單武林,章成芳,馬筱玲,常文嬌,戴媛媛
白血病是一類嚴(yán)重威脅人類健康和生命的常見疾?。?]。由于傳統(tǒng)的化療藥物治療一般伴有嚴(yán)重的毒副反應(yīng)而不能達(dá)到有效的治療作用。所以,新型抗腫瘤藥物的研發(fā)依舊是目前研究的熱點(diǎn)[2]。盡管人白血病細(xì)胞能夠在體外分離并用于研究,但是仍有許多問題需要通過體內(nèi)試驗(yàn)來驗(yàn)證。因此,建立一個(gè)穩(wěn)定的動物模型用于新型抗白血病藥物的研究具有重要意義[3]。自從1983年美國學(xué)者Bosma發(fā)現(xiàn)SCID小鼠以來,人們便將這類小鼠廣泛用于白血病的研究。大量的研究[4-6]表明人白血病細(xì)胞可在這類小鼠體內(nèi)廣泛生長并擴(kuò)散。通常主要采用以下幾種方法構(gòu)建小鼠白血病模型,主要包括:皮下、腹腔和靜脈注射[4,7-8]。該研究選擇皮下及腹腔2種途徑接種構(gòu)建HL-60白血病小鼠模型,并進(jìn)一步比較兩種模型的生物學(xué)特性。
1.1 材料
1.1.1 細(xì)胞株 人急性髓系白血病細(xì)胞株HL-60購于中國科學(xué)院上海細(xì)胞研究所。在細(xì)胞培養(yǎng)箱中常規(guī)傳代,用含10%胎牛血清的RPMI-1640培養(yǎng)基(100 U/ml青霉素 G、100 μg/ml鏈霉素和 2 g/L 碳酸氫鈉)培養(yǎng),并置于5%CO2、37℃培養(yǎng)箱培養(yǎng)。
1.1.2 實(shí)驗(yàn)動物 SCID小鼠,雄性,清潔級,體重17~20 g,3~4周齡(購于北京華阜康公司),飼養(yǎng)于安徽醫(yī)科大學(xué)清潔級實(shí)驗(yàn)動物房帶蓋鼠盒中(符合SPF標(biāo)準(zhǔn))。室內(nèi)空氣經(jīng)有效過濾。飲用水酸化處理pH 4~5。標(biāo)準(zhǔn)顆粒飼料,墊料及一切與鼠接觸物品均滅菌處理。
1.1.3 主要試劑 小鼠抗人CD33單抗購于美國BIOSS公司;紅細(xì)胞裂解液購于加拿大Stem Cell Technologies公司;抗人CD33-PE標(biāo)記和陰性對照羊抗小鼠IgG-PE標(biāo)記購于美國BD公司。
1.2 方法
1.2.1 急性髓系白血病SCID小鼠模型的建立SCID小鼠于移植前連續(xù)2 d腹腔注射環(huán)磷酰胺(CTX,100 mg/kg體重)。第2次注射CTX 24 h以后,將小鼠隨機(jī)分為A、B和C 3組,每組8只。取對數(shù)生長期HL-60細(xì)胞,分別以右側(cè)腹部皮下單點(diǎn)注射(A組)1×107/鼠,腹腔注射(B組)1×107/鼠接種于小鼠。C組小鼠不做處理作正常對照。如果小鼠出現(xiàn)以下癥狀將其處死,包括:下肢癱瘓;體重下降>20%;小鼠縮成一團(tuán);垂死的狀態(tài)。
1.2.2 外周血白細(xì)胞及分類計(jì)數(shù) 接種細(xì)胞后,每周取尾靜脈血檢測。采用人工法計(jì)數(shù)外周血白細(xì)胞數(shù)。
1.2.3 病理和免疫組織化學(xué)檢查 瀕死動物進(jìn)行病理檢查,取肝和脾,以10%甲醛固定48 h以上,常規(guī)石蠟切片,HE染色后鏡檢。免疫組化檢測:石蠟切片經(jīng)脫蠟、脫水,抗原熱修復(fù)后,加小鼠抗人CD33單抗,生物素標(biāo)山羊抗小鼠IgG,辣根過氧化物酶標(biāo)記鏈霉卵白素。
1.2.4 流式細(xì)胞分析儀檢測CD33陽性率 CD33為一跨膜糖蛋白,在HL-60細(xì)胞上,CD33表達(dá)陽性率可達(dá)99%。CD33陽性率可作為模型腫瘤浸潤的重要指標(biāo)。取瀕死小鼠外周血,紅細(xì)胞裂解液去除外周血中的紅細(xì)胞,制備細(xì)胞懸液備用。另取肝脾組織,制備組織單細(xì)胞懸液備用。將處理完畢的單細(xì)胞懸液加抗人CD33-PE,陰性對照羊抗小鼠IgGPE標(biāo)記,4℃避光染色30 min,再經(jīng)PBS洗2次,上流式細(xì)胞儀(FAcscan,美國BD)。Cell quest軟件分析。
1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 采用SPSS 16.0和Photoshop軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。數(shù)據(jù)以±s表示,組間比較采用單因素方差分析,兩組生存分析采用t檢驗(yàn)。
2.1 HL-60白血病SCID小鼠模型 兩種接種方法都能夠成功構(gòu)建小鼠白血病模型。在A組,所有小鼠在16 d內(nèi)形成了肉眼可見的皮下腫瘤,平均成瘤時(shí)間為(12.15±3.26)d;所有小鼠在66 d內(nèi)死亡,平均生存時(shí)間為(53.24±10.33)d。在B組,6只小鼠在25 d內(nèi)形成了肉眼可見的腹腔腫瘤,平均成瘤時(shí)間為(19.00±5.84)d;這6只小鼠在53 d內(nèi)全部死亡,平均生存時(shí)間為(36.87±10.22)d。見圖1。另外2只沒有形成腹腔腫瘤的小鼠沒有死亡。形態(tài)學(xué)檢測發(fā)現(xiàn)B組小鼠肝脾腫大較A組小鼠明顯。另外,B組小鼠腹腔形成腹水,而A組沒有腹水形成。
圖1 兩組小鼠的生存曲線
2.2 小鼠外周血和臟器中腫瘤浸潤情況 接種細(xì)胞后,每周取尾靜脈血檢測外周血白細(xì)胞數(shù)。在同一時(shí)間,A、B兩組小鼠外周血白細(xì)胞數(shù)高于C組,且B組小鼠白細(xì)胞數(shù)升高比A組快。從第4周開始,B組小鼠外周血白細(xì)胞數(shù)較A、C兩組明顯升高,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F=7.53,P <0.05),見表1。流式檢測結(jié)果顯示兩組小鼠外周血均有白血病細(xì)胞浸潤,但是比例較低,不超過3%。A、B兩組小鼠外周血中白血病細(xì)胞平均比例分別為(1.72±1.07)%和(2.65±1.36)%,見圖4。HE和免疫組織化學(xué)用于檢測肝脾腫瘤浸潤情況。B組小鼠臟器浸潤比A組嚴(yán)重。B組小鼠的肝脾都有大量白血病細(xì)胞浸潤并伴隨著結(jié)構(gòu)的嚴(yán)重破壞。在A組中,脾有白血病細(xì)胞并伴隨著結(jié)構(gòu)的破壞,然而肝臟很少能檢測到白血病細(xì)胞浸潤且?guī)缀鯔z測不到結(jié)構(gòu)的破壞,見圖2、3。另外,采用流式檢測肝脾單細(xì)胞懸液中CD33陽性的白血病細(xì)胞比例。A組小鼠肝、脾白血病細(xì)胞比例為(1.83±1.15)%和(8.54±3.79)%,B組小鼠肝、脾白血病細(xì)胞比例為(6.93±3.15)%和(12.16±4.63)%,見圖4。流式結(jié)果進(jìn)一步證明了B組小鼠臟器浸潤破壞較A組明顯。
白血病是一類造血干細(xì)胞異常的克隆性惡性疾病,克隆中的白血病細(xì)胞失去進(jìn)一步分化成熟能力而停滯在細(xì)胞發(fā)育的不同階段[9]。近年來,盡管在白血病治療方面有了很大進(jìn)步,但治療效果及預(yù)后并不理想[10]。探索新的、更加經(jīng)濟(jì)、有效的靶向治療方法是臨床醫(yī)學(xué)的迫切需要。新型治療藥物需要在動物模型中驗(yàn)證其生物學(xué)效應(yīng)。因此,需要建立穩(wěn)定的動物模型用于新型藥物抗白血病研究。
本研究顯示,兩種接種方法均可成功構(gòu)建HL-60小鼠白血病模型。皮下接種出現(xiàn)肉眼可見的瘤體時(shí)間早于腹腔接種。A組成瘤率為100%,B組成瘤率為75%。以下幾個(gè)因素影響人白血病細(xì)胞成功移植于小鼠體內(nèi)。首先,移植成功率與人白血病細(xì)胞的生物學(xué)特性和細(xì)胞FAB類型有關(guān)。用從小鼠腹水中取出的白血病細(xì)胞接種有較高的移植成功率。因?yàn)楦顾械陌籽〖?xì)胞已經(jīng)適應(yīng)了小鼠的體內(nèi)環(huán)境,易于其生長擴(kuò)散。M2和M3移植成功率比其他細(xì)胞類型低。Rombouts et al[11]研究發(fā)現(xiàn)M0比M2、M4以及M5移植成功率高。其次,移植成功率與SCID小鼠的特性有關(guān)。SCID小鼠雖然有嚴(yán)重的聯(lián)合免疫缺陷,但體內(nèi)仍有著自然殺傷細(xì)胞(NK)細(xì)胞、粒細(xì)胞以及單核細(xì)胞的活性。隨著細(xì)胞周期的延長,其他的免疫活性也會重建[12]。研究[13]顯示對于>5周齡的小鼠,必須經(jīng)過預(yù)處理來克服或突破剩余的免疫防御系統(tǒng)來提高移植成功率。給予SCID小鼠額外的生長刺激,包括IL-3、IL-6和粒細(xì)胞巨噬細(xì)胞集落刺激因子等,能提高白血病細(xì)胞的移植成功率。采取適當(dāng)?shù)姆椒ㄈコ齋CID小鼠體內(nèi)的NK細(xì)胞也能夠提高移植成功率。另外,白血病細(xì)胞移植成功率與患者預(yù)后有關(guān)。研究[14]表明預(yù)后較差患者的白血病細(xì)胞具有較高的移植成功率。
表13 組小鼠外周血中白細(xì)胞數(shù)(×109/L,±s)
表13 組小鼠外周血中白細(xì)胞數(shù)(×109/L,±s)
與A組比較:*P<0.05;與C組比較:△P<0.05;在第7、8周B組小鼠已經(jīng)死亡
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圖2 各組小鼠肝臟HE和免疫組化染色結(jié)果 ×400
圖3 各組小鼠脾HE和免疫組化染色結(jié)果 ×400
圖4 各組小鼠外周血、肝和脾細(xì)胞懸液中白血病細(xì)胞比例
在存活時(shí)間方面,腹腔接種組小鼠存活時(shí)間較皮下注射組短。兩種接種途徑均可引起小鼠外周血白細(xì)胞升高,腹腔接種組外周血白細(xì)胞數(shù)上升速度較皮下接種組快。從接種后第4周開始,兩組之間白細(xì)胞數(shù)目差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。這也能解釋為什么腹腔接種組小鼠生存時(shí)間比皮下接種組短。兩組小鼠外周血中都檢測到白血病細(xì)胞,但是白血病細(xì)胞的比率較低,不超過3%,這與 Lord et al[15]研究結(jié)果一致。另外,本研究結(jié)果顯示腹腔接種組小鼠臟器浸潤較為嚴(yán)重。
總之,經(jīng)皮下、腹腔兩種途徑接種HL-60細(xì)胞均可成功構(gòu)建小鼠白血病模型。皮下注射成瘤時(shí)間短,存活時(shí)間長,可見明顯的瘤結(jié)節(jié);皮下接種腫瘤細(xì)胞具有操作簡單、重復(fù)性好和易于觀察等優(yōu)點(diǎn),因而可通過觀察和測量皮下腫瘤的體積大小和重量,分析藥物抗白血病療效。腹腔注射成瘤時(shí)間長,存活時(shí)間短;利用腹腔接種的方法,可更好的了解白血病細(xì)胞在臟器中的浸潤和轉(zhuǎn)移情況。當(dāng)然,如果希望充分的了解一種藥物的療效,最好同時(shí)采用兩種小鼠模型來檢測其抗白血病作用。
[1]Gjertsen B T,Wiig H.Investigation of therapy resistance mechanisms in myeloid leukemia by protein profiling of bone marrow extracellular fluid[J].Expert Rev Proteomics,2012,9(6):595 -8.
[2]Pui C H,Jeha S.New therapeutic strategies for the treatment of acute lymphoblastic leukaemia[J].Nat Rev Drug Discov,2007,6(2):149-65.
[3]Fortier J M,Graubert T A.Murine models of human acute myeloid leukemia.In Acute Myelogenous Leukemia[J].Springer,2010,145:183-96.
[4]Zhang S,Zhang Y,Zhuang Y,et al.Matrine induces apoptosis in human acute myeloid leukemia cells via the mitochondrial pathway and akt inactivation[J].PLoS One,2012,7(10):e46853.
[5]Tan K B,Ling L U,Bunte R M,et al.In vivo efficacy of a novel liposomal formulation of safingol in the treatment of acute myeloid leukemia[J].J Controll Release,2012,160(2):290 - 8.
[6]Banerjee S,Choi M,Aboukameel A,et al.Preclinical studies of apogossypolone,a novel pan inhibitor of bcl-2 and mcl-1,synergistically potentiates cytotoxic effect of gemcitabine in pancreatic cancer cells[J].Pancreas,2010,39(3):323 -31.
[7]Liu J,Li Y,Tang L,et al.Treatment of lycorine on SCID mice model with human APL cells[J].Biomed Pharmacother,2007,61(4):229-34.
[8]Ferretti E,Di Carlo E,Cocco C,et al.Direct inhibition of human acute myeloid leukemia cell growth by IL-12[J].Immunol Lett,2010,133(2):99-105.
[9]Uesato N,F(xiàn)ukui K,Maruhashi,et al.JTE-607,a multiple cytokine production inhibitor,ameliorates disease in a SCID mouse xenograft acute myeloid leukemia model[J].Exp Hematol,2006,34(10):1385-92.
[10]Han L,Zhou J,Schuringa J,et al.Treatment strategies in acute myeloid leukemia[J].Chin Med J,2011,124(9):1409 -21.
[11]Rombouts W,Martens A,Ploemacher R.Identification of variables determining the engraftment potential of human acute myeloid leukemia in the immunodeficient NOD/SCID human chimera model[J].Leukemia,2000,14(5):889 -97.
[12]Mc Cormack E,Bruserud O,Gjertsen B.Animal models of acute myelogenous leukaemia-development,application and future Perspectives[J].Leukemia,2005,19(5):687 - 706.
[13]Deng Y J,Xu Y Z,Lou S F.Establishment and evaluation of a murine model of AML[J].Progress Modern Biomed,2008,8(1):53-5.
[14]Yan Y,Wieman E A,Guan X,et al.Autonomous growth potential of leukemia blast cells is associated with poor prognosis in human acute leukemias[J].J Hematol Oncol,2009,2:51.
[15]Lord C D,Clutterbuck R,Powles R,et al.Growth of primary human acute lymphoblastic and myeloblastic leukemia in SCID mice[J].Leuk Lymphoma,1994,16(1-2):157-65.