鄭 昊, 毛家維, 潘彥博, 劉忠山,劉哲益, 葉明亮, 鄒漢法
(1.中國科學(xué)院分離分析化學(xué)重點實驗室,國家色譜研究分析中心,中國科學(xué)院大連化學(xué)物理研究所,遼寧大連116023;2.中國科學(xué)院大學(xué)北京100049)
質(zhì)譜技術(shù)由于其高度的自動化水平和快速分析能力被廣泛用于復(fù)雜生物樣品的定性和定量分析中[1]。復(fù)雜生物樣品用胰蛋白酶酶解后產(chǎn)生C端是精氨酸或賴氨酸的肽段,通過液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜分析[2],經(jīng)數(shù)據(jù)庫檢索,可實現(xiàn)蛋白質(zhì)的定性或定量分析。1967年Kimmel[3]提出胍基化選擇性地發(fā)生在賴氨酸側(cè)鏈氨基上,N端氨基或其他側(cè)鏈基團不發(fā)生此反應(yīng)。近年來,這一現(xiàn)象在蛋白質(zhì)定性和定量領(lǐng)域受到了廣泛的關(guān)注。用胍基化同位素試劑(13C、15N2標(biāo)記的甲氧脲和12C、14N2標(biāo)記的甲氧脲)平行處理HeLa細胞蛋白質(zhì)胰蛋白酶酶解產(chǎn)物,不僅能增加碎片離子信息,而且還可以識別蛋白質(zhì)C 端[4,5],利于蛋白質(zhì)鑒定。另外,利用胍基化保護賴氨酸側(cè)鏈,再用二甲基化同位素試劑標(biāo)記肽段N端,利于識別低豐度蛋白質(zhì),提高鑒定的可信度[6]。
根據(jù)質(zhì)子轉(zhuǎn)移理論[7]和電荷誘導(dǎo)碎裂原則[8],肽段含有氨基酸的堿性越高,其捕獲質(zhì)子的能力和保持離子結(jié)構(gòu)穩(wěn)定的能力越強,就能產(chǎn)生更多的碎裂信息,有利于提高質(zhì)譜鑒定的靈敏度。由于空間位阻的原因,非N端賴氨酸側(cè)鏈的氨基選擇性地發(fā)生胍基化反應(yīng),而N端氨基或其他側(cè)鏈基團則不發(fā)生該反應(yīng)[9]。賴氨酸發(fā)生反應(yīng)后轉(zhuǎn)化為高精氨酸,使其堿性增強,進而可提高含有賴氨酸的肽段的序列覆蓋率和鑒定可信度。本文對比了以下3種HeLa細胞蛋白質(zhì)胰蛋白酶酶解產(chǎn)物中的肽段胍基化前后的質(zhì)譜響應(yīng)情況:(1)僅在C端有賴氨酸的肽段;(2)中間位置含有賴氨酸的肽段;(3)不含有賴氨酸的肽段。發(fā)現(xiàn)鑒定到的第1類肽段占總肽段的比例由51.7%上升為57.3%,并且其二級質(zhì)譜圖中y離子的比重有所上升;而第3類肽段沒有明顯的變化。說明胍基化能改變質(zhì)譜的選擇性,并提高了第1類肽段的質(zhì)譜鑒定靈敏度。這些結(jié)果對于深入了解胍基化對蛋白質(zhì)分析的影響以及實現(xiàn)其廣泛應(yīng)用具有重要的意義。
子宮頸癌細胞(HeLa)來源于中國醫(yī)學(xué)科學(xué)院血液病研究所;RPMI(Roswell Park Memorial Institute)1640培養(yǎng)基和青霉素/鏈霉素購自美國Gibco Invitrogen公司;新生牛血清購自德國 Biochrom AG公司;氫氧化鈉、鹽酸、丙酮、胰蛋白酶、碳酸氫銨(NH4HCO3)、二硫蘇糖醇(dithiothreitol,DTT)、碘代乙酰胺(iodoacetamide,IAA)、乙二胺四乙酸(EDTA)、蛋白酶抑制劑(protease inhibitor cocktail)和甲氧脲(O-methylisourea)購自美國Sigma公司;苯甲基磺酰氟(phenylmethanesulfonylfluoride,PMSF)購自美國Ameresco公司;聚乙二醇單辛基苯基醚(Triton-X 100)購自美國Bio Basic公司;C18AQ反相色譜填料(5 μm,12 nm)購自日本DAISO Chemical公司,75 μm 和 150 μm 內(nèi)徑毛細管購自美國Polymicro公司;乙腈為色譜純,購自美國Merck公司。其余試劑均為國產(chǎn)分析純。實驗用水為Milli-Q超純水。
Surveyor HPLC液相色譜系統(tǒng)(配有脫氣機和四元液相泵)及LTQ Velos雙壓線性離子阱質(zhì)譜系統(tǒng)(配有納升電噴霧離子源和六通閥)購自美國Thermo公司。
HeLa細胞用RPMI 1640培養(yǎng)基(含10%(v/v)新生牛血清,青霉素和鏈霉素的終濃度分別為1 unit/mL和1 μg/mL)在37℃和5%CO2條件下培養(yǎng)。待細胞生長至對數(shù)生長期后用胰蛋白酶消化,于1 000 g離心力下離心3 min,收集細胞。用4℃預(yù)冷的磷酸鹽緩沖液(PBS)清洗3次后加入細胞裂解液(8 mol/L 尿素、1%(v/v)Triton-X 100、65 mmol/L DTT、1 mmol/L EDTA、1 mmol/L PMSF、2%(v/v)cocktail、40 mmol/L pH 7.4 的 Tris-HCl)[10],用超聲波細胞碎裂儀碎裂細胞。于4℃25 000 g離心力下離心60 min,棄去上清液,用4℃丙酮洗滌2次,在通風(fēng)櫥中干燥后存于-80℃?zhèn)溆谩?/p>
將提取的蛋白質(zhì)復(fù)溶于1 mL含8 mol/L尿素和0.1 mol/L NH4HCO3的變性溶液中;再加入DTT,在56℃水浴環(huán)境中還原1 h;加入IAA,在避光條件下對打開的二硫鍵處理 40 min;用 0.1 mol/L NH4HCO3將溶液稀釋到1 mol/L,加入適量胰蛋白酶,在37℃的水浴環(huán)境中過夜。
采用實驗室自制的C18固相萃取柱對得到的酶解產(chǎn)物除鹽純化,真空干燥后存于-20℃待用。
將O-甲氧脲試劑用3~4 mol/L的NaOH溶液配制成濃度為0.8 mol/L的溶液,調(diào)節(jié) pH值至11.0。取干燥的蛋白質(zhì)酶解產(chǎn)物500 μg,加入制備好的 O-甲氧脲溶液 1 000 μL,用 0.1 mol/L pH 11.0 的 NaHCO3調(diào)節(jié) pH 值至10.0 ~11.0。在65℃的水浴環(huán)境下反應(yīng)10 min后除鹽,干燥待用。
將長15 cm、內(nèi)徑75 μm的毛細管柱在高溫下拉成內(nèi)徑約為3 μm的尖頭,用氣壓法將C18AQ填料壓入柱中制成C18毛細管柱,用于上樣。用HPLC系統(tǒng)分離處理過的HeLa細胞蛋白質(zhì)酶解產(chǎn)物溶液。樣品以5 μL/min的流速進樣2 min到富集柱上。以250 nL/min的流速對富集的肽段進行洗脫。流動相A是0.1%(v/v)的甲酸水溶液,流動相B是0.1%(v/v)甲酸乙腈溶液。洗脫梯度為:0~2 min,0%B~3%B;2~92 min,3%B~35%B;92~95 min,35%B~80%B;80%B保持10 min;105~110 min,80%B~100%A;100%A保持10 min。
采用LTQ Velos質(zhì)譜儀的正離子模式進行肽段檢測,噴霧電壓為1.8 kV。采用數(shù)據(jù)依賴模式進行采集,包含一次MS全掃描(m/z 425~2 000),分辨率為60 000,對其中豐度前10的峰進行二級MS/MS掃描分析。
實驗所得的MS2數(shù)據(jù)用Maxquant(version 1.4.1.2)軟件轉(zhuǎn)化成“* .mgf”文件,再通過 Mascot(version 2.3.0)在 人 源 蛋 白 質(zhì) 數(shù) 據(jù) 庫 (IPI human v.3.52.fasta,包含 55 303 個條目)進行檢索。選擇胰蛋白酶酶切,允許最多兩個漏切位點,固定修飾設(shè)定為半胱氨酸碘代酰胺烷基化(57 Da),可變修飾為甲硫氨酸氧化(16 Da)及賴氨酸側(cè)鏈和肽鏈N端胍基化(47 Da),母離子的質(zhì)量容忍偏差為10 ppm,碎片離子為0.05 Da。導(dǎo)出肽段時通過設(shè)置score>25、P<0.01控制假陽性率(FDR)<1%。
圖1 胍基化反應(yīng)原理圖Fig.1 Schematic diagram of the guanidination
如圖1所示,經(jīng)胍基化反應(yīng)后,多肽側(cè)鏈上的賴氨酸轉(zhuǎn)化為高精氨酸。取按實驗部分所述方法處理得到的胍基化肽段25 μg,復(fù)溶于0.1%(v/v)甲酸水溶液中,利LC-MS/MS進行分析,通過檢索數(shù)據(jù)庫鑒定肽段。為了考察標(biāo)記效率,需要將標(biāo)記的和未標(biāo)記的肽段分別鑒定出來,在檢索時將賴氨酸側(cè)鏈和肽鏈N端胍基化(47 Da)設(shè)定為可變修飾。得到的結(jié)果見表1,其中用于統(tǒng)計標(biāo)記效率的賴氨酸包括位于C端的賴氨酸(如IGAEVYHNLK)和由于漏切產(chǎn)生的位于肽段中間的賴氨酸(如LKEIVTNFLAGFEA)。測得胍基化效率為96.8%,比文獻報道的平均標(biāo)記效率(95%)高[11],說明該反應(yīng)比較完全。肽鏈N端被標(biāo)記比例只占6.8%,說明胍基化具有很好的選擇性。由于標(biāo)記效率較高、選擇性好,在進行數(shù)據(jù)庫檢索時,我們將賴氨酸側(cè)鏈胍基化(47 Da)設(shè)為固定修飾。
表1 HeLa細胞蛋白質(zhì)酶解肽段胍基化反應(yīng)的標(biāo)記效率和選擇性Table 1 Labeling efficiency and selectivity of the guanidination of peptides in HeLa cell digest
為了考察胍基化對肽段質(zhì)譜鑒定的影響,將提取的HeLa細胞蛋白質(zhì)用胰蛋白酶酶解后平行分為兩份,其中實驗組進行胍基化處理,對照組不做處理。兩份樣品分別用LC-MS/MS分析,通過數(shù)據(jù)庫檢索鑒定肽段。由于胍基化僅發(fā)生在賴氨酸的側(cè)鏈上,我們將所鑒定的肽段分成3類:(1)僅在C端有賴氨酸的肽段,如IGAEVYHNLK;(2)由于漏切產(chǎn)生的中間位置含有賴氨酸的肽段,如LKEIVTNFLAGFEA;(3)不含賴氨酸的肽段,如YNQLLR。如表2所示,實驗組與對照組相比,胍基化后鑒定到的第1類肽段占總肽段的比例由51.7%增加到57.3%,說明胍基化能在一定程度上提高這一類肽段的鑒定靈敏度。
進一步比較實驗組與對照組所鑒定到的以上3類肽段的互補性。胍基化前后分別鑒定到肽段3 633條和3 490條,有1 884(35.9%)條肽段在兩組實驗中均被鑒定到,1 749(33.4%)條肽段僅在對照組被鑒定到,1 606(30.7%)條肽段僅在實驗組被鑒定到(見圖2a)。兩組實驗分別鑒定到僅在C端有賴氨酸的肽段為1 877條和1 998條,有 983(34.0%)條肽段在兩組實驗中均被鑒定到,894(30.9%)條肽段僅在對照組被鑒定到,1 015(35.1%)條肽段僅在實驗組被鑒定到(見圖2b)。兩組實驗分別鑒定到中間位置含賴氨酸的肽段為410條和310條,有117(19.4%)條肽段在兩組實驗中均被鑒定到,293(48.6%)條肽段僅在對照組被鑒定到,193(32.0%)條肽段僅在實驗組被鑒定到(見圖2c)。兩組實驗分別鑒定到不含賴氨酸的肽段為1 345條和1 183條,有728(40.4%)條肽段在兩組實驗中均被鑒定到,617(34.3%)條肽段僅在對照組被鑒定到,455(25.3%)條肽段僅在實驗組被鑒定到(見圖2d)。通過對比可以看出,包含賴氨酸的肽段(第1和2類)比不包含賴氨酸的肽段(第3類肽段)中共同鑒定到的肽段比例少。這可能是由于胍基化將賴氨酸轉(zhuǎn)化為高精氨酸后,使肽段的性質(zhì)發(fā)生了變化,從而改變了其在二級質(zhì)譜中的碎裂行為,因此在實驗組鑒定到很多新的肽段(1 015條,占35.1%)。而在對照組中,由于胍基化只選擇性地發(fā)生在賴氨酸的側(cè)鏈上,因此對于不包含賴氨酸的肽段,其質(zhì)譜鑒定結(jié)果前后差異較小,在對照組和實驗組中共同鑒定到的肽段數(shù)目較多(728條,占40.4%)??梢?,胍基化改變了帶賴氨酸殘基的肽段性質(zhì),由此可以提高鑒定的互補性。
表2 HeLa細胞蛋白質(zhì)酶解肽段胍基化前后肽段鑒定數(shù)量的比較Table 2 Comparison of peptides identified in HeLa cell digest before and after the guanidination
圖2 HeLa細胞蛋白質(zhì)酶解肽段在胍基化前后質(zhì)譜鑒定結(jié)果中(a)肽段的互補性、(b)C端有賴氨酸的肽段的互補性、(c)中間含賴氨酸的肽段的互補性及(d)不含賴氨酸的肽段的互補性Fig.2 Overlap of(a)identified peptides,(b)peptides with lysine at C-term,(c)peptides with lysine in the middle and(d)peptides without lysine in HeLa cell digest before and after the guanidination
為了進一步探究上述胍基化影響肽段質(zhì)譜響應(yīng)的原因,對對照組和實驗組二級質(zhì)譜圖的離子碎裂情況進行了統(tǒng)計學(xué)分析。質(zhì)譜檢測時,質(zhì)子化的肽段沿著肽鏈骨架發(fā)生斷裂,因發(fā)生斷裂的位置不同而產(chǎn)生6種類型的離子:N端產(chǎn)生a、b、c離子,C端產(chǎn)生相應(yīng)的 x、y、z離子[12]。在本實驗條件下,產(chǎn)生的主要為b、y離子。運用本實驗室開發(fā)的程序,我們可以統(tǒng)計出每條肽段二級質(zhì)譜圖鑒定到的b、y離子的數(shù)目。如肽段VNQIGSVTESLQACK,平均鑒定到的b、y離子數(shù)目分別是13和15。按照b/(y+b)計算其b離子所占的比例為46.4%,按照y/(y+b)計算y離子所占的比例為53.6%。對所有鑒定到的肽段的b、y離子比例進行概率統(tǒng)計,結(jié)果見圖3。
C端為賴氨酸的肽段在胍基化后,y離子比例大于40%的肽段在所有肽段中所占的比重都相應(yīng)提高,如圖3a所示,其總比重由原來的38.8%上升至50.0%。而b離子占主體的肽段比原來均有所減少。說明胍基化產(chǎn)生了更多的y離子信息。這可能是由于賴氨酸的胍基化發(fā)生在肽段C端,其堿性更強且容易捕獲離子化質(zhì)子,在正離子檢測模式下,這類肽段骨架斷裂主要發(fā)生在C端,產(chǎn)生了更多的y離子。由于這部分新增的離子碎裂信息,提高了這類肽段的質(zhì)譜鑒定靈敏度,和對照組相比,鑒定結(jié)果中出現(xiàn)了許多新的肽段信息。
圖3 (a)C端為賴氨酸的肽段和(b)不含賴氨酸的肽段胍基化前后y離子的比例分布圖Fig.3 R atio distributions of y ions of(a)peptides with lysine at C-term and(b)peptides without lysine before and after the guanidination
我們進一步對不含有賴氨酸的肽段進行分析,其y離子比例大于40%的肽段在所有肽段中所占的比例在胍基化前后分別為29.5%和31.1%,沒有明顯變化,如圖3b所示,說明胍基化對這類肽段的質(zhì)譜檢測基本沒有影響。這可能是由于胍基化只選擇性地發(fā)生在賴氨酸的側(cè)鏈,因此不含賴氨酸的肽段的離子碎裂過程不受影響。
本文探討了胍基化對復(fù)雜生物樣品蛋白質(zhì)組分析的影響,發(fā)現(xiàn)胍基化反應(yīng)可以選擇性地在賴氨酸側(cè)鏈上發(fā)生,使C端為賴氨酸的肽段在總肽段中所占的比例從51.7%上升到57.3%,在一定程度上提高了質(zhì)譜鑒定的靈敏度和互補性。對鑒定到肽段的b、y離子比例進行統(tǒng)計學(xué)分析,發(fā)現(xiàn)胍基化后產(chǎn)生了更多的y離子碎裂信息,這可能是由于胍基化后賴氨酸堿性提高造成的。
[1] Zhang Y,Yang P Y,Lu H J.Chinese Journal of Chromatography(張瑩,楊芃原,陸豪杰.色譜),2013,31(6):503
[2] Zhou Y,Shan Y C,Zhang L H,et al.Chinese Journal of Chromatography(周愿,單亦初,張麗華,等.色譜),2013,31(6):496
[3] Kimmel J R.Methods Enzymol,1967,11:584
[4] Keough T,Lacey M P,Youngquist R S.Rapid Commun Mass Spectrom,2000,14(24):2348
[5] Brancia F L,Montgomery H,Tanaka K,et al.Anal Chem,2004,76(10):2748
[6] Ye M L.Chinese Journal of Chromatography(葉明亮.色譜),2013,31(1):1
[7] Dongré A R,Jones J L,Somogyi á,et al.Chem Soc,1996,118(8):8365
[8] Hogan J M,McLuckey S A.J Mass Spectrom,2003,38(3):245
[9] Marcotte E M.Nat Biotech,2007,25(7):755
[10] Zhang M Y,Wang C L,Bian Y Y,et al.Chinese Journal of Chromatography(張曼玉,王春麗,邊陽陽,等.色譜),2011,29(8):706
[11] Wang X Y,Zhang Y J,Wang X,et al.Journal of Chinese Mass Spectrometry Society(王雪穎,張養(yǎng)軍,王昕,等.質(zhì)譜學(xué)報),2011,32(5):257
[12] Hennrich M L,Boersema P J,van den Toorn H,et al.Anal Chem,2009,81(18):7814