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        番茄SlSnRK2s基因表達在促進葉片衰老中的作用

        2014-04-29 09:40:44楊陽唐寧李正國
        熱帶作物學報 2014年5期
        關鍵詞:乙烯

        楊陽 唐寧 李正國

        摘 要 SnRK2(sucrose non-fermenting 1一related protein kinase2)是脫落酸(ABA)信號轉導途徑中的正調控因子,廣泛參與了植物的生長發(fā)育、病蟲害防御、ABA和非生物脅迫等多種信號的應答反應。從番茄中分離了3個與SnRK2.2、SnRK2.3和SnRK2.6同源的基因,分別命名為SlSnRK2.2、SlSnRK2.3和SlSnRK2.6,同時構建了SlSlSnRK2.2/2.3/2.6 RNAi載體,并通過根癌農桿菌介導的葉盤法轉化番茄,得到轉基因番茄植株。初步表型分析結果發(fā)現(xiàn)轉基因植株呈葉片早衰的現(xiàn)象。通過對乙烯信號相關基因的檢測可知,轉基因植株中除了ERF2表達量低于野生型,其余3個基因(ACO4、ERF1B、ERF1)的表達量均高于野生型,表明SlSnRK2.2、SlSnRK2.3和SlSnRK2.6與葉片衰老有關,可能參與ABA和乙烯信號互作,此結果對揭示植物衰老機理具有重要意義。

        關鍵詞 SnRK2s;ABA;乙烯;葉片衰老;RNAi

        中圖分類號 Q943.2 文獻標識碼 A

        脫落酸(abscisic acid,ABA)是一種重要的植物激素,參與植物的干旱、鹽害、病害、高低溫等脅迫反應,調控種子發(fā)育和休眠,影響果實成熟和氣孔關閉,促進葉片衰老[1]。然而ABA信號通路是一個復雜的系統(tǒng),2009年以前,人類對它的調控機制和途徑尚不是很清楚,直到2個獨立的研究小組發(fā)現(xiàn)了ABA受體,才使得ABA的相關研究取得突破性進展[2-3]。ABA信號轉導途徑主要包括3個核心成分:ABA受體——PYR/PYL/RCAR,負調控因子——2C類蛋白磷酸酶(PP2C)和正調控因子--SNF1相關蛋白激酶2(SnRK2), 它們共同構成一個雙重負調控系統(tǒng)[4]。

        SnRK2(SNF1-related protein kinase 2)屬于Ser/Thr蛋白激酶家族,為植物特有的蛋白。在擬南芥、水稻中,SnRK2s都有10個成員,分別命名為SnRK2.1~SnRK2.10和SAPK1~SAPK10[5-6]。根據(jù)被ABA和NaCl誘導情況的不同,SnRK2s可以分為3個亞類,第三亞類包括SnRK2.2、SnRK2.3和SnRK2.6,能被滲透脅迫和ABA迅速誘導,在ABA信號轉導通路中發(fā)揮了重要的作用[7]。除此之外,研究還發(fā)現(xiàn)SnRK2Ⅲ類基因具有如下功能:擬南芥的3個突變體srk2d/srk2e/srk2i對干燥的敏感性增強,對ABA敏感性降低,種子萌發(fā)率雖然提高,但是在生長過程中有缺陷[8];超表達SnRK2.6 不僅增強了植物的含糖量、抗鹽性,還能使植株長得更茂盛[9-10]。

        然而以往的研究大多數(shù)都集中于SnRK2Ⅲ類基因對ABA的敏感性、種子萌發(fā)、抗逆性方面的影響,而關于其對植物生長發(fā)育的影響及其他信號轉導的研究較少。本研究構建了SlSlSnRK2.2/2.3/2.6 RNAi干擾載體,通過轉基因植株對SlSnRK2.2,SlSnRK2.3和SlSnRK2.6的表達進行分析,探究了SlSnRK2s對植物生長發(fā)育和其它信號通路的影響。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        野生型番茄(Solanum lycopersicum, cv Micro Tom)于溫室內種植,種植條件為:光照16 h,溫度(25±2)℃;黑暗8 h,(20±2)℃,濕度80%左右。大腸桿菌JM109和農桿菌GV3101感受態(tài)細胞由本實驗室保存。

        1.2 方法

        1.2.1 SlSnRK2s基因的序列分析 從NCB1數(shù)據(jù)庫(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/nucleotide/)獲得研究報道的擬南芥SnRK2.2、SnRK2.3和SnRK2.6序列,將其提交到番茄EST數(shù)據(jù)庫(http://solgenomics.net/tools/blast/index.pl)中對比,尋找同源序列,利用DNAMAN分析其開放閱讀框,比較番茄中SlSnRK2s的氨基酸序列與其他物種中該蛋白的同源性;經Conserved Domain Search Service(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/Structure/cdd/wrpsb.cgi)及SMART(http://smart.embl-heidelberg.de/)分析蛋白保守域;利用MEGA4.0軟件中的Neighbor-Joining(N-J)方法構建進化樹。

        1.2.2 構建RNAi 表達載體并轉化番茄 (1)番茄總RNA的提取及cDNA的合成:采用Trizol法提取番茄葉片RNA,稀釋50倍后測其OD260/OD280,經凝膠電泳驗證質量后保存?zhèn)溆?。? μg RNA為模板,參照Revert AidTM First Stand cDNA Synthesis Kit說明書合成第1鏈cDNA,其反轉錄產物保存于-20 ℃。

        (2)擴增SlSnRK2s共同保守片段:分析SlSnRK2.2、SlSnRK2.3和SlSnRK2.6的共同保守序列,在保守序列內設計RNAi引物,以保存的cDNA為模板,擴增正向和反向2段保守序列。PCR反應體系為:PCR Mixture(2×)12.5 μL,正反引物(正向F:5′-TCTAGACTCTAATGCGGGGCGCT

        (3)構建RNAi表達載體:正向引物加的接頭為XbaⅠ和SalⅠ的酶切位點。首先將本實驗保存的pcambia-HP干擾載體的質粒和正向片段用這2種酶進行雙酶切,再用T4 DNA連接酶連接。連接產物經電泳回收后轉化大腸桿菌。將長出來的單菌落進行PCR檢測和酶切鑒定,保存驗證為陽性的轉化子菌液,參照質粒提取試劑盒說明書提取質粒。

        反向引物加的接頭為SmaⅠ和SacⅠ的酶切位點,因此先將反向保守片段和上一步得到的陽性轉化子的質粒用這2種酶進行酶切處理,分別經電泳回收后再連接,然后轉化大腸桿菌,篩選出陽性轉化子并提取質粒,轉化農桿菌GV3101。

        (4)轉基因植株的獲得及檢測:采用農桿菌介導的葉盤法[11]轉化野生型番茄獲得再生植株。經GUS染色初步篩選出轉基因植株后,通過熒光定量PCR檢測轉基因植株抑制干擾程度。定量引物見表1。具體操作按照SYBR Green/ROX Master Mix試劑盒(Fermentas),儀器是Bio-Rad熒光定量PCR儀。以番茄組成型表達基因actin為內參,每個反應設置3次重復,Ct值取平均值,以2-△△Ct法計算相對表達量。反應體系為(25 μL):2 ×SYBR Green/ROX Master Mix 12.5 μL,正反引物(5 μmol/L)各1 μL,模板1 μL。反應程序:95 ℃ 30 s,1個循環(huán);95 ℃ 10 s,55 ℃ 30 s,72 ℃ 20 s, 42個循環(huán)。

        1.2.3 乙烯相關基因定量分析 收取確定為轉基因植株的T0代種子栽種培養(yǎng),并在T1代轉基因植株中檢測乙烯相關基因ACO4、ERF1B、ERF1、ERF2的表達水平,以野生型番茄為對照。

        2 結果與分析

        2.1 SlSnRK2s序列分析

        將SlSnRK2s基因的氨基酸序列與其他物種進行同源性比較,從中可以看出所推測的氨基酸序列含有磷酸化位點、活性環(huán)和SnRK2s保守區(qū)(SnRK2 box)。黑色區(qū)域表示完全相同的氨基酸殘基,灰色區(qū)域表示50%以上相同,橫線區(qū)域表示活性環(huán),是蛋白激酶磷酸化的靶位點,虛線區(qū)域是SnRK2 box,“+”號表示可能的磷酸化氨基酸殘基。

        用MEGA4.0構建系統(tǒng)發(fā)育樹,使用的是最小進化法,可以看出SlSnRK2.6與擬南芥中的AtSnRK2.6同源性最高,達99%;SlSnRK2.2與玉米的ZmSnRK2.3同源性較高;SlSnRK2.3與擬南芥中的AtSnRK2.2和AtSnRK2.3同源性較高。SlSnRK2.2,SlSnRK2.3,SlSnRK2.6屬于SnRK2家族的第3亞類。

        2.2 構建SlSnRK2s RNAi 表達載體

        利用設計的特異性引物擴增SlSnRK2s共同保守序列,得到正向和反向2個片段,大小為385 bp,回收目標片段。將正向片段與載體連接后先用PCR驗證是否插入,再用XbaⅠ和SalⅠ雙酶切驗證插入方向。將得到的陽性重組子再與反向片段連接,通過PCR和SmaⅠ、SacⅠ酶切驗證后,轉化農桿菌最終得到正確的陽性重組子,如圖3-B。

        2.3 轉基因番茄鑒定及分析

        2.4 轉基因植株葉片衰老初步分析

        試驗觀察到T0代轉基因植株有早衰現(xiàn)象,并且在T1代這種現(xiàn)象仍然存在。檢測了ACO4、ERF1B、ERF1和ERF2的相對表達情況,結果見圖6[n=3,0.05>p>0.01(*)或者p<0.01(**)]。在轉基因植株中,ACO4、ERF1B、ERF1的表達量都高于野生型番茄,而ERF2低于野生型。

        3 討論與結論

        引起葉片衰老的成因很多,葉片衰老不僅受到周圍環(huán)境的影響,也受到內部信號的調控,植物激素就是影響因素之一。生長素、細胞分裂素、赤霉素能減緩葉片衰老,而乙烯和脫落酸則加速葉片衰老。

        乙烯可促進衰老,是典型的促衰激素。S-腺苷甲硫銨酸在ACC合成酶和ACC氧化酶的催化下形成乙烯[12]。乙烯響應元件結合蛋白(ERF轉錄因子)處于乙烯信號通路的下游,能識別乙烯合成基因的啟動子,激活相關基因表達,促進乙烯合成[13]。ABA可誘導氣孔關閉,是僅次于乙烯的第二個促衰劑,它對衰老的作用體現(xiàn)在基因轉錄水平上,表現(xiàn)為直接控制mRNA合成,或者影響mRNA的穩(wěn)定性,在翻譯水平上控制基因表達[14]。SlSnRK2.2、SlSnRK2.3和SlSnRK2.6與擬南芥中的SnRK2.2、SnRK2.3和SnRK2.6同源,屬于SnRK2 Ⅲ亞類,參與ABA信號轉導[7],進而可能調控植物衰老。本研究構建了SlSnRK2s RNAi載體,得到的轉基因植株中有葉片早衰現(xiàn)象,同時,ACO4、ERF1B和ERF1在轉基因植株中的表達量均高于野生型,特別是ACO4和ERF1B表達量明顯上升,促進了乙烯的合成,加速葉片衰老,表明SlSnRK2s與葉片衰老有關。

        另外有研究報道,乙烯信號通路與ABA信號通路有一定的交叉互作,比如ERF家族中的一些基因就位于信號交叉途徑中,作為連接因子促進ABA和乙烯協(xié)同調節(jié)[15]。由此初步推測SlSnRK2.2、SlSnRK2.3和SlSnRK2.6可能與ABA和乙烯信號轉導的互作有關,但具體作用方式及機制需要后續(xù)的深入研究。

        本研究揭示了SlSnRK2s基因的表達與植物衰老之間有著密切的聯(lián)系,對進一步從分子水平上闡明其發(fā)生過程和作用機制具有重要作用,同時為植物衰老的調控技術提供重要的理論依據(jù)。

        參考文獻

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        責任編輯:林海妹

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