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        溶血磷脂酰膽堿在肝臟疾病中的研究進展

        2014-05-15 10:10:27宋丹軍潘家琪李鵬旭褚贊波劉愛明楊菊林
        中國藥理學通報 2014年12期
        關(guān)鍵詞:肝癌小鼠血清

        宋丹軍,潘家琪,李鵬旭,褚贊波,馮 達,劉愛明,楊菊林

        (寧波大學醫(yī)學院生理學與藥理學研究室,浙江寧波 315211)

        肝臟疾病和肝毒性對人類的健康構(gòu)成了極大的威脅。在美國平均每年有2萬5千多人死于慢性肝病和肝硬化,肝臟疾病已經(jīng)成為主要的死亡原因之一[1]。在新西蘭報告的藥物不良反應中,藥物性肝損傷占4.2%[2],在美國的住院黃疸的病人病因中,藥物性肝損傷占2%~5%[3]。人們對肝臟疾病和肝毒性的研究越來越多,因此,找到更準確、更敏感的肝臟疾病生物標志物也變的更加重要。目前臨床常用的肝臟疾病和毒性的檢測指標主要包括谷丙轉(zhuǎn)氨酶(alanine transaminase,ALT)、天門冬氨酸氨基轉(zhuǎn)移酶(aspartate transaminase,AST)、堿性磷酸酶(aspartate transaminase,ALP)等。尋找肝臟疾病發(fā)生、發(fā)展過程中的相關(guān)代謝產(chǎn)物及其變化規(guī)律有助于研究肝病的發(fā)生及發(fā)展機制,為部分肝病的預防、診斷和治療提供依據(jù)。

        實驗和臨床研究表明,溶血磷脂酰膽堿類(lysophosphatidylcholines,LPCs)物質(zhì)在多種肝臟疾病和肝毒性中有明顯的變化。本文綜述了近年來LPCs與肝臟疾病和化學性肝毒性關(guān)系的一些新認識,特別是其在實驗性肝臟疾病模型和臨床肝臟疾病中的變化,為肝臟疾病的基礎(chǔ)研究與臨床治療提供參考。

        1 LPCs的體內(nèi)代謝與生物學功能

        LPCs是磷脂質(zhì)中的一類物質(zhì),又稱溶血卵磷脂,不溶于丙酮、乙醚;LPCs的分子結(jié)構(gòu)通式見Fig 1。LPCs在細胞膜和組織中少量或微量存在,其在細胞膜的含量≤3%,在血漿中占8%~12%,正常的濃度范圍是12~166μmol·L-1。LPCs具有細胞毒性,使內(nèi)皮細胞變性、壞死、脫落,其含量高的時候會發(fā)生溶血反應,破壞纖溶和凝血系統(tǒng)的平衡;在組織中,LPCs能夠運輸甘油磷脂成分,如脂肪酸、磷脂酰甘油和膽堿。

        Fig 1 Chem ical scaffold of LPCs

        血漿中的LPCs部分由分泌型磷脂酶A2(secretory phospholipase A2,sPLA2)水解磷脂失去一分子的脂肪酸產(chǎn)生。組織中的LPCs也可以通過水解磷脂酰膽堿(phosphatidylcholine,PC)而生成,并依靠磷脂酶 A2(phospholipase A2,Pla2)作為脫乙酰化/再乙?;h(huán)的一部分來調(diào)控整個分子的合成。LPCs的合成與分解代謝主要發(fā)生在肝臟,并表現(xiàn)為血漿中LPCs水平的波動,因此其在診斷和防治肝臟疾病中有一定的價值。LPCs在肝臟中可以通過卵磷脂膽固醇?;D(zhuǎn)移酶(lecithin cholesterol acyltransferase,Lcat)催化 PC生成,在溶血磷脂酰膽堿?;D(zhuǎn)移酶(lysophosphatidylcholine acyltransferase,Lpcat)1-4,溶血磷脂酶 A1(lysophospholipase A1,Lypla1)和核苷酸內(nèi)焦磷酸酶/磷酸二酯酶(ectonucleotide pyrophosphatase/phosphodiesterase2,Enpp2)等代謝酶的作用下,LPCs又能被分解代謝。

        已有研究表明LPCs在人體內(nèi)某些疾病中會發(fā)生變化,如LPCs能調(diào)節(jié)低密度脂蛋白的代謝,參與固醇引起的動脈粥樣硬化病變[4-5];可以誘導細胞膜脂質(zhì)過氧化而損傷內(nèi)皮細胞[6];LPCs也可以激活白細胞殺死入侵的細菌,調(diào)控單核巨噬細胞和淋巴細胞的免疫功能,促進體內(nèi)的炎癥反應,預防敗血癥[7]。由于多種肝臟疾病和藥物引起的肝損傷中血漿LPCs的水平發(fā)生了明顯的變化,隨著研究的深入,LPCs可能會成為肝臟疾病和肝毒性損傷的生物標志物,對肝臟疾病和藥物肝毒性的診斷與治療發(fā)揮重要作用。

        2 LPCs與肝癌的關(guān)系

        在大鼠肝癌的模型中,學者們對♂ SD大鼠每周腹腔注射1次70 mg·kg-1的二乙基亞硝胺,每兩周處死1只大鼠以研究癌變進展,并在6~20周每兩周收集隔夜空腹的大鼠血清。該研究發(fā)現(xiàn),在8~10周炎癥時期,LPC 22∶5的水平下降,第16周后,隨著腫瘤的生長,代謝物LPC 22∶5水平明顯升高,因此推測LPC 22∶5是癌癥的代謝標志物之一[8]。為了驗證該標志物在臨床上的實用性,該課題組又通過對262個肝癌患者、76個肝硬化患者和74個乙型肝炎病毒感染的患者進行臨床研究,發(fā)現(xiàn)這個代謝物對肝癌具有較高的敏感性和特異性[8]。但另有學者通過對Fisher大鼠肝癌模型,以及肝癌和肝硬化患者的血清進行代謝組學研究,發(fā)現(xiàn)LPC 24∶0可能是腫瘤的生物標志物[9];可見,肝臟腫瘤、肝硬化等病變過程中確實伴隨LPCs的變化,但基于檢測手段的不同和實驗設(shè)計的差異,究竟哪一個LPC是腫瘤的特異性標志物有待進一步研究。

        另一項研究通過二乙基亞硝胺誘導建立大鼠肝炎-肝硬化-肝癌動物模型,運用液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用分析技術(shù)(LC-MS)研究了大鼠肝癌模型,對血漿和肝組織進行代謝組學研究,觀察血漿小分子在不同階段的變化,尋找、篩選及鑒定血漿代謝產(chǎn)物分子標志物,結(jié)果發(fā)現(xiàn)LPC 22∶5在18周之后濃度升高,并且其可以區(qū)分肝癌早期(16周)和肝癌進展期(20周)[10]。又通過對28例慢性肝炎、28例肝硬化和45例肝癌病人進行代謝組學的研究,將動物實驗中發(fā)現(xiàn)的區(qū)分肝癌與非肝癌的代謝產(chǎn)物與臨床肝炎、肝硬化和肝癌病人的血漿代謝組數(shù)據(jù)進行比較[10],結(jié)果發(fā)現(xiàn)LPC 22∶5是其中一個潛在的分子標志物。

        Patterson等[11]基于超高效液相色譜-三重四級桿-飛行時間質(zhì)譜聯(lián)用(UPLC-ESI-QTOFMS)技術(shù)對20例肝癌患者的血漿進行了代謝組學分析,并通過把健康人和肝硬化患者作為對照組,發(fā)現(xiàn)與肝硬化患者相比,肝癌患者中的LPC 14∶0、LPC 20∶3和LPC 22∶6的水平明顯下降,與健康的人相比,肝癌患者中脫氧膽酸的濃度明顯升高,LPC 14∶0、LPC 16∶0、LPC 18∶1、LPC 20∶2、LPC 20∶3、LPC 20∶4、LPC 20∶5的濃度下降。結(jié)果表明肝硬化能夠降低肝癌患者血清中LPCs的濃度。

        國內(nèi)學者也對肝癌患者的肝組織代謝物譜進行了分析,并尋找潛在的腫瘤代謝標志物。學者們收取了13例原發(fā)性肝癌患者(經(jīng)病理學確認)的肝癌組織、癌旁過渡組織、正常肝組織標本,利用LC-MS技術(shù)對樣本進行檢測,結(jié)果發(fā)現(xiàn)LPC 17∶0和LPC 18∶0在過渡組織和癌組織中均明顯上調(diào)[12]。在研究病毒性肝炎所致的肝癌患者的血清代謝物譜中,發(fā)現(xiàn)了26種差異性代謝物,其中LPC 20∶1、LPC 20∶2、LPC P-18∶0和LPC 15∶0被鑒定為潛在的原發(fā)性肝癌的腫瘤標志物[13]。另一項研究通過對23名肝癌患者和22名肝硬化患者的糞便代謝物檢測分析,發(fā)現(xiàn)LPC 16∶0和LPC 18∶0的濃度明顯升高[14]。

        可見,LPCs在肝癌實驗模型和臨床患者中均變化明顯,但不同的學者所發(fā)現(xiàn)的標志LPC成分并不相同,究竟哪一些LPCs可以做為肝癌的警示標志物有待于在統(tǒng)一的實驗方案中進行確認。

        3 LPCs與膽汁淤積的關(guān)系

        在用膽酸(cholic acid,CA)食飼野生型小鼠和PPARα-/-小鼠的實驗中,PPARα-/-小鼠體內(nèi)血清 LPC 16:0、LPC 18:0下降,磷脂的體內(nèi)穩(wěn)態(tài)被破壞。說明PPARα對膽汁酸和LPCs的合成、運輸和分泌起著重要的調(diào)控作用[15]。我們課題組的研究表明,PPARα激動劑吉非羅齊食飼干預野生型小鼠和PPARα-/-小鼠,結(jié)果野生型小鼠中膽汁酸水平明顯升高,LPC 16∶0和LPC 18∶1明顯升高,而LPC 18∶0和LPC 22∶6明顯降低,基因表達檢測結(jié)果支持了這些代謝物變化的趨勢[16]。

        石膽酸(lithocholic acid,LCA)是引起肝毒性的有效化學物質(zhì)。給予♀法尼酯X受體基因敲除(FXR-/-)小鼠質(zhì)量分數(shù)為0.006克/百克的LCA食飼干預后,對血清LPCs成分進行定量,發(fā)現(xiàn)血清 LPC 16∶0、LPC 18∶0、LPC 18∶1和LPC 18∶2的水平明顯下降,提示LPCs可能是石膽酸型膽汁淤積的生物標志物[17]。另一項研究采用了Smad3-/-小鼠,在給予質(zhì)量分數(shù)為0.006克/百克的 LCA食飼干預后對小鼠血清中的BA和LPCs進行測定,結(jié)果顯示LCA暴露后BA的水平增加,LPCs的水平下降[18]。

        在上述膽汁淤積模型中,多個LPCs的穩(wěn)態(tài)被打亂,但在不同的模型中,它們的變化趨勢不完全相同,因此臨床實踐中無論LPCs升高還是降低,都應當警惕膽汁淤積的發(fā)生。

        4 LPCs與肝硬化的關(guān)系

        早期的研究表明,LPCs與硫代乙酰胺誘導慢性肝細胞壞死有關(guān)[19]。應用利福平(rifampicin,RIF)對擬人化(hPXR)小鼠、Pxr-/-小鼠、野生型小鼠以及 TgCYP3A4/hPXR小鼠進行預處理并用撲熱息痛(acetaminophen,APAP)干預后,血清代謝組學顯示LPC 18∶0、LPC 20∶3、LPC 20∶4、LPC 22∶6和LPC 18∶3的水平明顯下降,LPCs的變化與毒性升高有關(guān)[20]。研究顯示LPCs可以被多種P450s代謝[21],50% ~75%的依賴 P450的花生四烯酸(arachidonic acid,AA)代謝物產(chǎn)生于肝臟微粒[22],因此,利福平誘導的hPXR活化作用可能加強LPCs分解代謝,而LPCs/AA的代謝物又可能會加重肝病,特別是肝硬化。

        在臨床研究中,對17名肝硬化患者和24名健康人的糞便代謝物進行檢測,發(fā)現(xiàn)他們的代謝物中LPC 16∶0、LPC 18∶0、LPC 18∶1和LPC 18∶2的濃度明顯增加,而膽汁酸和膽色素的濃度下降[23],表明肝硬化患者中伴隨肝功能損傷,脂肪酸及脂質(zhì)的代謝穩(wěn)態(tài)也發(fā)生紊亂。另一項研究對18名酒精性肝硬化和19名乙肝病毒引起的肝硬化患者的血液樣品進行了分析,結(jié)果發(fā)現(xiàn)在酒精性肝硬化和乙肝病毒引起的肝硬化患者的血清樣本中,LPC 16∶0、LPC 18∶0、LPC 18∶2、LPC 18∶3、LPC 20∶3和 LPC 20∶5的濃度明顯下降[24]。因此,LPCs可能是酒精性肝硬化和乙肝病毒引起的肝硬化的鑒別診斷的生物指標,與另一份研究報告LPCs是肝硬化的代謝標志物的結(jié)論相一致[25],證明了LPCs預警肝硬化疾病中的潛在價值。

        5 LPCs與脂肪肝的關(guān)系

        非酒精性脂肪肝炎(non-alcohol steatohepatitis,NASH)的發(fā)病機制尚未清楚,但是通過脂肪細胞凋亡模型進一步了解了非酒精性脂肪肝炎的發(fā)病機制。Han等[26]對棕櫚酸(palmitic acid,PA)誘導的肝細胞凋亡進行研究,對小鼠肝細胞中的LPCs含量進行測量,結(jié)果發(fā)現(xiàn)LPCs是肝細胞脂性凋亡的一個死亡效應器。此前已有研究表明外源性的LPCs能誘導細胞凋亡[27-28],而在大多數(shù)內(nèi)源性血清代謝物中,代謝物LPCs和膽汁酸同樣被認為是NASH小鼠中重要的代謝改變物,并且,在NASH患者血清中,牛黃膽酸鹽的增加和多種LPCs的減少已經(jīng)被報道[29-30]。之后,Han等[26]用 60 mg·kg-1的LPCs對ICR小鼠進行尾靜脈注射,AST/ALT的水平明顯升高,結(jié)果驗證了他們之前的假設(shè):LPCs參與肝細胞損傷。

        Tanaka等[31]用MCD飼料食飼♂ C57BL小鼠誘導非酒精性脂肪性肝炎,6~8周后對小鼠進行處理,對傳統(tǒng)的由MCD飲食誘導的NASH小鼠模型的血清代謝物進行分析,結(jié)果發(fā)現(xiàn)在這些小鼠中LPC 16∶0、LPC 18∶0和LPC 18∶1的含量明顯下降,LPCs的代謝功能在NASH小鼠中被破壞,可能是肝臟炎癥加強的信號。此前也有研究表明,在肝細胞中部分物質(zhì)的積累可以導致脂質(zhì)代謝物如LPCs的生成,致使肝細胞死亡;而細胞的死亡激活炎癥通道,從而導致炎癥細胞的募集[7,32-33]。

        國內(nèi)學者通過調(diào)查、比較酒精性肝損傷的裸鼠和帶有一個異種肝細胞癌移植的裸鼠的代謝物;血清中代謝物進行的分析表明,與對照組相比,飽和或不飽和的溶血磷脂酰膽堿類在肝損傷和肝細胞癌異種移植這兩組小鼠中減少,而含有多不飽和脂肪酸的溶血磷脂酰膽堿類則升高[34]。這些結(jié)果表明血清中的LPCs可能是酒精性脂肪肝和非酒精性脂肪肝兩種疾病的生物標志。

        6 LPCs在病毒性肝炎中的變化

        研究數(shù)據(jù)顯示,與健康志愿者相比,37名慢性乙型肝炎急性肝功能惡化的患者血清中,LPC 18∶0、LPC 16∶0、LPC 18∶1和LPC 18∶2可能是慢性乙型肝炎急性肝功能惡化的潛在生物標志物[35]。在HBV感染的不同階段,LPC 14∶0、LPC 16∶0、LPCP-18∶1、LPCP-18∶0、LPC 17∶0、LPC 18∶3、LPC 18∶0和LPC 20∶5等LPC成分的濃度在各組中均下降,在免疫清除期中下降尤為明顯[36]。這些重要的代謝物都與肝炎的病理生理過程有關(guān),這些LPCs被認為是免疫耐受期潛在的特異生物標志物,它們在肝細胞的損傷、修復、能量代謝、脂肪酸和膽汁酸的生物合成和炎癥的進展中發(fā)揮重要作用。

        在丙型肝炎患者中,病毒自發(fā)清除組、慢性丙型肝炎組和健康組之間的差異代謝物包括LPC 22∶5、LPC 16∶0,說明丙型肝炎感染后的脂質(zhì)代謝穩(wěn)態(tài)也發(fā)生變化[37]。LPCs能夠引發(fā)各種促炎效應,例如上調(diào)黏附分子和增加內(nèi)皮通透性等[38],這一特性也與LPCs在肝炎中水平變化有關(guān)。

        7 結(jié)論

        綜上可見,LPCs 22∶5已經(jīng)在多個實驗中被推測為可能的肝細胞癌生物標志物。在膽汁淤積型疾病中,LPC 18∶0在多個實驗中均下降,這對尋找膽汁淤積型疾病的生物標志物提供方向。LPC 22∶5、LPC 16∶0等多個成分都是乙型和丙型肝炎病毒共同的標志成分??梢娺@些常見的肝臟疾病和化學性肝毒性模型中都存在LPCs代謝穩(wěn)態(tài)的破壞。由于檢測手段和實驗設(shè)計的差異,不排除它們可能有共同的標志物沒有被確認,并且這些LPCs產(chǎn)生的機制尚沒有進行系統(tǒng)的研究和闡釋。采用統(tǒng)一的實驗設(shè)計和實驗平臺,發(fā)現(xiàn)和確認共同的生物標志物,并發(fā)現(xiàn)其發(fā)生變化的生化機制,預期能夠?qū)Ω闻K疾病和肝毒性的基礎(chǔ)研究、臨床診斷和治療產(chǎn)生巨大的推動作用,也是今后科學家需要面對的重要議題。

        參考文獻:

        [1] Mini?o A M,Murphy S L,Xu JQ,et al.Deaths:final data for 2008[J].Nat Vital Stat Rep,2011,59(10):1-126.

        [2] LeeW M.Drug-induced hepatotoxicity[J].New England JMed,2003,349(5):474-85.

        [3] Larrey D.Drug-induced liver diseases[J].JHepatol,2000,32:77-88.

        [4] Schmitz G,Ruebsaamen K.Metabolism and atherogenic disease association of lysophosphatidylcholine[J].Atherosclerosis,2010,208(1):10-8.

        [5] Domeij H,Hua X,Su J,et al.Annexin A5 inhibits atherogenic and pro-inflammatory effects of lysophosphatidylcholine[J].Prostaglandins Other Lipid Med,2013,106:72-8.

        [6] 劉 勇,余艷榮,彭維杰,等.吳茱萸次堿改善溶血性磷脂酰膽堿誘導的內(nèi)皮細胞縫隙連接細胞間通訊功能障礙[J].中國藥理學通報,2013,29(11):1514-9.

        [6] Liu Y,Yu Y R,PengW J,etal.Rutaecarpine prevents the disfunction of gap junction inter-cellular communication induced by LPC in endothelial cells[J].Chin Pharmacol Bull,2013,29(11):1514-9.

        [7] Yan JJ,Jung JS,Lee JE,etal.Therapeutic effects of lysophosphatidylcholine in experimental sepsis[J].NatureMed,2004,10(2):161-7.

        [8] Tan Y X,Yin PY,Tang L,etal.Metabolomics study of stepwise hepatocarcinogenesis from themodel rats to patients:potential biomarkers effective for small hepatocellular carcinoma diagnosis[J].Mol Cell Proteomics,2012,11(2):1-12.

        [9] Shariff M,Lewis M,Want E,et al.PWE-264 blood lipidomic profiling of hepatocellular carcinoma in human and animal studies identifies lysophosphatidylcholine(24,0,0),a discriminatory biomarker[J].Gut,2012,61(Suppl 2):A405.

        [10]湯 靚.DEN誘導大鼠肝癌模型的代謝組學研究[D].第二軍醫(yī)大學,2010.

        [10]Tang L.Metabonmic investigations of DEN induced hepatocellular carcinoma in SD rat[D].The Second Military Medical University,2010.

        [11]Patterson A D,Maurhofer O,Beyoglu D,etal.Aberrant lipidmetabolism in hepatocellular carcinoma revealed by plasmametabolomics and lipid profiling[J].Cancer Res,2011,71(21):6590-600.

        [12]范志娟.肝細胞肝癌患者組織代謝物的研究[D].天津醫(yī)科大學,2011.

        [12]Fan Z J.The study on tissuemetabolomites in hepatocellular carcinoma patients[D].Tianjin Medical Unversity,2011

        [13]丁黎莉.基于UPLC/Q-TOF-MS技術(shù)的肝硬化和肝癌患者血清代謝組學研究[D].吉林大學,2011.

        [13] Ding L L.A metabonomics study about liver cirrhosis and liver cancer plasma based on UPLC/Q-TOF-MS[D].Jilin Universcity,2011.

        [14]Cao H C,Huang H J,Xu W,etal.Fecalmetabolome profiling of liver cirrhosis and hepatocellular carcinoma patients by ultra performance liquid chromatography-mass spectrometry[J].Anal Chim Acta,2011,691(1-2):68-75.

        [15]Li F,Patterson A D,Krausz KW,et al.Metabolomics reveals an essential role for peroxisome proliferator-activated receptor alpha in bile acid homeostasis[J].J Lipid Res,2012,53(8):1625-35.

        [16]Liu AM,Krausz KW,F(xiàn)ang ZZ,etal.Gemfibrozildisrupts lysophosphatidylcholine and bile acid homeostasis via PPARαand its relevance to hepatotoxicity[J].Arch Toxicol,2014,88(4):983-96.

        [17]Matsubara T,Tanaka N,Patterson A D,et al.Lithocholic acid disrupts phospholipid and sphingolipid homeostasis leading to cholestasis in mice[J].Hepatology,2011,53(4):1282-93.

        [18]Matsubara T,Tanaka N,Sato M,et al.TGF-beta-SMAD3 signaling mediates hepatic bile acid and phospholipid metabolism following lithocholic acid-induced liver injury[J].J Lipid Res,2012,53(12):2698-707.

        [19]Osada J,Aylagas H,Mirò-Obradors M,et al.Lyso-phosphatidylcholine is implicated in thioacetamide-induced liver necrosis[J].Biochem Biophys Res Commun,1988,154(2):803-8.

        [20]Cheng J,Ma X C,Krausz K W,et al.Rifampicin-activated human pregnane X receptor and CYP3A4 induction enhance acetaminophen-induced toxicity[J].Drug Met Dispos,2009,37(8):1611-21.

        [21]Cho E Y,Yun CH,Chae H Z,et al.Lysophosphatidylserine-induced functional switch of human cytochrome P450 1A2 and 2E1 from monooxygenase to phospholipase D[J].Biochem Biophys Res Commun,2008,376(3):584-9.

        [22]Sacerdoti D,Gatta A,McGiff JC.Role of cytochrome P450-dependent arachidonic acidmetabolites in liver physiology and pathophysiology[J].Prostagl Other Lipid Med,2003,72(1):51-71.

        [23]Huang H J,Zhang A Y,Cao H C,etal.Metabolomic analyses of faeces reveals malabsorption in cirrhotic patients[J].Dig Liver Dis,2013,45(8):677-82.

        [24]Lian JS,LiW,Hao SR,et al.A serum metabonomic study on the difference between alcoholand HBV-induced liver cirrhosis by ultraperformance liquid chromatography coupled tomass spectrometry plus quadrupole time-of-flight mass spectrometry[J].Chin Med J,2011,124(9):1367-73.

        [25]杜振華,張 磊,劉樹業(yè).液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用系統(tǒng)在肝硬化不同階段代謝輪廓研究中的應用[J].色譜,2011,29(4):314-9.

        [25]Du Z H,Zhang L,Liu S Y.Application of liquid chramatographymass spectrametry in the study ofmetabolic profiling of cirrhosis in different grades[J].Chin JChromatography,2011,29(4):314-9.

        [26]Han M S,Park SY,Shinzawa K,et al.Lysophosphatidylcholine as a death effector in the lipoapoptosis of hepatocytes[J].J Lipid Res,2008,49(1):84-97.

        [27]Takahashi M,Okazaki H,Ogata Y,et al.Lysophosphatidylcholine induces apoptosis in human endothelial cells through a p38-mitogen-activated protein kinase-dependentmechanism[J].Atherosclerosis,2002,161(2):387-94.

        [28]Masamune A,Sakai Y,Satoh A,et al.Lysophosphatidylcholine induces apoptosis in AR42Jcells[J].Pancreas,2001,22(1):75-83.

        [29]Puri P,Wiest M M,Cheung O,et al.The plasma lipidomic signature of nonalcoholic steatohepatitis[J].Hepatology,2009,50(6):1827-38.

        [30]Kalhan SC,Guo L,Edmison J,etal.Plasmametabolomic profile in nonalcoholic fatty liver disease[J].Metabolism,2011,60(3):404-13.

        [31]Tanaka N,Matsubara T,Krausz KW,et al.Disruption of phospholipid and bile acid homeostasis in mice with nonalcoholic steatohepatitis[J].Hepatology,2012,56(1):118-29.

        [32]Kakisaka K,Cazanave SC,F(xiàn)ingas CD,etal.Mechanisms of lysophosphatidylcholine-induced hepatocyte lipoapoptosis[J].Am J Physiol Gastroint Liver Physiol,2012,302(1):G77.

        [33]Ruiz A G,Casafont F,Crespo J,et al.Lipopolysaccharide-binding protein plasma levels and liver TNF-alpha gene expression in obese patients:evidence for the potential role of endotoxin in the pathogenesis of non-alcoholic steatohepatitis[J].Obesity Surgery,2007,17(10):1374-80.

        [34]Li S,Liu H,Jin Y,et al.Metabolomics study of alcohol-induced liver injury and hepatocellular carcinoma xenografts inmice[J].J Chromatogr B Analyt Technol Biomed Life Sci,2011,879(24):2369-75.

        [35]Yang J,Zhao X,Liu X,et al.High performance liquid chromatography-mass spectrometry formetabonomics:potentialbiomarkers for acute deterioration of liver function in chronic hepatitis B[J].JProteome Res,2006,5(3):554-61.

        [36]邵 雪.基于HPLC/TripleTOF-MS/MS技術(shù)慢性乙型肝炎感染不同階段的代謝組學研究[D].吉林大學,2012.

        [36]Shao X.A metabonomics study of chronic hepatitis B in different stages using HPLC/TripleTOF-MS/MS[D].Jinlin University,2012.

        [37]姜 翠,吳瑞紅,王曉美,等.丙型肝炎病毒自發(fā)清除者的血清代謝組學研究[J].中華傳染病雜志,2013,31(002):101-6.

        [37]Jiang C,Wu R H,Wang XM,etal.A serum metabonomics study of hepatitis C virus spontaneous clearance patients[J].Chin J Infect Dis,2013,31(002):101-6.

        [38]Zalewski A,Macphee C.Role of lipoprotein-associated phospholipase A2 in atherosclerosis:biology,epidemiology,and possible therapeutic target[J].Arterioscler Thromb Vasc Biol,2005,25(5):923-31.

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