楊 冬, 馬建中, 高 敏, 崔亞麗
(1.陜西科技大學(xué) 化學(xué)與化工學(xué)院, 陜西 西安 710021; 2.陜西科技大學(xué) 資源與環(huán)境學(xué)院, 陜西 西安 710021; 3.西北大學(xué) 生命科學(xué)學(xué)院, 陜西 西安 710069)
金磁納米微粒是表面包覆金殼的磁性納米復(fù)合微粒,因其兼具膠體金獨特的光學(xué)性質(zhì)及磁性材料的超順磁性,而在生物分離[1]、免疫學(xué)檢測[2]、靶向給藥[3]、基因轉(zhuǎn)導(dǎo)[4]、固定化酶[5]等諸多生物醫(yī)學(xué)領(lǐng)域中有著廣泛的應(yīng)用前景.
當將金磁納米微粒與生物分子,特別是與免疫活性物質(zhì)(抗原或抗體)結(jié)合并用以免疫檢測時,蛋白分子在顆粒表面的有效偶聯(lián)是構(gòu)建免疫探針及實施后續(xù)檢測的前提.其中,偶聯(lián)率的確定可以為分析蛋白分子在顆粒表面的空間分布提供有效依據(jù),且對檢測效果,主要指特異性及靈敏度的評價分析具有現(xiàn)實意義[6-8].
基于金磁納米微粒的表面特性,本實驗采用1-(3-二甲氨基丙基)-3-乙基碳二亞胺(1-(3-dimethyllaminopropyl)-3-ethylcarbodiimide hydrochloride,EDC)作為連接因子,以化學(xué)鍵合的方式將鏈親合素(Streptavidin,SA)分子偶聯(lián)于金磁微粒表面,排除定量方法中的干擾因素和物質(zhì),以Lowry蛋白定量法測得準確的偶聯(lián)率,通過金磁納米微粒的密度的計算,并結(jié)合蛋白分子的分子量計算得出鏈親合素在顆粒表面的分布個數(shù),為基于金磁納米微粒的免疫探針的結(jié)構(gòu)分析提供了一種可靠的方法.
金磁納米微粒,十六烷基三甲基溴化銨(CTAB),聚丙烯酸鈉(PAA),1-(3-二甲氨基丙基)-3-乙基碳二亞胺鹽酸鹽(EDC),鏈親合素(SA),三氯乙酸(分析純),Lowry試劑盒.
UV-2550型紫外可見分光光度計,日本島津;VORTEX 1 MS 3型渦旋混勻器,德國IKA;5425D型離心機,德國Eppendorf;5700型傅立葉紅外光譜儀,美國Nicolet;電感耦合等離子體原子發(fā)射光譜,Thermo Elemental;移液器,德國Eppendorf.
1.3.1 金磁納米微粒表面修飾及元素分析
取金磁納米微粒30 mg(5 mg/mL),加入等體積的CTAB溶液(5 mmol/L),攪拌30 min,置于磁性分離器上磁性分離,棄去上清液,以去離子水重懸.加入5 mL聚丙烯酸鈉(PAA,1 mg/mL),攪拌60 min,反應(yīng)結(jié)束后棄去上清液,洗滌3次,最后以去離子水定容至10 mL,備用.取1 mL修飾后的金磁納米微粒于真空烘箱過夜,稱重.
將表面修飾的復(fù)合粒子稀釋成稀溶液,用移液器吸取30μL滴加在碳膜覆蓋的銅網(wǎng)上,充分干燥后,在透射電子顯微鏡(TEM)下觀察修飾后的微粒分散度及表面形貌.
取一定量的金磁納米微粒于玻璃皿中,置于80 ℃的烘箱中干燥過夜.取粉末樣品進行紅外光譜(FTIR)分析,表征微粒表面特征官能團.
取表面修飾后的微粒10 mg,加入王水溶化,過夜烘干后,以去離子水重懸.采用電感耦合等離子發(fā)射儀(ICP-AES)測定元素金及鐵的含量,計算金磁納米顆粒的密度.
1.3.2 Lowry蛋白定量
(1)標準曲線的繪制
Lowry蛋白定量的原理見文獻[9],Lowry試劑盒操作步驟如下:
①分別取A2、A3、A1液體,按1∶1∶100順序混合,放置0.5 h后使用.
②取標準品BSA和SA,分別以去離子水稀釋為0μg/mL、10μg/mL、20μg/mL、40μg/mL、80μg/mL、160μg/mL、320μg/mL、640μg/mL、1 280μg/mL的標準品系列溶液.
③分別取標準品系列溶液20μL,加入A液1 mL,放置0.5 h后加入B液100μL,迅速混勻(避光操作),旋轉(zhuǎn)0.5 h,以紫外可見分光光度計測定A750值,每個樣品做三次平行,取平均值繪制標準曲線.
(2)EDC對蛋白定量的測定干擾規(guī)律
配制樣品中蛋白含量為50μg/mL,EDC終濃度分別為0μg/mL、10μg/mL、20μg/mL、40μg/mL、80μg/mL、160μg/mL、320μg/mL、640μg/mL、1 280μg/mL的樣品液系列,按前述方法測定樣品的蛋白含量,比較加EDC前后蛋白含量的測定值.
(3)對EDC干擾的消除
取樣品液1 mL,加0.15 mL三氯乙酸溶液,混勻,室溫放置15 min,4 ℃,12 000 rpm離心5 min,小心地吸棄上清,重復(fù)上述步驟2次,Lowry法測定蛋白含量.
1.3.3 金磁納米微粒偶聯(lián)蛋白及偶聯(lián)率的計算
取1 mg金磁納米微粒,磁分離棄去上清液,以0.2 mL磷酸緩沖液(PB×1,pH 6.7)重懸,加入20μg EDC溶液(10 mg/mL),冰浴超聲處理20 min,加入SA溶液(5 mg/mL),使其終濃度為50μg/mL,超聲處理60 min,磁分洗滌3次,0.2 mL的PB緩沖液4 ℃保存,取濃度50μg/mL的SA溶液、磁分得到上清液,以及第一次的洗滌液,分別測定蛋白含量,計算偶聯(lián)率.
金磁納米微粒的表面修飾原理參見文獻[10].從圖1(a)可以看出,采用CTAB及PAA對微粒表面修飾后,可以得到顏色紅亮的微粒溶液.由于金磁納米微粒的表面等離子體共振現(xiàn)象,金磁納米微粒在可見光范圍內(nèi)存在一個吸收光譜帶,其最大吸收峰位在540 nm左右,且其位置會隨粒徑分布、分散介質(zhì)的變化及材料表面組成等而產(chǎn)生相應(yīng)的紅移或藍移[11].當金磁納米微粒溶液呈現(xiàn)紅亮的顏色時,代表其具有良好的分散穩(wěn)定性.表面修飾后的金磁納米顆粒為規(guī)則的球狀(如圖1(b)所示),通過Nano Measure計算,其平均粒徑為41.89 nm.
為確定金磁納米微粒的表面修飾效果,將修飾后的微粒反復(fù)洗滌,去除未包裹的PAA后,80 ℃真空烘箱干燥, 以紅外光譜分析表面特征官能團.如圖1(c)所示,表面修飾前的金磁微粒的2 920 cm-1, 2 850 cm-1, 1 401 cm-1, 以及 960 cm-1等處的吸收峰來自于表面活性劑CTAB,即2 920 cm-1及2 850 cm-1處的吸收峰來自于C-H的對稱伸縮振動,1 401 cm-1為C-H的不對稱振動,而960 cm-1處的吸收峰則來自于CTAB的季胺鹽極性頭[12,13].中性溶液中,PAA鏈上的羧基會產(chǎn)生部分解離形成羧酸根,因而在1 550 cm-1和1 400 cm-1處出現(xiàn)特征峰[14,15].
對比表面修飾前后的譜圖,修飾后的金磁微粒具有來自于聚丙烯酸羧基官能團,表明PAA通過羧基與CTAB的季胺極性頭包裹在了顆粒外層,形成的聚合物外殼可以為顆粒提供離子穩(wěn)定性及空間位阻,從而保持顆粒具有良好的分散穩(wěn)定性[10,16].
通過電感耦合等離子體原子發(fā)射光譜(ICP-AES)的元素定量分析(如圖1(d)所示),結(jié)果表明表面修飾后的金磁納米微粒中Au含量為10.8%、Fe含量約為16.2%,即:
mAu∶mFe3O4=10.8∶22.4
如果將金磁納米微??醋魇蔷鶆虻囊?guī)則球體顆粒,如圖1(d)所示[17],則其密度計算公式如下 :
其中,ρAu=19.3×106g/m3,ρFe3O4=5.18×106g/m3,求解出d=14.5 nm,計算出金磁納米微粒的平均密度為ρFe3O4@Au=18.71×106g/m3,則金磁納米微粒的濃度N=1.46×1012個/mg.
(a)金磁納米微粒及表面等離子體共振吸收峰 (b)金磁納米微粒的透射電子顯微鏡圖(TEM) (c)紅外光譜譜圖(FTIR) (d)電感耦合等離子體原子發(fā)射光譜(ICP-AES)表征的元素定量分析圖1 金磁納米微粒的表征結(jié)果
除了操作過于繁瑣的凱氏定氮法,以及靈敏度差的紫外吸收法外,還可以應(yīng)用較為廣泛的蛋白定量方法包括考馬斯亮藍法(Bradford法),二喹啉甲酸法(BCA法)以及Lowry法(Folin-phenol reagent)等.然而,Bradford法形成的化合物的光吸收值在595 nm,BCA法形成的復(fù)合物的光吸收值在562 nm,使得金磁納米微粒本身特征峰位的移動都會對定量結(jié)果產(chǎn)生巨大影響,因而,選擇Lowry法進行蛋白定量.
以SA和BSA為標準品繪制得到的標準曲線如圖2所示.結(jié)果表明,蛋白含量-吸光度的線性關(guān)系都比較顯著,然而兩種蛋白得到的標準方程明顯存在區(qū)別.這是由于蛋白質(zhì)中含有酪氨酸和色氨酸殘基的量的不同,導(dǎo)致了等量的不同蛋白所顯示的顏色深度不一致,因而產(chǎn)生了誤差[18].因此,本實驗以需要偶聯(lián)的目標蛋白SA作為標準品,標準方程為A=4.165×10-4c+0.011,標準偏差為0.994.
圖2 Lowry法中以鏈親合素(SA)和牛血清 蛋白(BSA)作為標準品繪制的標準曲線
在納米粒表面偶聯(lián)蛋白,可以通過物理吸附和化學(xué)鍵合的方法.物理吸附對納米粒的表面特性要求較高,吸附于納米粒表面的蛋白分子易于脫落而重新進入到溶液中,因而能過物理吸附得到的蛋白標記納米粒不穩(wěn)定.為得到更穩(wěn)定的蛋白功能化金磁微粒,我們采用碳二亞胺(EDC)作為連接因子,通過金磁微粒表面的羧基與肽鏈上的胺基反應(yīng),將蛋白分子化學(xué)鍵合至金磁納米微粒表面,其反應(yīng)示意圖如圖3所示.
圖3 碳二亞胺(EDC)作為連接因子實現(xiàn) 金磁納米微粒偶聯(lián)蛋白的示意圖
然而,實驗中發(fā)現(xiàn)微克級的碳二亞胺就會對
Lowry蛋白定量法產(chǎn)生干擾[19,20],如圖4所示.以不含SA的系列濃度EDC溶液來進行Lowry法檢測.結(jié)果表明,EDC濃度-吸光度符合直線關(guān)系,標準方程為A=4.421×10-4c+0.012,其標準偏差為0.999.
為研究EDC對蛋白定量的干擾,配制了含有SA終濃度為50μg/mL、EDC終濃度為0μg/mL、10μg/mL、20μg/mL、40μg/mL、80μg/mL、160μg/mL、320μg/mL、640μg/mL、1 280μg/mL的樣品液系列.按前述方法測定樣品的蛋白含量,對比得到EDC對蛋白定量的影響.結(jié)果表明,在有蛋白存在時,小濃度的EDC(c<200μg/mL)對蛋白定量的影響較小,可以通過EDC的線性方程去除干擾,然而隨著EDC濃度的增大,所產(chǎn)生的干擾愈加嚴重,因而難以得到準確的測定值.
在納米顆粒偶聯(lián)蛋白的操作過程中,往往需要加入過量的EDC,以提高蛋白在顆粒表面的偶聯(lián),得到最大的偶聯(lián)率.所以,偶聯(lián)率的測定必須消除體系中EDC對Lowry法的干擾.
圖4 EDC對Lowry蛋白定量法的干擾
采用三氯乙酸沉淀蛋白后,再進行Lowry法蛋白定量所得的結(jié)果如表1所示.可以看出,當?shù)鞍字谢煊胁煌瑵舛鹊腅DC時,可參照《歐洲藥典》引入三氯乙酸,先沉淀蛋白后進行測定,可以消除EDC引起的干擾現(xiàn)象,從而準確定量體系中的蛋白含量.
表1 Lowry法檢測含50 μg/mL鏈親合素(SA)的不同濃度的EDC溶液
金磁納米微粒表面偶聯(lián)蛋白前后,取50μg/mL的SA溶液作為Apre樣品液,以三氯乙酸沉淀偶聯(lián)后蛋白作為Apost樣品液,并收集洗滌液作為Awash樣品液,通過Lowry法進行蛋白定量,測定結(jié)果如表2所示.
表2 偶聯(lián)前后蛋白定量結(jié)果
SA在溶液中的含量減少表明SA在金磁納米微粒表面成功偶聯(lián).由于EDC作為連接因子,在后續(xù)洗滌中SA被洗脫的量很少,其中偶聯(lián)率的評價公式為:
通過計算可得,金磁納米微粒表面SA的偶聯(lián)率達到28.43%,結(jié)合SA的相對分子量以及金磁鈉米微粒的濃度,其偶聯(lián)量為:
其中,L=6.02×1023,N=1.46×1012個/mg,MSA=64 kDa,則計算所得偶聯(lián)量為18個SA/個金磁微粒.
對納米微粒進行定量表面功能化,不但可為免疫探針結(jié)構(gòu)的研究提供了空間分布信息,也為后續(xù)檢測性能的評價提供了參考數(shù)據(jù)及評價依據(jù).因此,本研究通過微粒表面的蛋白偶聯(lián)率的測定和計算,為構(gòu)建基于金磁納米微粒的免疫探針,提供了一定的理論依據(jù)和技術(shù)參考.
在本研究的計算方法中,采用了平均粒徑來計算金磁納米微粒的密度.因為納米級微粒的粒徑分布大多符合正態(tài)分布,應(yīng)是具有一定范圍的粒徑分布[21],因而會導(dǎo)致結(jié)果出現(xiàn)一定的偏差;同時,本研究中以三氯乙酸來消除EDC對Lowry蛋白定量的干擾,由于離心去上清等操作的有限性,可能溶液中會有EDC的殘留,從而導(dǎo)致偶聯(lián)后的蛋白定量結(jié)果略偏大.因此,本研究的計算結(jié)果只能為實驗提供一定參考,真正精確的微粒表面的蛋白定量還需要進一步努力.
綜上所述,本文以聚電解質(zhì)PAA修飾金磁納米微粒,采用EDC將SA分子偶聯(lián)于微粒表面,用三氯乙酸沉淀法來消除溶液中未反應(yīng)的EDC對Lowry蛋白定量方法的干擾,確定了微粒表面蛋白的偶聯(lián)量,同時結(jié)合金磁納米微粒密度及SA分子量的數(shù)據(jù),計算得出金磁納米微粒表面SA的偶聯(lián)量為18個SA/金磁微粒.
[1]Park H Y,Schadt M J,Wang L,et al.Fabrication of magnetic core @shell Fe oxide @Au nanoparticles for interfacial bioactivity and bio-separation[J].Langmuir,2007,23(17):9 050-9 056.
[2]Liang W,Yi W,Li Y,et al.A novel magnetic Fe3O4@gold composite nanomaterial:Synthesis and application in regeneration-free immunosensor[J].Materials Letters,2010(64):2 616-2 619.
[3]Chao X,Guo L,Zhao Y,et al.PEG-modified Gold Mag nanoparticles (PGMNs) combined with the magnetic field for local drug delivery[J].Journal of Drug Target,2011,19(3):161-170.
[4]Sun H,Zhu X,Zhang L,et al.Capture and release of genomic DNA by PEI modified Fe3O4/Au nanoparticles[J].Materials Science and Engineering:C,2010,30(2):311-315.
[5]王顯祥,黃 碩,單 志,等.自組裝制備Fe3O4@Au復(fù)合納米粒子用于固定化葡萄糖氧化酶[J].科學(xué)通報,2009,54(4):430-435.
[6]Minkstimiene A K,Ramanaviciene A,Kirlyte J,et al.Comparison of oriented and random antibody immobilization techniques on the efficiency of immunosensor[J].Analytical Chemistry,2010, 82:6 401-6 408.
[7]Lin P C,Chen S H,Wang K Y,et al.Fabrication of oriented antibody-conjugated magnetic nanoprobes and their immunoaffinity application[J].Analytical Chemistry,2009,81(21):8 774-8 782.
[8]Moyano D F,Rotello V M.Nano meet biology:structure and function at the nanoparticle interface[J].Langmuir,2011,27(17):10 376-10 385.
[9]Markwell M A K,Haas S M,Bieber L L,et al.A modification of the lowry procedure to simplify protein determination in membrane and lipoproteion samples[J].Analytical Biochemistry,1978,87(1):206-210.
[10]Yang D,Ma J Z,Zhang Q L,et al.Polyelectrolyte coated gold magnetic nanoparticles for immunoassay development: toward point of care diagnositics[J].Analytical Chemistry,2013,85(14):6 688-6 695.
[11]Yang D,Ma J Z,Gao M,et al.Suppression of composite nanoparticle aggregation through steric stabilization and ligand exchange for colorimetricprotein detection[J].RSC Advances,2013,3:9 681-9 686.
[12]Nikoobakht B,El Sayed M A.Evidence for bilayer assembly of cationic surfactant on the surface of gold nanorods[J].Langmuir,2001,17:6 368-6 374.
[13]Wijaya A,Hamad Schifferli K.Ligand customization and DNA functionalization of gold nanorods via round-trip phase transfer ligand exchange[J].Langmuir,2008,24:9 966-9 969.
[14]Choi J,Rubner M F.Influence of the degree of ionization on weak polyelectrolyte multilayer assembly[J].Macromolecules,2004,38:116-124.
[15]Kato N,Schuetz P,Fery A,et al.Thin multilayer films of weak polyelectrolytes on colloid particles[J].Macromolecules,2002,35:9 780-9 787.
[16]Yang D,Ma J Z,Peng M L,et al.Building nanoSPR biosensor systems based on gold magnetic composite nanoparticles[J].Journal of Nanoscience and Nanotechnology,2013,13(8):5 485-5 492.
[17]Yu C,Varghese L,Irudayaraj J.Surface modification of cetyltrimethylammonium bromide-capped gold nanorods to make molecular probes[J].Langmuir,2007,23:9 114-9 119.
[18]Kumar R,Shukla A K,Bagga E,et al.1-Ethyl-3-(3-dimethylaminopropyl)carbodiimide interference with Lowry method[J].Analytical Biochemistry,2005,336:132-134.
[19]張云茹,周躍剛,范守城,等.硫酸銨存在下的改良福林-酚試劑法[J].重慶工學(xué)院學(xué)報(自然科學(xué)版),2008,22(7):159-166.
[20]Winters A L,Minchin F R.Modification of Lowry assay to measure proteins and phenols in covalently bound complexes[J].Analytical Biochemistry,2005,346:43-48.
[21]李 暉,劉 運,張方輝,等.ZnO納米顆粒的分散及光致發(fā)光特性[J].陜西科技大學(xué)學(xué)報(自然科學(xué)版),2013,31(1):29-32.