2000作為載體成功將siRNA安全、完整地轉(zhuǎn)入到BMSCs。通過Western blotting、實(shí)時(shí)定量PCR和激光共聚焦顯微鏡觀察分析發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)染的預(yù)分化BMSCs,其β2M的表達(dá)明顯下降,其中以siRNA-3的抑制效果最佳。

        那么β2MsiRNA轉(zhuǎn)染后對(duì)預(yù)分化的BMSCs是否有影響呢?基于這方面的考慮,我們選取轉(zhuǎn)染24 h的細(xì)胞進(jìn)行甲苯胺藍(lán)和Ⅱ型膠原免疫熒光檢測(cè)蛋白聚糖多聚體及Ⅱ型膠原蛋白的分泌情況,實(shí)驗(yàn)組和對(duì)照組無明顯差別。

        我們利用RNAi技術(shù)下調(diào)β2M對(duì)體外預(yù)分化為軟骨細(xì)胞的BMSCs的免疫原性進(jìn)行了初步研究。但是,在體內(nèi)特定條件下,在BMSCs分化過程中沉默β2M基因的表達(dá)對(duì)免疫排斥反應(yīng)的抑制效果還有待進(jìn)一步研究。

        [參 考 文 獻(xiàn)]

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