羅偉強(qiáng), 肖小華, 杜 卓, 李攻科
(1.中山大學(xué)化學(xué)與化學(xué)工程學(xué)院,廣東廣州510275;2.廣西民族大學(xué)化學(xué)化工學(xué)院,廣西南寧530006)
氯吡脲(forchlorfenuron,CPPU)又名調(diào)吡脲,化學(xué)名稱為1-(2-氯-4-吡啶基)-3-苯基脲,是一種廣泛應(yīng)用于農(nóng)業(yè)生產(chǎn)的新型高效植物生長調(diào)節(jié)劑。由于長期接觸CPPU會(huì)引起體內(nèi)蛋白質(zhì)代謝的紊亂、肺氣腫和體形消瘦,歐盟、日本、美國等已對(duì)其殘留量進(jìn)行嚴(yán)格限制,不同作物中CPPU最大殘留限量(MRL)為 10 ~100 μg/kg[1,2]。我國規(guī)定西瓜和黃瓜中CPPU的MRL為0.1 mg/kg,而獼猴桃和葡萄中為0.05 mg/kg。目前,國內(nèi)外對(duì)CPPU殘留分析的研究主要包括溶劑萃?。?]、固相萃取[4-7]等有效的樣品前處理方法,以及靈敏的氣(液)相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用[8]、液相色譜[9]、放射免疫方法[10]等分析方法。由于蔬果中CPPU殘留含量通常很低,樣品基質(zhì)和待測組分具有不確定性等因素的影響,其分析檢測要求具有精細(xì)的操作手段、較高的靈敏度和較強(qiáng)的特異性?,F(xiàn)有的離線樣品處理與色譜分析等方法存在樣品易受污染、損失以及分析靈敏度不高等缺點(diǎn),難以滿足復(fù)雜基體中痕量CPPU殘留的分析要求。
有機(jī)聚合物整體柱具有單體多元化且易得、易制備、易被修飾、通透性和耐溶劑性能好等優(yōu)點(diǎn),在整體柱的制備及應(yīng)用中備受青睞,已成功地應(yīng)用在食品、環(huán)境、催化、生物等眾多領(lǐng)域中[11,12];另外,整體柱也可作為色譜分離柱使用,實(shí)現(xiàn)復(fù)雜基體中痕量分析物的快速檢測和快速分離[13]。不銹鋼基質(zhì)的硬度高、尺寸均一,可以避免玻璃毛細(xì)管整體柱易折斷的現(xiàn)象,適合作為整體柱管材[14]。目前不銹鋼管整體柱前處理技術(shù)在蔬果樣品CPPU在線分析中的應(yīng)用還未見報(bào)道。
本文制備了不銹鋼管基材的固相萃取整體柱,結(jié)合HPLC/UV建立了整體柱固相萃取-HPLC在線聯(lián)用方法??疾炝溯腿∪軇┑膒H值及其流速、溶劑解吸時(shí)間及其流速等因素對(duì)CPPU萃取率的影響,并用于水果中CPPU的在線分析檢測。
1.1.1 儀器
LC-10Avp高效液相色譜儀(Shimadzu,日本),Cary100紫外光譜儀(Varian,美國),紅外光譜儀Thermo Scientific Nicolet 330,Hitachi 4300冷場電子掃描顯微鏡(SEM)(Hitachi,日本),Diamonsil(TM)鉆石 C18色譜柱(250 mm ×4.6 mm,5 μm,Dikma),離心機(jī)(湖南湘儀離心機(jī)儀器有限公司),超聲波清洗儀(昆山市超聲儀器有限公司),冰箱(-20℃,青島海爾公司),分析天平(0.1 mg,梅特勒-托利多公司),渦旋機(jī)(上海精科儀器有限公司)。
1.1.2 材料
黑葡萄、獼猴桃和西瓜等樣品購于中山大學(xué)農(nóng)貿(mào)市場。樣品新鮮,表面無蟲害,冷藏保鮮。對(duì)易腐壞的樣品需冷凍保存,測定時(shí)避免反復(fù)解凍。
1.1.3 試劑
甲基丙烯酸(MAA)、偶氮二異丁腈(AIBN)、聚乙二醇-6000(PEG-6000)均購自天津大茂化學(xué)試劑廠;乙二醇二甲基丙烯酸酯(EGDMA)購自廣州千湖貿(mào)易有限公司。甲醇、乙腈、乙酸均為色譜純;二氯甲烷為分析純。氯吡脲標(biāo)準(zhǔn)品(純度98.0%)購于北京百靈威公司。水為純凈水(深圳怡寶食品飲料有限公司)。
CPPU標(biāo)準(zhǔn)溶液(200.0 mg/L):稱取20.0 mg氯吡脲標(biāo)準(zhǔn)品,用甲醇定容到100 mL容量瓶中,置于-20℃冰箱中保存。
1.2.1 不銹鋼管的預(yù)處理
內(nèi)徑1.2 mm的不銹鋼管先用1 mol/L NaOH溶液浸泡1 h,再用1 mol/L的HCl溶液浸泡1 h,然后用超純水清洗并于120℃干燥1 h,待用。
1.2.2 甲基丙烯酸-二甲基丙烯酸乙二醇酯(MAA-co-EGDMA)整體柱(50 mm ×1.2 mm)的制備
參照文獻(xiàn)[15]方法,將功能單體 MAA 47 μL、交聯(lián)劑 EGDMA 400 μL、PEG-6000 160 mg、致孔劑甲醇1 100 μL和引發(fā)劑AIBN 4.5 mg混合均勻并超聲10 min得到預(yù)聚液;將預(yù)聚液注入已處理的不銹鋼管中,用硅橡膠封堵兩端并在60℃下反應(yīng)24 h。待反應(yīng)完成后,將整體柱中的致孔劑及未反應(yīng)的試劑用甲醇沖洗除去。將整體柱截成50 mm左右長度保存待用。
1.2.3 MAA-co-EGDMA 整體柱的表征
采用冷場電子掃描顯微鏡觀察不銹鋼管整體柱截面結(jié)構(gòu)及形貌特征;通過萃取量計(jì)算表征其萃取性能,通過流速與壓力關(guān)系表征其通透性。其中,萃取量N的計(jì)算公式為:
式(1)中,N為目標(biāo)物的萃取量,A為目標(biāo)物在整體柱-HPLC在線分析時(shí)的色譜峰面積,a1及b1分別為氯吡脲采用直接進(jìn)樣分析時(shí)進(jìn)樣量(ng)與峰面積線性方程的斜率及截距。
準(zhǔn)確稱取切碎的水果樣品2.0 g置于50 mL具塞離心管中,加入10 mL乙腈渦旋振蕩萃取4 min,再超聲波輔助萃取10 min;重復(fù)萃取1次,合并2次萃取液于離心管中,以4 000 r/min離心10 min。將上層清液置于125 mL分液漏斗中,加入10 mL水和4.8 mL二氯甲烷,強(qiáng)烈振蕩,收集上層有機(jī)相并濃縮至干,殘留物用20.00 mL甲醇-水溶液(1∶99,v/v)復(fù)溶,過0.45 μm濾膜,制得樣品溶液。將樣品溶液引入整體柱后,以甲醇-水(1∶99,v/v)為溶劑,以0.8 mL/min速率進(jìn)行萃取;然后用0.4 mL乙腈-0.2%乙酸水溶液(50∶50,v/v)為溶劑解吸,解吸液在線轉(zhuǎn)入HPLC中進(jìn)行分析。HPLC條件:色譜柱為 Diamonsil C18(250 mm×4.6 mm,5 μm)。流動(dòng)相為乙腈-0.2%乙酸水溶液(50∶50,v/v),流速為1.0 mL/min,檢測波長為261 nm。
水果中CPPU的回收率R按以下公式計(jì)算:
式(2)及(3)中,N和A分別為整體柱固相萃取-HPLC分析時(shí)CPPU的萃取量(ng)和色譜峰面積,a2及b2為整體柱固相萃取-HPLC分析方法線性方程的斜率及截距,CS及VS為實(shí)際樣品中CPPU的加標(biāo)濃度(μg/L)及體積(mL)。
2.1.1 固相萃取整體柱的形態(tài)表征
參照文獻(xiàn)[15]方法制備得到的 MAA-co-EGDMA整體柱通過SEM表征其形貌特征,如圖1所示。其中圖1a為放大60倍時(shí)整體柱的截面圖,圖1b為放大2 000倍時(shí)整體柱的內(nèi)部形貌圖。從圖1可見固相萃取整體柱具有比較疏松的結(jié)構(gòu),結(jié)構(gòu)較均勻,既有小顆粒與“簇”之間形成的中孔,也有小顆粒之間形成的微孔,保證了整體柱有良好的通透性。
圖1 不銹鋼管固相萃取整體柱的掃描電鏡圖Fig.1 SEM images of stainless steel solid-phase extraction monolithic column
此外,聚合物顆粒的紅外光譜結(jié)果顯示,在3 437 cm-1出現(xiàn)了單體甲基丙烯酸中的-OH特征伸縮振動(dòng)峰,在2 951 cm-1處出現(xiàn)了-C-H的伸縮振動(dòng)峰,在1 730 cm-1處出現(xiàn)了羰基的伸縮振動(dòng)峰(這是甲基丙烯酸中的羧基以及二甲基丙烯酸乙二醇酯中酯的羰基峰),在1 630 cm-1處出現(xiàn)雙鍵的伸縮振動(dòng)峰。這些紅外譜圖中的特征峰與制備過程中添加試劑的紅外譜圖相吻合。
2.1.2 固相萃取整體柱的通透性
以水為流動(dòng)相,采用流速實(shí)驗(yàn)測試制備的整體柱的通透性,得到其流速-壓力曲線。結(jié)果表明,整體柱的壓力(Y)與流動(dòng)相流速(X)之間具有良好的線性關(guān)系,其線性方程為Y=0.342 1X+0.362 9,相關(guān)系數(shù) R2=0.997 5。在流動(dòng)相流速超過 2.5 mL/min時(shí),整體柱的柱壓不超過1.3 MPa。當(dāng)柱壓為0.7 MPa時(shí),該整體柱的流速可以達(dá)到1.0 mL/min,說明該不銹鋼管整體柱具有很好的通透性。
采用2個(gè)六通閥和整體柱構(gòu)建了整體柱固相萃取-HPLC在線聯(lián)用系統(tǒng),其中六通閥Valve 1主要實(shí)現(xiàn)樣品引入功能,Valve 2主要實(shí)現(xiàn)在線萃取、解吸和分析進(jìn)樣功能,通過兩閥切換實(shí)現(xiàn)在線萃取解吸和分析檢測(見圖2)。在實(shí)際樣品分析中,先將樣品引入Valve 1的定量環(huán)中,然后通過泵1推動(dòng)萃取溶劑將樣品引入Valve 2中的整體柱進(jìn)行萃取和凈化;然后通過泵2將流動(dòng)相引入整體柱進(jìn)行解吸進(jìn)樣,完成樣品溶液在線萃取、解吸和分析過程。
圖2 整體柱固相萃取-HPLC在線聯(lián)用裝置示意圖Fig.2 Schematic representation of on-line device based on monolithic column solid-phase extraction coupled with HPLC
固-液兩相之間的萃取和解吸是待測目標(biāo)物在固-液相間分配、傳質(zhì)、平衡循環(huán)的一系列過程,因此萃取和解吸條件對(duì)在線萃取過程影響很大。本文分別考察了萃取溶劑的pH值及其流速、解吸溶劑的體積及其流速等主要因素對(duì)CPPU萃取量的影響。
2.3.1 萃取溶劑的pH值及其流速
根據(jù)氯吡脲的極性及文獻(xiàn)[4]的結(jié)果,本文以9 mL甲醇-水(1∶99,v/v)作為整體柱的萃取溶劑,考察了溶劑的pH值及其流速等因素對(duì)氯吡脲萃取效率的影響??疾煲圆煌琾H的甲醇-水(1∶99,v/v)為萃取溶劑時(shí)CPPU在固相萃取整體柱上的萃取量,結(jié)果如圖3a所示。隨著萃取溶劑pH的增加,CPPU的萃取量沒有發(fā)生明顯的變化,表明溶液pH值對(duì)CPPU萃取量的影響較小??紤]到萃取溶劑的經(jīng)濟(jì)成本以及環(huán)保等因素,最后選用了pH 6.0~7.0(即不調(diào)節(jié)pH,直接用)的甲醇-水(1∶99,v/v)作為萃取溶劑。
萃取溶劑的流速與系統(tǒng)承受的壓力有關(guān),并直接影響CPPU的萃取效率。考察了不同萃取溶劑流速(0.4、0.5、0.6、0.7、0.8 mL/min)對(duì) CPPU 萃取量的影響,結(jié)果見圖3b所示。在萃取溶劑流速為0.5 mL/min時(shí)CPPU的萃取量最大;流速為0.7 mL/min時(shí)CPPU的萃取量較流速為0.5 mL/min時(shí)減少了4.6%;相比流速為0.5 mL/min,流速為0.8 mL/min時(shí)萃取量只減少8.0%。這可能是由于不銹鋼管整體柱的通透性較好,樣品溶液以滲透的形式接觸到整體柱的吸附位點(diǎn),從而使溶劑流速對(duì)CPPU的吸附量影響較小。為了加快分析速度,減少整體柱長時(shí)間承受較大壓力,選取0.8 mL/min為萃取溶劑流速。
2.3.2 解吸溶劑的體積及其流速
解吸溶劑的體積及其流速對(duì)整體柱的萃取性能及其與HPLC在線分析的溶劑和時(shí)間匹配性關(guān)系密切。解吸溶劑的體積過大、流速太高或太低都容易導(dǎo)致HPLC的譜峰展寬。本文考察了以流動(dòng)相(乙腈-0.2%乙酸水溶液(50∶50,v/v))作為解吸溶劑,其體積和流速對(duì)CPPU解吸效果的影響,結(jié)果見圖3c、3d。隨著解吸溶劑的體積從0.4 mL增加到1.2 mL,CPPU 的萃取量略有增加,但0.4 mL的解吸溶劑基本可使整體柱內(nèi)吸附的CPPU解吸完全。而隨著解吸流速由0.2 mL/min增大到0.3 mL/min,CPPU的萃取量明顯增大;再繼續(xù)增大流速觀察,發(fā)現(xiàn)解吸溶劑的流速影響較小。為了縮短分析時(shí)間和減小HPLC中的峰展寬現(xiàn)象,選擇0.4 mL/min作為最優(yōu)的解吸溶劑流速。
圖3 整體柱固相萃取條件的優(yōu)化Fig.3 Optimization of extraction conditionsa.pH of extraction solution;b.flow rate of extraction solvent;c.volume of desorption solvent;d.flow rate of desorption solvent.
綜上所述,CPPU萃取和解吸的優(yōu)化條件為:萃取溶劑為9.0 mL甲醇-水(1∶99,v/v)溶液;萃取流速為0.8 mL/min;解吸溶劑為乙腈-0.2%乙酸水溶液(50∶50,v/v);體積為 0.4 mL,流速為 0.4 mL/min。
2.3.3 固相萃取整體柱吸附容量的考察
吸附容量是評(píng)價(jià)整體柱性能的重要指標(biāo)。在最優(yōu)的整體柱萃取和解吸條件下,用200 μg/L的氯吡脲標(biāo)準(zhǔn)溶液,通過改變標(biāo)準(zhǔn)溶液體積考察固相萃取整體柱的吸附容量,結(jié)果見圖4。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,當(dāng)萃取體積達(dá)21 mL后,整體柱的吸附容量基本保持不變,此時(shí)整體柱的吸附容量為1 163 ng。
2.4.1 分析方法的建立
配制不同濃度的CPPU標(biāo)準(zhǔn)溶液,在優(yōu)化的萃取、凈化和分析條件下,采用整體柱固相萃取-HPLC在線聯(lián)用方法對(duì)其分析定量。在0.01~50.00 μg/L之間,以CPPU的峰面積(Y)對(duì)其質(zhì)量濃度(X,μg/L)進(jìn)行線性回歸,得到的線性方程為Y=5.24×104X+61,相關(guān)系數(shù)r=0.999 9,表明線性關(guān)系良好。以信噪比為3確定方法的檢出限為25 ng/L。采用1.0 μg/L標(biāo)準(zhǔn)樣品考察方法的精密度(n=5),其RSD為3.9%,滿足痕量分析要求。
實(shí)驗(yàn)中CPPU的富集因子為采用整體柱萃取富集后經(jīng)HPLC分析得到的CPPU濃度和20 μL直接進(jìn)樣的CPPU濃度的比值,結(jié)果表明在優(yōu)化條件下,CPPU的富集倍數(shù)可達(dá)214倍。
圖4 200 μg/L氯吡脲在整體柱上的吸附容量實(shí)驗(yàn)曲線Fig.4 Adsorption capacity of 200 μg/L CPPU at flow rate of 0.8 mL/min
2.4.2 實(shí)際樣品分析
采用建立的方法測定了市售黑葡萄、獼猴桃和西瓜等3種水果樣品,未檢出CPPU(見圖5)。分別對(duì)這些水果樣品進(jìn)行加標(biāo)回收率測定,結(jié)果見表1。可見CPPU的回收率為87.0%~120.7%,RSD為0.6%~9.2%,表明基體對(duì)測定結(jié)果基本不產(chǎn)生干擾,方法的準(zhǔn)確度較高,適合水果等復(fù)雜基體中痕量CPPU殘留分析檢測。
表1 水果樣品中氯吡脲的加標(biāo)回收率(n=3)Table 1 R ecoveries of CPPU spiked in differentfruits(n=3)
2.4.3 方法對(duì)比
表2給出了文獻(xiàn)報(bào)道的采用固相萃取-HPLC測定水果中CPPU的結(jié)果對(duì)比。結(jié)果表明,與現(xiàn)有方法相比,本文新建方法的靈敏度較高,更適合復(fù)雜體系中痕量氯吡脲殘留的分析檢測。
圖5 整體柱固相萃取-HPLC在線聯(lián)用分析實(shí)際樣品的色譜圖Fig.5 Chromatograms of real fruit samples by monolith column SPE-HPLC in online modea.original sample;b.spiked sample with 0.6 μg/L CPPU.
表2 本文方法與文獻(xiàn)報(bào)道的固相萃取-HPLC方法測定水果中氯吡脲的對(duì)比Table 2 Comparison of the proposed method with other methods from the references for the determination of CPPU in fruits
本實(shí)驗(yàn)采用原位聚合法研制了高通透性MAA-co-EGDMA不銹鋼管整體柱,整體柱的吸附容量達(dá)1 163 ng,富集倍數(shù)為214倍。建立了整體柱固相萃取在線富集-HPLC聯(lián)用方法并在線分析了黑葡萄、獼猴桃和西瓜等水果中CPPU的殘留量。方法的線性范圍為0.01~50.00 μg/L,檢出限為25 ng/L,RSD 3.9%。黑葡萄、獼猴桃和西瓜中氯吡脲的加標(biāo)回收率為87.0%~120.7%,RSD為0.6%~9.2%,滿足水果樣品中痕量氯吡脲分析的要求。
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