文 玉，劉 嘉，彭 珍，王福強(qiáng)，趙國(guó)華，3，4，*

（1.西南大學(xué)食品科學(xué)學(xué)院，重慶400715；2.四川省廣元市旺蒼縣農(nóng)業(yè)局，四川廣元628200；3.重慶市農(nóng)產(chǎn)品加工技術(shù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，重慶400715；4.重慶市甘薯工程技術(shù)研究中心，重慶400715）

紫薯（Ipomoea batatas L.）是栽培甘薯中的一種新類(lèi)型，其薯肉呈深紫色，又被稱(chēng)為紫心甘薯、紫肉甘薯、紫甘薯或紫色甘薯。紫薯不同于一般的甘薯品種，其營(yíng)養(yǎng)成分含量明顯高于普通的紅薯。紫薯的市場(chǎng)開(kāi)發(fā)主要集中在色素提取、鮮食、全粉和休閑食品加工等幾個(gè)方面[1]。紫薯去皮烘干粉碎后加工成全粉，色澤美觀，營(yíng)養(yǎng)豐富，主要用作面包、饅頭、膨化食品、湯料、沖服劑等制品的原輔料，并且在方便食品、冷凍食品以及調(diào)理食品的加工制造中具有廣泛的應(yīng)用。但目前國(guó)內(nèi)外在紫薯全粉的生產(chǎn)實(shí)踐中，沒(méi)有較為一致的、先進(jìn)的干燥工藝技術(shù)，干燥工藝技術(shù)很不成熟。本實(shí)驗(yàn)考察并比較了紫薯全粉在不同干燥方式處理下的水合特性及抗氧化能力，以期為食品工業(yè)中紫薯全粉的加工提供一定理論依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

紫薯 品種為萬(wàn)紫56，西南大學(xué)實(shí)驗(yàn)農(nóng)場(chǎng)基地；麥芽糊精 山東西王食品有限公司；氫氧化鈉、甲醇、三氯乙酸、硝酸鋁、鐵氰化鉀、無(wú)水乙醇 成都科龍化工廠，均為分析純；1，1-二苯基-2-苦肼基 日本和光純藥試劑公司，分析純。

YC-015型噴霧干燥器 上海雅程儀器設(shè)備有限公司；ALPHA 1-4 LSC型冷凍干燥機(jī) 河南兄弟儀器設(shè)備有限公司；G80D23CN2P-T7（B0）型微波爐 佛山市順德區(qū)格蘭仕微波爐電器有限公司漩渦；XW-80A型混合器 上海精科實(shí)業(yè)有限公司；DHG-9140型電熱恒溫鼓風(fēng)干燥箱 上海齊欣科學(xué)儀器有限公司；UltraSan PRO型色差儀 上海信聯(lián)創(chuàng)作電子有限公司；SHZ-ⅢD型循環(huán)水真空泵 上海亞榮生化試劑廠；BS223S型電子天平 北京塞多利斯儀器系統(tǒng)有限公司；HH-2型數(shù)顯恒溫水浴鍋 金壇市富華儀器有限公司；2000E型激光粒度分析儀 英國(guó)馬爾文儀器有限公司；5810型臺(tái)式高速離心機(jī) 德國(guó)Eppendorf公司。

1.2 實(shí)驗(yàn)方法

1.2.1 紫薯全粉制備與干燥

1.2.1.1 工藝流程 將新鮮紫薯清洗干凈后，加入蒸餾水在鍋中蒸煮（蒸餾水∶紫薯=6∶1，蒸煮溫度100℃，蒸煮時(shí)間25min），蒸熟后取出去皮，將去皮后的紫薯?yè)v碎成泥，放在室溫下冷卻，分別采取熱風(fēng)、冷凍、微波、噴霧四種干燥方式對(duì)其進(jìn)行干燥，將干燥后的樣品粉碎后包裝。

1.2.1.2 干燥方法 具體操作如下：

a.熱風(fēng)干燥：取200g干燥紫薯泥放入電熱恒溫鼓風(fēng)干燥箱中，于50℃條件下干燥10h，將干燥后的樣品粉碎后過(guò)80目篩。

b.冷凍干燥：取200g干燥紫薯泥，先在冰箱中預(yù)凍12h，放入真空冷凍干燥機(jī)中冷凍干燥30h，粉碎后過(guò)80目篩。

c.微波干燥：取200g干燥紫薯泥放入微波干燥器中，在800W、50Hz的條件下進(jìn)行干燥，每隔10s將樣品翻一次，共干燥10min左右，粉碎后過(guò)80目篩。

d.噴霧干燥：取200g紫薯泥于膠體磨中，加入助干劑后于30MPa條件下均質(zhì)2次，均質(zhì)得到的乳液用離心式噴霧干燥機(jī)進(jìn)行噴霧干燥（噴霧條件為：入料濃度17g/100g，進(jìn)風(fēng)溫度200℃，出風(fēng)溫度100℃，入料流量50mL/min）后收集粉體。

1.2.2 紫薯粉基本成分的測(cè)定 水分的測(cè)定：直接干燥法；灰分的測(cè)定：高溫灼燒法；粗蛋白的測(cè)定：凱氏定氮法；粗脂肪的測(cè)定：索氏抽提法，具體操作參照AOAC方法[2]；淀粉的測(cè)定：酸水解-高錳酸鉀滴定法[3]；粗纖維的測(cè)定：GB/T 5009.10-2003植物類(lèi)食品中粗纖維的測(cè)定。

1.2.3 干燥能耗的測(cè)定 能耗從在單相電度表上讀取。儀器開(kāi)始工作時(shí)，記下電表讀數(shù)，當(dāng)工作結(jié)束后，再讀取電表讀數(shù)，與前面讀數(shù)的差值即為解析干燥能耗。

單位水分能耗（kJ/kg）=干燥能耗（kJ）/除去水分質(zhì)量（kg）

1.2.4 紫薯粉粒度的測(cè)定 準(zhǔn)確稱(chēng)取紫薯粉樣品2.0g，在50℃分別采用熱風(fēng)、冷凍、微博、噴霧等四種方式干燥12h。將樣品用無(wú)水乙醇作為分散介質(zhì)，加入到400mL的樣品分散池中，采用儀器自帶的超聲分散系統(tǒng)對(duì)樣品進(jìn)行充分分散180s后，而后在攪拌系統(tǒng)和循環(huán)系統(tǒng)以及超聲波的同時(shí)作用下測(cè)定不同甘薯淀粉樣品的粒徑及分布，每隔2s記錄一次數(shù)據(jù)，測(cè)定時(shí)間120s，統(tǒng)計(jì)平均值，得出粒徑分布數(shù)據(jù)。

1.2.5 紫薯粉水合特性的測(cè)定

1.2.5.1 持水力的測(cè)定 根據(jù)Zhao等[4]的方法稍加改動(dòng)。準(zhǔn)確稱(chēng)取紫薯粉0.5g置于20mL離心管中，加蒸餾水10mL，振蕩均勻，在60℃下分別水浴10～60min后用自來(lái)水冷卻30min，6000r/min離心15min，小心棄去上清液，稱(chēng)重。

持水力（g/g干基）=[M2-（M1+M）]/M

式中：M1：離心管重量，g；M2：離心管+沉淀物的重量，g；M：樣品重量，g。

1.2.5.2 溶水指數(shù)和復(fù)水性的測(cè)定 溶水指數(shù)和復(fù)水性的測(cè)定根據(jù)Ahmed等[5]的方法稍加改動(dòng)。準(zhǔn)確稱(chēng)取紫薯粉0.5g置于20mL離心管中，加蒸餾水10mL，振蕩均勻，分別在25、30、40、50、60、70、80℃下水浴30min，6000r/min離心15min后，將上清液傾倒于已稱(chēng)重的培養(yǎng)皿中，在105℃下烘12h后稱(chēng)重并稱(chēng)重沉淀物。

溶水指數(shù)（g/g干基）=[M2-（M1+M）]/M；

復(fù)水性（g/g干基）=M2/M

式中：M1：上清液重量，g；M2：沉淀物的重量，g；M：樣品重量，g。

1.2.6 紫薯粉抗氧化成分的測(cè)定

1.2.6.1 花色苷測(cè)定 花色苷的測(cè)定根據(jù)Hosseinian等[6]的pH示差法并稍加改動(dòng)。準(zhǔn)確稱(chēng)取紫薯粉0.5g于50mL離心管中，加入7.5mL 1mol/L酸化甲醇（HCl∶甲醇=15∶85，v/v），搖勻，在60℃水浴1h后用離心機(jī)8000r/min下離心15min，收集上清液。將上清液置于100mL的圓底燒瓶，在40℃下旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)至上清液全部蒸干，然后加入5mL甲醇。準(zhǔn)確量取此溶液0.3mL，分別用pH為1.0、濃度為0.025mol/L的鹽酸-氯化鉀緩沖液和pH為4.5、濃度為0.4mol/L的鹽酸-醋酸鈉緩沖液稀釋至9mL，在25℃下放置15min后，然后在530nm和700nm分別測(cè)定其吸光度，且以蒸餾水為空白對(duì)照。

花色苷（mg/100g，干基）=A×MW×DF×V×100×1000/（ε×W）

式中：A：吸光度；MW：氯化-3-葡萄糖苷的分子量，449.2g/mol；DF：稀釋倍數(shù)，30；V：樣品初始體積，0.3mL；ε：摩爾吸光系數(shù)，26900；W：樣品重量，g。

1.2.6.2 類(lèi)黃酮測(cè)定 具體方法如下：

a.蘆丁標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)的繪制 參考萬(wàn)利秀等[7]的方法得到標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)為Y=11.94X+0.0028，R2=0.9978。

b.類(lèi)黃酮的提取 參考Andarwulan等[8]的方法并稍加修改。準(zhǔn)確稱(chēng)取紫薯粉1.0g，用30mL 95%（v/v）的甲醇溶液在60℃下提取3h后8000r/min離心15min，收集上清液并冷卻。然后，用95%（v/v）的甲醇溶液將上清液定容至100mL備用。類(lèi)黃酮含量的測(cè)定參考Ahmed等[4]的方法。準(zhǔn)確量取提取液1.0mL于10mL的棕色容量瓶中，分別加入4.0mL的30%（v/v）的甲醇溶液和0.4mL的5%（w/v）的亞硝酸鈉溶液，搖勻后放置6min，再加入0.4mL的10%（w/v）Al（NO3）3溶液，搖勻后放置6min，最后加入4mL的4%（w/v）NaOH溶液并用30%（v/v）的甲醇溶液定容至10mL，振蕩均勻后靜置15min，然后在510nm處測(cè)定其吸光度，根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)計(jì)算類(lèi)黃酮含量。

1.2.6.3 總酚含量測(cè)定 具體步驟如下：

a.Folin-ciocalten試劑的配制參考文獻(xiàn)[9]。

b.沒(méi)食子酸標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)的制定參考文獻(xiàn)[10]，得到標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)Y=173X+0.0018，R2=0.9994。

c.總酚的測(cè)定 總酚提取與測(cè)定根據(jù)Malkeet等[11]的方法并稍加改動(dòng)。準(zhǔn)確稱(chēng)取紫薯粉1.0g，用8mL 80%（v/v）的甲醇溶液在80℃水浴10min，重復(fù)提取兩次后在8000r/min離心15min，收集兩次的上清液并用80%（v/v）甲醇溶液稀釋至50mL。此提取液保存于棕色容量瓶中并放置在-18℃下，用于總酚和抗氧化力的測(cè)定。準(zhǔn)確量取提取液0.25mL于50mL的棕色容量瓶中，加入1.0mL 1.0mol/L福林酚溶液，搖勻靜置3min后，加入2mL 15%（w/v）Na2CO3溶液，搖勻，用蒸餾水定容至50mL。室溫下反應(yīng)2h后在760nm處測(cè)定吸光度A760nm，根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)計(jì)算總酚含量。

總酚含量（g/100g，干基）=（C×50×N）/W×10

式中：C：查標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)值，為測(cè)量時(shí)樣品液的濃度，mg/mL；50：測(cè)量時(shí)樣品液定容的體積，mL；N：稀釋倍數(shù)；W：樣品重量，g。

1.2.7 紫薯粉抗氧化力的測(cè)定[12]

1.2.7.1 DPPH自由基清除力的測(cè)定 準(zhǔn)確稱(chēng)取紫薯粉2～10mg（干基），加入4mL現(xiàn)配制的0.1mmol/L DPPH甲醇溶液。漩渦振蕩2min，避光搖晃20min，10000r/min離心10min，測(cè)定其上清液吸光度A517nm。

DPPH自由基清除率（%）=[A0-（A1-A2）]/A0×100

式中：A0：80%甲醇溶液代替樣品的吸光度；A1：樣品的吸光度；A2：80%甲醇溶液代替DPPH溶液的吸光度。

1.2.7.2 還原力的測(cè)定 準(zhǔn)確稱(chēng)取紫薯粉1～5mg（干基），加入1mL濃度為0.2mol/L、pH為6.6的磷酸鹽緩沖液和1%（w/v）的鐵氰化鉀1mL，搖勻后在50℃下水浴20min，冷卻，再加入1mL 10%（w/v）的三氯乙酸，然后在3000r/min下離心10min，取上清液1mL，加蒸餾水2mL和1mL 0.1%（w/v）三氯化鐵，混勻靜置10min后在700nm處測(cè)定其吸光度。吸光值越高表示樣品的還原力越大。

1.2.8 脂質(zhì)過(guò)氧化抑制力的測(cè)定 稱(chēng)取40mg亞油酸和400mg吐溫40，加到2.5mL β-胡蘿卜素溶液中（2mg β-胡蘿卜素溶解于10mL氯仿），制備出β-胡蘿卜素/亞油酸乳液。旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)氯仿后，加100mL蒸餾水并振蕩均勻。準(zhǔn)確稱(chēng)取紫薯粉10～50mg（干基），加入4mL乳液，在50℃下水浴60min后在470nm處測(cè)定其吸光度。以蒸餾水為空白對(duì)照。

脂質(zhì)過(guò)氧化抑制率（%）=（ΔA1-ΔA2）/ΔA1×100

式中：ΔA1：對(duì)照組吸光度（t=0min）－對(duì)照組吸光度（t=60min）；ΔA2：樣品吸光度（t=0min）－樣品吸光度（t=60min）。

2 結(jié)果與分析

2.1 干燥方式對(duì)紫薯粉基本成分的影響

表1為各種干燥紫薯粉的基本成分。紫薯粉經(jīng)冷凍干燥、熱風(fēng)干燥、微波干燥和噴霧干燥后，其含水量在6.95%～8.68%范圍，都達(dá)到甘薯粉貯藏安全水分要求（≤14%）。冷凍、熱風(fēng)和微波干燥（95～105℃）產(chǎn)品的粗纖維含量較高，這可能是粗纖維化學(xué)成分本身穩(wěn)定性較好，常規(guī)溫度下加工不易造成損失[13]。而噴霧干燥（100～200℃）產(chǎn)品的纖維含量較低，這可能是其干燥溫度較高，對(duì)纖維有破壞作用[14]?？偟膩?lái)說(shuō)，冷凍干燥溫度低，對(duì)紫薯粉粗蛋白和淀粉保護(hù)最好；其次是噴霧干燥，雖然它的溫度高，但干燥時(shí)間很短；微波干燥對(duì)紫薯粉營(yíng)養(yǎng)成分破壞最大，可能由于其干燥溫度高，時(shí)間較長(zhǎng)。從單位水分能耗來(lái)看，能耗由小到大的順序依次為：微波干燥、噴霧干燥、熱風(fēng)干燥和冷凍干燥。

2.2 干燥方式對(duì)紫薯粉粒度的影響

表2中D0.1、D0.5、D0.9分別表示累計(jì)分布10%、50%、90%所對(duì)應(yīng)的粒徑，徑距=（D0.9-D0.1）/D0.5。其中D0.5是代表粉體粘結(jié)度的平均直徑。徑距表示粒度大小分布的跨度，其值越小表示粒度大小分布值越小和粒度大小越均一。由表2可知，噴霧干燥所得樣品的D0.5顯著低于其他三種干燥方式，這是由于噴霧干燥是通過(guò)加壓霧化形成的液滴，而其他三種干燥方式的紫薯粉造粒方式一樣，因此粒度差異不大。此外，微波干燥組的徑距值顯著小于其他組，說(shuō)明其粒度大小較均一，而噴霧干燥得到的紫薯粉徑距最大，說(shuō)明經(jīng)過(guò)噴霧干燥后雖能達(dá)到較小粒度，但粒度均一性較差。

2.3 干燥方式對(duì)紫薯粉持水力和復(fù)水性的影響

表1 干燥方式對(duì)紫薯粉的基本成分的影響及能耗評(píng)價(jià)Table 1 Effect of drying methods on proximate composition of purple sweet potato flours and estimation of energy consumption

由圖1可知，不同方式干燥的紫薯粉持水力（圖1A）隨浸泡時(shí)間的延長(zhǎng)而逐漸上升。對(duì)于復(fù)水性（圖1B），不同干燥樣品隨著時(shí)間的延長(zhǎng)逐漸上升，最后達(dá)到平衡。不同干燥方式之間的持水力和復(fù)水性都存在顯著差異。冷凍干燥、熱風(fēng)干燥和微波干燥得到的紫薯粉持水力較高，噴霧干燥最低，這可能與纖維素、淀粉含量以及淀粉內(nèi)部束水的位置不同有關(guān)[15]。冷凍干燥的紫薯粉由于質(zhì)地疏松、多孔，所以復(fù)水性最好。馬先英等[16]在不同干燥方法對(duì)胡蘿卜復(fù)水性及品質(zhì)影響的研究中發(fā)現(xiàn)，當(dāng)樣品在高功率微波下（＞340W）持續(xù)干燥時(shí)，樣品本身升溫過(guò)高，導(dǎo)致樣品內(nèi)部組織遭到嚴(yán)重破壞，因而影響物料的復(fù)原能力。同時(shí)，通過(guò)對(duì)噴霧干燥所得到紫薯全粉的電鏡圖也可以得出相似結(jié)論[17]。本實(shí)驗(yàn)微波干燥的功率（800W）較高，所以產(chǎn)品復(fù)水性小于熱風(fēng)干燥。

表2 不同干燥方式對(duì)紫薯粉粒度的影響Table 2 Effect of drying methods on the particle size of purple sweet potato flours

圖1 干燥方式對(duì)紫薯粉持水力（A）和復(fù)水性（B）的影響Fig.1 Effect of drying methods on the water holding capacity（A）and water absorption index（B）of purple sweet potato flours

2.4 干燥方式對(duì)紫薯粉溶水指數(shù)的影響

溶水指數(shù)是指紫薯粉的溶水能力。由圖2可知，不同干燥的紫薯粉的溶水指數(shù)，在25～50℃內(nèi)，上升緩慢，從60℃開(kāi)始顯著升高。不同干燥方式對(duì)紫薯粉的溶水指數(shù)有顯著差異。其中噴霧干燥的紫薯粉水溶性最好，其次是微波干燥、熱風(fēng)干燥，而冷凍干燥最差。溶水指數(shù)與淀粉顆粒結(jié)構(gòu)有關(guān)，可能由于噴霧干燥高溫導(dǎo)致淀粉結(jié)構(gòu)破壞，低分子量的直鏈淀粉溶解并通過(guò)非結(jié)晶區(qū)溶出[18-19]。也有可能與噴霧干燥紫薯粉粒度最小有關(guān)[20]。

圖2 干燥方式紫薯粉溶水指數(shù)的影響Fig.2 Effect of drying methods on the water solubility index of purple sweet potato flours

2.5 干燥方式對(duì)紫薯粉抗氧化成分的影響

表3 干燥方式對(duì)紫薯粉的花色苷、類(lèi)黃酮和總酚含量（干基）的影響Table 3 Effectofdryingmethodsonthecontentofanthocyanins，flavonoids and total phenolics of purple sweet potato flours

由表3可知，不同干燥方式對(duì)紫薯的各抗氧化成分有顯著影響，花色苷損失率為27.64%～52.66%，類(lèi)黃酮損失率為44.95%～56.45%，總酚損失了44.09%～63.26%。噴霧干燥和冷凍干燥紫薯粉花色苷含量最高，這可能由于前者是瞬間高溫干燥而后者是低溫干燥，對(duì)花色苷破壞程度較小。干燥后紫薯全粉中類(lèi)黃酮和總酚含量順序?yàn)椋簢婌F干燥＞微波干燥＞冷凍干燥＞熱風(fēng)干燥。由此可見(jiàn)，噴霧干燥過(guò)程中紫薯粉的抗氧化物質(zhì)損失較少。由于微波干燥溫度（95～105℃）高于冷凍干燥（-20℃）和熱風(fēng)干燥（50℃），導(dǎo)致細(xì)胞結(jié)構(gòu)被破壞，從而利于更多類(lèi)黃酮和總酚的釋放與提取[21]。冷凍干燥是非熱處理，利于成分的保留，且形成的冰晶使細(xì)胞破裂也利于抗氧化物質(zhì)的提取，熱風(fēng)干燥過(guò)程中可能由于酶或熱降解而導(dǎo)致抗氧化成分損失[22]。

2.6 干燥方式對(duì)紫薯粉抗氧化力的影響

目前，抗氧化力的測(cè)定主要是對(duì)提取物質(zhì)中可溶性抗氧化成分進(jìn)行測(cè)定。據(jù)Rumbaoa等[23]報(bào)道，87.1%的酚類(lèi)物質(zhì)屬于結(jié)合態(tài)，且提取較困難。本實(shí)驗(yàn)采用Serpen等[12]研究報(bào)道的固體粉末抗氧化力測(cè)定法。固體粉末的抗氧化測(cè)定包括可溶性成分的直接測(cè)定和不可溶性成分的表面反應(yīng)測(cè)定。由圖3可知，經(jīng)不同干燥的紫薯粉的DPPH自由基清除力（圖3A），還原力（圖3B）和脂質(zhì)過(guò)氧化抑制力（圖3C）都隨著紫薯固體粉末量的增加而顯著提高。由表4可知，噴霧干燥紫薯粉的DPPH自由基清除力最強(qiáng)，其次是冷凍干燥。不同干燥的紫薯粉的還原力大小為：噴霧干燥＞微波干燥＞冷凍干燥＞熱風(fēng)干燥。紫薯固體粉末的脂質(zhì)過(guò)氧化抑制力大小為：冷凍干燥＞噴霧干燥＞微波干燥＞熱風(fēng)干燥，此順序與不同干燥紫薯粉中花色苷含量結(jié)果一致。結(jié)合表5可得出，花色苷含量與紫薯固體粉末的脂質(zhì)過(guò)氧化抑制力之間的相關(guān)系數(shù)達(dá)到0.92，因此經(jīng)不同干燥的紫薯固體粉末的脂質(zhì)過(guò)氧化抑制力主要取決于花色苷含量。

表4 干燥方式對(duì)紫薯粉半最大抗氧化效應(yīng)濃度的影響Table 4 Effect of drying method on the concentration for 50%of maximal antioxidant effect（EC50）of purple sweet potato flours

表5 紫薯粉抗氧化成分含量與紫薯粉抗氧化力的相關(guān)性分析Table 5 Correlation analysis of bioactive components and antioxidant properties of purple sweet potato flours

3 結(jié)論

本文研究了干燥方式對(duì)紫薯全粉基本成分、水合特性及抗氧化能力及抗氧化能力的影響。經(jīng)干燥后，紫薯全粉的粗蛋白與粗脂肪差異不顯著，而淀粉、粗纖維、總酚含量以及抗氧化物質(zhì)的含量差異顯著。四種干燥方式的單位水分能耗從大到小依次為：冷凍干燥、熱風(fēng)干燥、噴霧干燥、微波干燥；從持水力和復(fù)水性看從大到小依次為：冷凍干燥、熱風(fēng)干燥、微波干燥、噴霧干燥，而溶水指數(shù)依次升高。噴霧干燥所得紫薯固體粉末的DPPH自由基清除力和還原力最高，說(shuō)明噴霧干燥能夠盡可能地保持紫薯營(yíng)養(yǎng)、結(jié)構(gòu)的完整性，從而表現(xiàn)出較好的品質(zhì)，使其以后在食品原料或輔料加工方面應(yīng)用具有更好的加工性能，而熱風(fēng)干燥所得產(chǎn)品的DPPH自由基清除力和還原力最低。從這兩種抗氧化模型看，類(lèi)黃酮和總酚是主要的抗氧化物質(zhì)。而脂質(zhì)過(guò)氧化抑制力的大小順序依次為冷凍干燥、噴霧干燥、微波干燥、熱風(fēng)干燥，主要是由于真空冷凍干燥對(duì)起抑制脂質(zhì)過(guò)氧化作用的花色苷破壞程度較小。從紫薯全粉品質(zhì)角度出發(fā)，冷凍和噴霧干燥較好；從能耗節(jié)約的角度而言，微波與噴霧干燥較好。綜合考慮，噴霧干燥效果較好。

[1]Osundahunsi O F，F(xiàn)agbemi TN，Kesselman E，et al.Comparison of the physicochemical properties and pasting characteristics of flour and starch from red and white sweet potato cultivars[J].Journal Agricultural and Food Chemistry，2003，51（8）：2232－2236.

[2]AOAC.Official Methods of Analysis of AOAC International[S].Gaithersburg：Patricia C，16th ed，1995.

[3]吳謀成.食品分析與感官評(píng)定[M].北京：中國(guó)農(nóng)業(yè)出版社，2006：79-80.

[4]Zhao Xiaoyan，Yang Zaibin，Gai Guosheng，et al.Effect of superfine grinding on properties of ginger powder[J].Journal of Food Engineering，2009，91（9）：217－222.

[5]Ahmed M，Akter MS，Lee JC，et al.Encapsulation by spray drying of bioactive components，physicochemical and morphological properties from purple sweet potato[J].LWT-Food Science and Technology，2010，43（9）：1307－1312.

[6]Hosseinian FS，Li W，Beta T.Measurement of anthocyanins and other phytochemicals in purple wheat[J].Food Chemistry，2008，109（4）：916－924.

[7]萬(wàn)利秀，肖更生，徐玉娟，等.甲醇提取柑橘皮總黃酮的工藝優(yōu)化[J].安徽農(nóng)業(yè)科學(xué)，2010，38（27）：15087－15089.

[8]Andarwulan N，Batari R，Sandrasari DA，et al.Flavonoid content and antioxidant activity of vegetables from Indonesia[J].Food Chemistry，2010，121（4）：1231－1235.

[9]于亞莉，高峰，劉靜波，等.超聲波法提取花生殼眾多酚類(lèi)物質(zhì)的研究[J].食品科學(xué)，2007，28（11）：257－261.

[10]李巨秀，王柏玉.福林-酚比色法測(cè)定桑椹中總多酚[J].食品科學(xué)，2009（30）：292-295.

[11]Malkeet S P，David H P.Quantification of phenolic acids and antioxidant activity in sweetpotato genotypes[J].Scientia Horticulturae，2008，119（1）：17－20.

[12]Serpen A，Gokmen V，Karagoz A，et al.Phytochemical quantification and total antioxidant capacities of emmer（Triticum dicoccon Schrank）and einkorn（Triticum monococcum L.）wheat landraces[J].Journal of Agricultural and Food Chemistry，2008，56（16）：7285－7292.

[13]王璋，許時(shí)嬰，江波，等譯.食品化學(xué)[M].第三版.北京：中國(guó)輕工業(yè)出版社，2003，632.

[14]常虹，李遠(yuǎn)志，張慧敏.不同干燥方式制備菠蘿粉的效果比較[J].農(nóng)產(chǎn)品加工，2009（3）：135－137.

[15]張鐘，劉曉明.不同干燥方法對(duì)生姜粉物理性質(zhì)的影響[J].農(nóng)業(yè)工程學(xué)報(bào)，2005，21（11）：186－188.

[16]馬先英，趙世明，林艾光.不同干燥方法對(duì)胡蘿卜復(fù)水性及品質(zhì)的影響[J].大連水產(chǎn)學(xué)院學(xué)報(bào)，2006，21（2）：158－161.

[17]Peng Zhen，Li Jing，Zhao Guohua，et al.Effect of carriers on physicochemical properties，antioxidant activities and biological components of spray-dried purple sweet potato flours[J].LWTFood Science and Technology，2013，51（1）：348－355.

[18]Nwokocha LM，Williams PA.New starches：Physicochemical properties of sweetsop（Annona squamosa） and soursop（Anonna muricata）starches[J].Carbohydrate Polymers，2009，78（3）：462－468.

[19]Nwokocha LM，Williams PA.Some properties of white and yellow plantain（Musa paradisiaca，normalis） starches[J].Carbohydrate Polymers，2009，76（1/2）：133－138.

[20]宮元娟，曾程，王強(qiáng)，等.胡蘿卜微粉物理特性和營(yíng)養(yǎng)成分的影響因素[J].農(nóng)業(yè)機(jī)械學(xué)報(bào)，2009，40（11）：124－128.

[21]Yang Jing，Chen Jinfeng，Zhao Yuying，et al.Effects of drying processes on the antioxidant properties in sweet potatoes[J].Agricultural Sciences in China，2010，9（10）：1522－1529.

[22]Chan EWC，Lim YY，Wong SK，et al.Effects of different drying methods on the antioxidant properties of leaves and tea of ginger species[J].Food Chemistry，2009，113（1）：166－172.

[23]Rumbaoa RGO，Cornago DF，Geronimo IM.Phenolic content and antioxidant capacity of Philippine sweet potato（Ipomoea batatas）varieties[J].Food Chemistry，2009，113（4）：1133－1138.