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        qRT—PCR分析萊茵衣藻氮、硫同化相關(guān)基因的表達(dá)

        2014-04-29 03:35:52李平費小雯李興涵鄧曉東
        熱帶作物學(xué)報 2014年12期
        關(guān)鍵詞:缺氮

        李平 費小雯 李興涵 鄧曉東

        摘 要 實驗發(fā)現(xiàn),缺氮、缺硫的環(huán)境有利于萊茵衣藻油脂的積累,說明與氮、硫同化相關(guān)的基因也與油脂合成有著密切的關(guān)系。分析了氮、硫同化通路相關(guān)基因,選擇氮同化相關(guān)的6個基因(NAR3、NAR1.1、NII1、NIA1、NIT2、AOX1)以及硫同化相關(guān)的6個基因(SULP1、SIR1、SLT1、ARS1、SULTR1、ATS1)進行qRT-PCR分析。對萊茵衣藻CC124以及CC425藻株分別進行缺氮、缺硫處理,Trizol法連續(xù)提取4 d的RNA作為模板,進行實時熒光定量PCR檢測基因的表達(dá)水平。結(jié)果發(fā)現(xiàn),這12種基因均較對照上調(diào)表達(dá),其中,萊茵衣藻氮、硫運載體基因上調(diào)表達(dá)非常顯著。缺氮條件下NAR3、NAR1.1較正常最高上調(diào)表達(dá)200倍;缺硫條件下SLT1較對照有1 000~2 000倍的mRNA表達(dá)量,SULTR2也最高能增高450倍的表達(dá)量。

        關(guān)鍵詞 萊茵衣藻;缺氮;缺硫;qRT-PCR

        中圖分類號 Q78 文獻(xiàn)標(biāo)識碼 A

        隨著經(jīng)濟的發(fā)展和技術(shù)的進步,各國對能源的需求日益增大,而傳統(tǒng)的化石能源日益枯竭,因此開發(fā)新的可再生能源成為當(dāng)今世界各國關(guān)注的焦點[1]。同時,Zeller等[2]還研究了發(fā)展中國家生物燃料產(chǎn)業(yè)的前景和挑戰(zhàn),及其糧食安全及全球糧食價格升高帶來的威脅。生物柴油作為一種新興的可再生生物能源,清潔環(huán)保,易生物降解,燃燒后排放的氮氧化物和CO2少,且可直接用于現(xiàn)有的柴油發(fā)動機,是良好的化石燃料替代物[3]。其中,微藻是制取生物柴油最有希望和前途的原料,具有分布廣泛、環(huán)境適應(yīng)力強、生長迅速、油脂含量高等特點[4]。因此,對微藻進行深入的研究具有非??捎^的應(yīng)用前景。

        微藻是一類在陸地、海洋分布廣泛,營養(yǎng)豐富、光合利用度高的自養(yǎng)低等水生植物。在適宜條件下,微藻通常處于營養(yǎng)生長狀態(tài),細(xì)胞內(nèi)脂質(zhì)含量較低,且多為極性脂(polar lipid),如磷脂(phosphor lipid)。而在脅迫條件下,細(xì)胞內(nèi)很快積累大量中性脂(neutral lipid),如甘油三脂(triacylglycerol, TAG)[5]。其中,氮素是組成氨基酸的必要成分之一,氮素的缺乏直接限制光合膜蛋白以及包括葉綠素在內(nèi)的其他色素分子的合成,最終影響光合放氧能力[6],當(dāng)植物缺硫時降解植物組織中的硫庫,釋放硫元素,表現(xiàn)為總蛋白和葉綠素含量降低[7]。李亞軍等[8]研究發(fā)現(xiàn)氮元素缺乏可誘導(dǎo)萊茵衣藻(Chlamydmonas reinhardtii)在細(xì)胞內(nèi)大量積累三酰甘油。硫營養(yǎng)限制也能使微藻細(xì)胞的含油量大幅提高[9]。本研究分析氮、硫同化通路中的相關(guān)基因,意圖從這些基因中找到具有重要研究價值的基因。

        本實驗室著重研究萊茵衣藻在能源方面的應(yīng)用價值,研究發(fā)現(xiàn),在缺氮、缺硫的條件下有利于油脂的積累,能夠在氮、硫同化中找到與油脂合成密切相關(guān)的基因,本次實驗運用實時熒光定量PCR的方法對相關(guān)基因進行初步的摸索,對以后的研究有一定的指導(dǎo)意義。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        藻株: Chlamydomonas reinhardtii CC124和細(xì)胞壁缺陷型的Chlamydomonas reinhardtii CC425(購于美國杜克大學(xué)衣藻中心)。

        主要試劑及儀器:酶標(biāo)儀(BIO-TEKELx800);實時熒光定量PCR試劑盒SYBR Premix Ex TaqTM(Tli RNaseH Plus)購于TaKaRa公司;實時熒光定量PCR儀(STRATAGENE Mx3005)。

        1.2 方法

        1.2.1 萊茵衣藻的培養(yǎng)及相關(guān)生理生化指標(biāo)的測定

        (1)藻株生長曲線繪制及生物量測定。根據(jù)實驗藻在490 nm波長下有特定的吸收值[10],用酶標(biāo)儀(BIO-TEKELx800)分別測定8瓶不同時長500 mL培養(yǎng)的CC425藻株在490 nm下的吸光值,并對應(yīng)稱取干重,根據(jù)吸光值與干重對應(yīng)的關(guān)系,繪制CC425藻株干重標(biāo)準(zhǔn)曲線,得到本研究萊茵衣藻的生物量標(biāo)準(zhǔn)曲線y=0.599 4x-0.016 3[11]。

        將CC124、CC425藻株分別接種于含有50 mL HSM培養(yǎng)基的100 mL三角瓶中,置于在25 ℃,全光照,光照強度3 000~4 500 lx的培養(yǎng)條件下220 r/min振蕩培養(yǎng)3~4 d至對數(shù)生長期。將藻液進行離心、富集,用少量HSM培養(yǎng)基進行稀釋、打勻,將CC124接入50 mL HSM、HSM-N培養(yǎng)基,CC425接入50 mL HSM和HSM-S的培養(yǎng)基中,HSM和HSM氮、硫元素缺乏培養(yǎng)基參照費小雯等[9]培養(yǎng)基的配制。通過血細(xì)胞計數(shù)法[12]在顯微鏡下數(shù)細(xì)胞,保證接入的藻液終濃度一致,細(xì)胞數(shù)約1×106~1×108個/mL左右,每種處理4~5瓶,于25 ℃,16 h光照(1 000~3 000 lx),8 h黑暗進行震蕩培養(yǎng)。培養(yǎng)期間每24 h取樣1次,使用酶標(biāo)儀測量缺氮、缺硫條件下CC124和CC425藻液在490 nm處的吸光值,且每組實驗設(shè)5個平行,根據(jù)生物量標(biāo)準(zhǔn)曲線得藻株每日的生物量,并繪制藻株的生長曲線。

        (2)藻株增長曲線繪制及其油脂含量。利用尼羅紅染色法測量油脂含量[13]首先繪制三酰甘油濃度標(biāo)準(zhǔn)曲線。在藻株培養(yǎng)的第48小時,取適當(dāng)藻液進行離心、富集,取10 μL藻液加入0.2 μL 0.1 mg/mL尼羅紅染料和1.8 μL DMSO孵育10 min,分別測量在染色前后的吸光值,且每個樣設(shè)置5個平行。根據(jù)三酰甘油濃度標(biāo)準(zhǔn)曲線,計算每日的油脂含量,繪制油脂增長曲線。

        (3)藻株狀態(tài)及油滴觀察。將以上培養(yǎng)的藻株在培養(yǎng)的2~3 d 時,對三角瓶中藻液的外觀狀態(tài)拍照。取10 μL的藻液制片,并加入1 μL的魯格式碘液固定細(xì)胞,使用濃度為0.2 μL 0.1 mg/mL的尼羅紅染色10 min,使用熒光顯微鏡進行白光和熒光對油滴進行觀察和拍照[14]。

        1.2.2 相關(guān)基因引物設(shè)計及Real Time PCR

        (1)藻種RNA的提取及cDNA合成。參照李亞軍等[8]RNA提取方法分別提取CC124和CC425第1、2、3、4天的動態(tài)RNA,并將提取的RNA進行變性和反轉(zhuǎn)錄,用于Real Time PCR的模板。

        (2)引物的設(shè)計及合成。此次Real Time相關(guān)引物用Primer Premier5進行設(shè)計,設(shè)計的引物信息見表1[引物均為委托生工生物工程(上海)股份有限公司合成]。

        (3)SYBR實時定量PCR檢測。以連續(xù)4 d提取出的RNA做模板和以上合成的引物,每組設(shè)3個生物學(xué)重復(fù)。使用SYBR Premix Ex Taq(TakaRa)實時熒光定量試劑盒進行動態(tài)熒光定量PCR檢測,總反應(yīng)體系為16 μL,SYBR Premix Ex TaqⅡ(2×)7.5 μL,ROX Reference Dye(50×)0.3 μL,PCR正向引物1 μL,PCR反向引物1 μL,模板1 μL,雙蒸水5.2 μL,每組設(shè)3個平行,擴增條件為95 ℃反應(yīng)1 min;95 ℃反應(yīng)20 s和58 ℃反應(yīng)20 s,循環(huán)40次。內(nèi)參為:18S rRNA。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 萊茵衣藻CC124和CC425在缺氮、缺硫條件下生理生化指標(biāo)

        2.1.1 藻株在缺氮、缺硫條件下生物量變化 由圖1、2可以看出,缺氮、缺硫的環(huán)境均使藻株的生物量下降,培養(yǎng)3~4 d,兩種逆境條件都使藻株生物量下降2~3倍。差異極顯著(通過SPSS軟件分析,p<0.01差異極顯著),說明缺氮、缺硫環(huán)境對萊茵衣藻的生長抑制作用很明顯。

        2.1.2 藻株在缺氮、缺硫條件下油脂含量變化

        在測量生物量的同時,對藻株每日的油脂含量進行測量,由圖3、4可以看出,缺氮、缺硫的環(huán)境有益于萊茵衣藻CC124、CC425油脂的積累,藻株培養(yǎng)3~4 d,在缺氮的條件下,相對于正常培養(yǎng)的CC124藻株油脂量積累增加了5~10倍,缺硫處理也能導(dǎo)致CC425藻株油脂含量增加5~6倍,差異極顯著(p<0.01)。

        2.1.3 藻株在缺氮、缺硫條件下藻狀態(tài)及油滴顯微拍照 由圖5可以看出,缺氮、缺硫的環(huán)境會導(dǎo)致藻液顏色變黃,其中原因之一也有可能與圖1、2中藻株在缺氮、缺硫環(huán)境下生物量較少有關(guān),并且與對照相比,油滴積累明顯增多。熒光暗場照片中黃色熒光代表以三酰甘油為主的中性脂。

        2.2 實時定量PCR結(jié)果

        2.2.1 與氮同化相關(guān)的基因在正常與缺氮條件下mRNA的表達(dá)水平 由圖6可以看出,在缺氮水平較正常條件相比,NAR3和NAR1.1這2個基因基因表達(dá)量明顯上升,最高能增高200倍左右;同時,NII1基因能較高水平地增高表達(dá)量,最高能到30倍左右;NIA1、NIT2、AOX1基因低水平地提高表達(dá)量,約1~10倍之間,其中NIA1前兩天其mRNA表達(dá)量較正常要低,經(jīng)過3~4 d的培養(yǎng)之后,缺氮條件開始較正常表達(dá)量高。說明實驗的這6個基因在缺氮條件下表達(dá)量均升高,并且NAR3、NAR1.1促進效果更為顯著。

        2.2.2 與硫同化相關(guān)的基因在正常與缺硫條件下mRNA的表達(dá)水平 由圖7可以看出,在缺硫條件下較正常相比,SLT1、ARS1、SULTR2、ATS1這4個基因mRNA表達(dá)量有很明顯的提高,其中SLT1增高了1 000~2 000倍,SULTR2也最高能增高450倍的表達(dá)量,ARS1、ATS1提高10~30倍,SULP1、SIR1的表達(dá)量提高了約2~5倍左右。

        3 討論與結(jié)論

        根據(jù)微藻產(chǎn)油相關(guān)報道,氮、硫同化相關(guān)的基因可能與油脂積累有間接的關(guān)系[31],對TAP或者HSM培養(yǎng)基進行缺氮和缺硫處理,會導(dǎo)致萊茵衣藻中三酰甘油的大量聚集。實驗中的圖1~5也可以看出在缺氮、缺硫的環(huán)境會導(dǎo)致藻液狀態(tài)變黃,較正常相比,缺氮缺硫條件下的藻株油脂的積累明顯增高。由此筆者對氮、硫同化通路里典型的基因進行表達(dá)研究。實驗根據(jù)2-△△CT相對定量法通過計算得到目的基因相對于內(nèi)參基因的表達(dá)量[32],系統(tǒng)地把多個基因一起進行分析,方便快捷地得出實驗結(jié)論。從圖6和圖7中可以直觀地看出缺氮、缺硫能夠促進萊茵衣藻中氮同化或硫同化相關(guān)基因的表達(dá)。在圖6所示的缺氮環(huán)境中,NAR3和NAR1.1較對照mRNA表達(dá)量顯著提高,最高能達(dá)200倍,在圖7所示的缺硫環(huán)境中,SLT1較對照有1 000~2 000倍的mRNA表達(dá)量,SULTR2也最高能增高450倍的表達(dá)量。經(jīng)過分析發(fā)現(xiàn),這4個基因均分別是萊茵衣藻氮和硫的轉(zhuǎn)運載體基因,說明在缺氮,缺硫的條件對相應(yīng)元素轉(zhuǎn)運載體基因的表達(dá)還是有著很大的影響。NAR在高等植物中受NO3-的誘導(dǎo)表達(dá)[33],在N通路中發(fā)揮很重要的作用。在擬南芥缺硫狀態(tài)下研究發(fā)現(xiàn),高親和性運輸載體對硫的應(yīng)答是受轉(zhuǎn)錄水平調(diào)節(jié),尤其是在長時間的缺硫狀態(tài)下,表達(dá)量明顯升高[34]。運載體在植物對礦物質(zhì)元素吸收的過程中作用關(guān)鍵,本研究只是初步對相關(guān)的基因做了定量分析,而上述基因是否真正與油脂代謝有聯(lián)系,還需要通過對相關(guān)基因的缺失或過量表達(dá)進行分析,深入研究這些基因?qū)θR茵衣藻中與油脂積累的影響才能得出結(jié)論。

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        責(zé)任編輯:沈德發(fā)

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