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        基于“生物磁現(xiàn)象”的電磁學(xué)教學(xué)拓展*

        2014-06-29 09:02:26劉艷輝陳盈冰
        物理通報 2014年6期
        關(guān)鍵詞:虹鱒魚電磁學(xué)鐵磁

        劉艷輝 毛 偉 陳盈冰

        (貴州大學(xué)理學(xué)院 貴州 貴陽 5500 25 )

        1 引言

        電磁學(xué)主要研究電磁相互作用的基本規(guī)律及實際應(yīng)用,因此,在大學(xué)物理教學(xué)過程中,電磁學(xué)部分的教學(xué),一般是遵循電磁學(xué)發(fā)展歷史順序的體系,首先,講授電磁學(xué)的基本原理,在此基礎(chǔ)上介紹電磁學(xué)發(fā)展的前沿,例如磁電子學(xué)、磁光效應(yīng)及超導(dǎo)體等.但隨著物理學(xué)、生物學(xué)等學(xué)科交叉的日益加劇,電磁學(xué)基本原理及技術(shù)在生命體系中的應(yīng)用日益增多,這也推動了電磁學(xué)的發(fā)展,主要體現(xiàn)在電磁學(xué)的基本理論在生命體系中的運用,及對相關(guān)生命體系的磁學(xué)性質(zhì)的認(rèn)知,這就極大豐富和發(fā)展了電磁學(xué)這門學(xué)科,但是關(guān)于生命體系的電磁學(xué)性質(zhì)在大學(xué)物理教學(xué)過程中鮮有涉及.因此,有必要在教學(xué)過程中,拓展與生命體系相關(guān)的教學(xué)內(nèi)容,使學(xué)生了解電磁學(xué)在生命體系中的最新發(fā)展及應(yīng)用.這里主要從電磁學(xué)技術(shù)在生物體系中的應(yīng)用及相關(guān)生命體系磁學(xué)性質(zhì)的發(fā)現(xiàn)兩個方面討論電磁學(xué)教學(xué)拓展.

        2 血細胞磁分離技術(shù)

        2.1 基本原理

        血細胞的磁學(xué)性質(zhì)發(fā)現(xiàn)較早,可以被看成磁性粒子.全血中,白細胞是反磁性的,紅細胞的磁性取決于血紅素是否結(jié)合氧,一般去氧血紅素呈現(xiàn)順磁性,而攜氧血紅素呈現(xiàn)反磁性[1~5].基于血細胞本身的固有性質(zhì),采用高梯度磁場分離方法設(shè)計磁分離器[6~8],基本原理如下.

        一個半徑為a的鐵磁線置于均勻外磁場(磁場強度為H0)中,鐵磁線的徑向沿著z方向,磁場強度方向平行于x軸方向,靜磁場基本條件為

        式中B和H分別為磁通量和磁場.基于靜磁場基本條件定義磁標(biāo)勢V

        由條件式(1)、(2)可以確定磁標(biāo)勢滿足!2V=0,結(jié)合具體邊界條件,在柱坐標(biāo)系中,磁標(biāo)勢V為

        血細胞受到的磁場力為

        其中χBC和χB分別為血細胞和緩沖液的磁化率,χ=χBC-χB,VBC為血細胞的體積,結(jié)合式(2)、(4),在圖1(a)所示的柱坐標(biāo)系中,r>a的區(qū)域,血細胞受到的磁場力可表示為

        對于順磁物質(zhì),χ>0,對于反磁性物質(zhì),χ<0,因此結(jié)合圖1(a),血細胞受力明顯分為兩種捕捉磁性粒子模式,即順磁捕捉模式和反磁捕捉模式.若將磁性粒子放在圖1(a)所示的x軸上,此時φ=0,sin 2φ=0,cos 2φ=1,鐵磁線將會吸引順磁粒子(χ>0),即為順磁捕捉模式[7];若將磁性粒子放在圖1(a)所示的y軸上,此時φ=,sin 2φ=0,cos 2φ=-1,鐵磁線將會吸引反磁粒子(χ<0),即為反磁捕捉模式[8].

        圖1

        1.2 磁分離器設(shè)計及其應(yīng)用

        如圖2(a)所示,基于反磁捕捉模式設(shè)計的磁分離器,外磁場垂直于微通道,長、寬、高分別為30 mm,480 μm,50 μm,其中心沿著z軸方向放置寬度為80 μm的鐵磁線,磁分離器有一個入口,三個出口,從左向右,三個出口的標(biāo)號為 #1,#2,#3.這樣紅細胞在磁場力的作用下,被排斥偏離鐵磁線,而白細胞被吸引到鐵磁線,全血流經(jīng)入口流入微通道,紅細胞經(jīng)#1,#3出口流出,白細胞經(jīng)#2出口流出.

        圖2 磁分離器設(shè)計示意圖及截面圖[6~8]

        圖3給出了具體分離過程以及結(jié)果,磁分離技術(shù)確實能夠有效分離全血中的白細胞和紅細胞.從圖3(a)到圖3(b)的時間間隔是20 min.

        圖3 血細胞分離結(jié)果[5~7]

        從圖3可以發(fā)現(xiàn)紅細胞在磁場力的作用下,被排斥遠離鐵磁線,向微通道邊緣聚集,實現(xiàn)了有效分離.相對于傳統(tǒng)的磁分離器,該分離器具有體積小,效率高,外磁場小等優(yōu)勢.傳統(tǒng)磁分離器外磁場高達2.0T,而微分離器的外磁場只需要0.2T,如圖1(a),微分離器的長度只有30 mm,而傳統(tǒng)磁分離器長度為2m,而且分離效率低[9~11].

        分離器的分離效率可以達到2.5μl/h,但分離效率相對來說還是很低,主要因為磁場力只在鐵磁體周圍小于100 μm的范圍內(nèi)非常顯著,且不依賴鐵磁體半徑.為了進一步提高分離效率,將以上的微磁分離器進一步改進為側(cè)向驅(qū)動磁分離器,如圖4所示,利用鐵磁線陣列在整個微通道區(qū)域使血細胞均受到磁場力,鐵磁線陣列與血液流向成一定夾角θ.血細胞所受到的側(cè)向力取決于血細胞所受到的磁場力、均勻外磁場強度、鐵磁線陣列與血液流向以及血細胞的磁化率.

        圖4 改進后的側(cè)向驅(qū)動微分離技術(shù)示意圖[12]

        圖5 改進后的側(cè)向驅(qū)動微分離器分離結(jié)果[12]

        圖5(a)為紅細胞與熒光標(biāo)記的白細胞在外磁場為0.3T時的分離情況,分離效率達到20 μl/h.圖5(b)為沒有外磁場情況,血細胞沒有被有效分離.

        2 磁場降低血液粘度

        如果人的血液太過粘稠,會導(dǎo)致血壓增高,損害血管,增加心臟病發(fā)作的風(fēng)險.最近發(fā)現(xiàn)磁場可降低人類血液粘度,稀釋人類循環(huán)系統(tǒng)中的血液.利用紅細胞的磁學(xué)性質(zhì),施加磁場,如圖6(a)能將紅血細胞極化,使它們以短鏈、流線運動的形式連在一起,如圖6(b)、(c)所示,短鏈向著中心流下來時,與血管壁摩擦就會減少.這種結(jié)構(gòu)降低了血液粘度,有助于改善血液流動.

        圖6 紅細胞形成鏈狀結(jié)構(gòu)的示意圖

        實驗[13]表明,給血液施加一個1.3T的磁場約1m i n,血液粘度將降低20 %~30 %,且施加的磁場強度僅相當(dāng)于核磁共振成像的磁場強度.當(dāng)磁場被移開時,血液在血管中會慢慢恢復(fù)為原來的粘稠狀態(tài),但要經(jīng)過幾個小時.而且通過選擇合適的磁場強度和脈沖時間,就能控制紅細胞聚集成鏈的大小,由此控制血液粘度.因此,這種磁流變的方法提供了一個在可選擇的范圍內(nèi)控制血液粘度的有效途徑,這種方法安全,可重復(fù),在多次施加磁場降低血液粘度的情況下,并不影響紅細胞的正常功能.

        3 虹鱒魚的洄游機制

        在大海里暢游3年,離家300 k m之遙,虹鱒魚依然能回到它最初的孵化地,主要依賴地球磁場給它們指引正確方向.慕尼黑大學(xué)地球科學(xué)家Michael Winklhofer的研究小組從虹鱒魚的鼻部分離出了磁性細胞[14],這項進展將幫助研究人員進一步認(rèn)識各類生物的磁場感應(yīng)能力.為將磁性細胞分離出來,Winklhofer與同事將懸浮的虹鱒魚細胞置于顯微鏡下,并在顯微鏡上安裝磁鐵,如此,虹鱒魚的磁性細胞將會圍繞磁鐵旋轉(zhuǎn).他們發(fā)現(xiàn)虹鱒魚的嗅覺組織中有1~4個細胞圍繞磁鐵旋轉(zhuǎn)如圖7所示,每個細胞的磁性比預(yù)想的大上百倍.在分離出的磁性細胞中,有磁性微粒緊挨著細胞膜.這說明虹鱒魚以磁性細胞為感知地磁信號的受體,實現(xiàn)對磁場強度的感知.

        圖7 磁性細胞圍繞顯微鏡上的磁場旋轉(zhuǎn)(箭頭所指為磁性細胞)

        4 總結(jié)

        以上介紹了電磁學(xué)理論在生命體系中的典型應(yīng)用,磁分離技術(shù)及磁場能夠有效降低血液粘度,而且對生命體系均是無損的,這預(yù)示其在醫(yī)學(xué)領(lǐng)域有著潛在的應(yīng)用;在生命體系中分離出了磁性細胞,對進一步認(rèn)識相關(guān)生物的洄游規(guī)律及仿生學(xué)發(fā)展有著重要意義.在教學(xué)過程中給予適當(dāng)?shù)慕榻B及引導(dǎo),能夠使學(xué)生進一步深化對電磁學(xué)基本理論的認(rèn)識,拓展學(xué)生的視野,同時使學(xué)生感受到學(xué)科交叉在科學(xué)發(fā)展中的重要意義.

        1 D.Melville,F(xiàn).Paul and S.Roath,Nature,1975,255.706

        2 Donald S.Taylor and Charles D.Coryell,J.AM.Chem.Soc.1938,60.1 177~1 181

        3 Sumner Levine,Science,1956,123,185~186

        4 Charles D.Coryell,F(xiàn)red Stitt,and Linus Pauling,J.Am.Chem.Soc,1937,59,633~642

        5 Maciej Zborowski,Graciela R.Ostera,Lee R.Moore,etal,Biophysical Journal,2003,84,4,2 638~2 645

        6 Ki-Ho Han and A.Bruno Frazier,J.Appl.Phys,2004,96,5 797~5 802

        7 K.-H.Han and A.B.Frazier,Lab Chip,2006,6,265

        8 K.-H.Han and A.B.Frazier,Lab Chip,2008,8,1 079

        9 M.Takayasu,N.Duske,S.R.Ash and F.J.Friedlaender,IEEE Transaactions on Magnetics,1982,18,1 520~1 522

        10 J.T.Kemshead and J.Ugelstad,Molecular and CellularBiochemistry.1985,67,11~18

        11 Masakazu Iwasaka.Junji Miyakoshi and Shoogo Ueno,IEEE Transaactions on Magnetics,2001,37,2 644~2 646

        12 Jinhee Jung and Ki-Ho Han,Applied Physics Letters.2008,93,223 902

        13 R.Tao and K.Huang,Phys.Rev.E,2011,84,011 905

        14 Stephan H.K.Eder,HervéCadiou,Airina Muhamad,Peter A. McNaughton, Joseph L.Kirschvink,andMichael Winklhofer,PNAS,2012,109,12 022~12 027

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