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        鞘內(nèi)預(yù)注右美托咪啶對脊髓缺血/再灌注損傷后脊髓水含量、小膠質(zhì)細胞及基質(zhì)金屬蛋白酶表達的影響

        2014-05-17 03:03:30李曉倩
        中國藥理學(xué)通報 2014年10期

        王 赫,李曉倩,馬 虹

        (中國醫(yī)科大學(xué)附屬第一醫(yī)院麻醉科,遼寧沈陽 110001)

        既往研究發(fā)現(xiàn),坐骨神經(jīng)結(jié)扎前鞘內(nèi)預(yù)注右美托咪啶(dexmedetomidine,DEX)能夠有效減輕神經(jīng)病理性疼痛,減少脊髓組織中炎性因子的產(chǎn)生,改善預(yù)后[1]。一些研究表明,脊髓缺血/再灌注損傷(spinal cord ischemia reperfusion injury,SCIRI)后,減輕脊髓水腫、維持血脊髓屏障(blood spinal cord barrier,BSCB)的完整性,可以減少SCIRI所致的神經(jīng)損傷[2]。鞘內(nèi)預(yù)注DEX是否通過抑制SCIRI后小膠質(zhì)細胞變化和基質(zhì)金屬蛋白酶表達對脊髓水腫產(chǎn)生作用,有待深入研究。本研究采用阻斷胸主動脈血流合并系統(tǒng)低血壓建立SCIRI模型,探討鞘內(nèi)預(yù)注DEX對SCIRI后急性脊髓水腫、小膠質(zhì)細胞、基質(zhì)金屬蛋白酶-9(matrix metalloproteinases,MMP-9)變化的影響。

        1 材料

        1.1 實驗動物 ♂ Sprague-Dawley大鼠295只,體質(zhì)量260~280 g,由中國醫(yī)科大學(xué)實驗動物中心提供。

        1.2 藥品和儀器 伊文思藍(evans blue,Sigma);兔抗MMP-9多克隆抗體(Santa Cruz);兔抗 Iba-1單克隆抗體(Wako);共聚焦熒光顯微鏡;GLS-700D型數(shù)碼凝膠掃描分析系統(tǒng)。

        2 方法

        2.1 實驗分組 大鼠隨機分為4組。非假手術(shù)組參照文獻[3]制備SCIRI模型,并行 L5-L6鞘內(nèi)置管。假手術(shù)組(Sham組):胸主動脈血流阻斷前2 d鞘內(nèi)注射生理鹽水30 μl,開胸并暴露胸主動脈而不阻斷;SCIRI組(IR組,鞘內(nèi)注射30μl生理鹽水):胸主動脈血流阻斷前2 d鞘內(nèi)注射生理鹽水30μl,暴露胸主動脈并于左鎖骨上動脈之間無創(chuàng)動脈夾夾閉14 min;DEX組(鞘內(nèi)注射右美托咪啶):胸主動脈血流阻斷前2 d鞘內(nèi)注射右美托咪啶10、30μl,暴露胸主動脈并于左鎖骨上動脈之間無創(chuàng)動脈夾夾閉14 min;D+A組(鞘內(nèi)注射右美托咪啶及其抑制劑阿替美唑):胸主動脈血流阻斷前2 d鞘內(nèi)注射右美托咪啶10μg+阿替美唑10μg(共30μl),暴露胸主動脈并于左鎖骨上動脈之間無創(chuàng)動脈夾夾閉14min。腹腔注射0.3ml氨芐青霉素(0.1 g·L-1)。術(shù)后單籠飼養(yǎng)。

        2.2 脊髓水腫測定 采用干濕法測定脊髓含水量,評價脊髓水腫。

        2.3 伊文思藍測定血-脊髓屏障完整性 血脊髓屏障通透性測定經(jīng)耳緣靜脈緩慢勻速注射質(zhì)量濃度為20 g·L-1的伊文思藍45 mg·kg-1。取出脊髓缺血節(jié)段(L4-L6),離心,取上清液,用酶標儀檢測(λ=632 nm)OD值,每個樣本重復(fù)檢測3次。根據(jù)標準曲線計算出每克脊髓組織中EB含量(μg·g-1)。

        2.4 小膠質(zhì)細胞標志物Iba-1與MMP-9熒光雙標染色

        取MMP-9和Iba-1二者都為陽性作為表達MMP-9的小膠質(zhì)細胞,每個截面(蒙太奇拼接成整個冠狀面圖)的陽性細胞用Image Pro P1us6.0軟件計數(shù)3個冠狀平面的陽性細胞數(shù)量的平均值和平均光密度值(mean optical density,MOD)。

        2.5 統(tǒng)計學(xué)處理 所有數(shù)據(jù)結(jié)果以s表示。數(shù)據(jù)處理采用SPSS 12.0統(tǒng)計學(xué)軟件,采用單因素方差分析(ANOVA)比較組間差異,使用post hoc schaffe tests進行多重比較。

        3 結(jié)果

        3.1 脊髓含水量 與Sham相比,IR組SCIRI后脊髓水含量48h達到最高峰,明顯大于12和24 h,48~72 h脊髓水腫無明顯變化,自d 5開始脊髓含水量下降,7 d水腫小于5 d(F=11.03,P<0.05);與 IR組相比,DEX組各時點脊髓含水量均明顯下降(F=12.73,P<0.05,Tab 1)。

        3.2 脊髓組織中EB含量 與Sham相比,IR組SCIRI后脊髓組織中EB含量48 h達到最高峰,明顯大于12和24 h,48~72 h脊髓水腫無明顯變化,自d 5開始脊髓組織中EB含量下降,7 d EB滲出小于5 d(F=11.93,P<0.05);與 IR組相比,DEX組各時點脊髓組織中EB滲出均明顯下降(F=13.13,P<0.05,Tab 2)。

        Tab 1 Spinal water content in each key point time after SCIRI(%,n=6)

        Tab 2 Spinal Evans blue content in each key point time after SCIRI(μg·g-1,n=4)

        Tab 3 Cell numbers of double positive labeled w ith MMP-9/Iba-1 in each key point time after SCIRI(numbers/mm2,n=6)

        3.3 SCIRI后小膠質(zhì)細胞(Iba-1)與金屬基質(zhì)蛋白酶(MMP-9)熒光雙標染色 與Sham相比,IR組再灌注損傷后,脊髓背角Iba-1陽性小膠質(zhì)細胞開始逐漸增多,于48 h達到最高峰,明顯大于12和24 h,自d 5開始Iba-1陽性細胞數(shù)量下降,d 7陽性細胞的數(shù)量小于 d 5(F=14.65,P<0.05);與IR組相比,DEX組各時點Iba-1陽性細胞的數(shù)量均明顯減少(F=12.34,P<0.05)。陽性細胞數(shù)統(tǒng)計分析示SCIRI后表達MMP-9的小膠質(zhì)細胞數(shù)目在12~36 h之間開始增加,在48 h時達到高峰,5 d時已經(jīng)明顯下降(Tab 3)。

        4 討論

        SCIRI后血 -脊髓屏障(blood-spinal cord barrier,BSCB)完整性破壞,通透性增加,造成脊髓組織水腫、炎癥反應(yīng)。缺血前鞘內(nèi)注射DEX可以提高再灌注損傷后BSCB的完整性,減輕脊髓損傷區(qū)域的水腫程度,且上述DEX的抗脊髓水腫的機制涉及α2AR的激動,與既往Bell MT等的研究結(jié)果一致。

        通常正常大鼠脊髓中有少量小膠質(zhì)細胞。本研究發(fā)現(xiàn)SCIRI后損傷的脊髓組織中開始出現(xiàn)呈巨噬細胞樣的激活狀態(tài)下的小膠質(zhì)細胞,并逐漸增多,加入DEX后在陽性細胞數(shù)量明顯減少,說明DEX可抑制SCIRI后小膠質(zhì)細胞的活化,是其發(fā)揮神經(jīng)保護作用的重要因素之一。其保護作用可能通過提高小膠質(zhì)細內(nèi)的環(huán)磷腺苷水平[4],調(diào)節(jié)組織間隙Na+,K+,Ca2+離子穩(wěn)態(tài)以及谷氨酸的轉(zhuǎn)運和釋放的平衡[5],以及選擇性抑制p38MAPK信號通路中的p38β亞型而特異性阻斷脊髓小膠質(zhì)細胞的活化[6]。

        我們既往研究發(fā)現(xiàn),SCIRI后MMP-9表達表達增加,與脊髓水腫有密切聯(lián)系。在本研究中,發(fā)現(xiàn)DEX能夠通過抑制SCIRI后小膠質(zhì)細胞活化,下調(diào)MMP-9蛋白表達從而減輕脊髓損傷部位水腫、減輕脊髓缺血/再灌注損傷,發(fā)揮神經(jīng)保護作用。

        參考文獻:

        [1] Li X Q,Ma H.Intrathecal injection of Dexmedetomidine reduces neuropathic pain in ratmodel of chronic constriction injury[J].J Chin Physician,2013,15(9):1174-8.

        [2] Fang B,Wang H,Sun X J,et al.Intrathecal transplantation of bonemarrow stromal cells attenuates blood-spinal cord barrier disruption induced by spinal cord ischemia-reperfusion injury in rabbits[J].JVasc Surg,2013,58(4):1043-52.

        [3] Li X Q,Lv H,Tan W F,et al.Role of the TLR4 pathway in blood-spinal cord barrier dysfunction during the bimodal stage after ischemia/reperfusion injury in rats[J].J Neuroinflammation,2014,11:62.

        [4] Jin Y,Sato K,Tobo A,etal.Inhibition of interleukin-1βproduction by extracellular acidification through the TDAG8/cAMPpathway in mousemicroglia[J].J Neurochem,2014,129(4):683-95.

        [5] Schilling T,Eder C.Fluorescence imaging of intracellular Ca2+,Na+,and H+in culturedmicroglia[J].MethodsMol Biol,2013,1041:147-61.

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