曾健,陳敏,2*,鄭敏芳,邱雨生,2
(1.廈門大學 海洋與地球?qū)W院,福建 廈門 361005;2.近海海洋環(huán)境科學國家重點實驗室,福建 廈門 361005)
固氮速率和反硝化速率的相對平衡,決定了海洋無機氮儲庫的大小,直接影響著海洋生態(tài)系統(tǒng)的生物泵效率乃至海洋吸收大氣CO2的能力[7]。諸多古海洋沉積記錄已證明,在地質(zhì)歷史時期,海洋的固氮作用和反硝化作用相對強弱發(fā)生著周期性的變化[8—10],并且與地球氣候的波動密切相關(guān)[3,11—12]。學術(shù)界對現(xiàn)代海洋固氮速率和反硝化速率是否平衡一直存在很大爭議[4,13—17],這也使得海洋氮循環(huán)成為備受關(guān)注的熱點之一。目前的研究結(jié)果認為,海洋由反硝化作用遷出的結(jié)合態(tài)氮通量達到400Tg/a左右[15,18—19],而海水的反硝化速率約為100Tg/a[9,18],且主要集中在阿拉伯海和東赤道南、北太平洋等三大氧極小值區(qū)[18]。然而,近年來厭氧氨氧化作用及其他新型脫氮過程的發(fā)現(xiàn),極大地改變了有關(guān)海洋氮循環(huán)的傳統(tǒng)認識[20—21],也使得反硝化作用在海洋中的主導地位面臨挑戰(zhàn)[22—25]。因此,準確評估海洋反硝化作用的強度以及相關(guān)的調(diào)控因素,有助于深入了解現(xiàn)代海洋的氮循環(huán)路徑。
基于15N示蹤的同位素配對技術(shù)(Isotope Pairing Technique,IPT),因其快速、靈敏的特點[26],尤其能夠定性和定量區(qū)分反硝化和厭氧氨氧化過程而被廣泛應(yīng)用于海洋氮循環(huán)研究中[27—30],也是目前最重要的技術(shù)手段之一。N2是反硝化作用的最終產(chǎn)物,也是分析測試的對象。由于環(huán)境中的空氣具有很高的N2含量,因此,避免樣品被空氣污染是準確定量獲得反硝化速率的關(guān)鍵。15N示蹤測定反硝化速率的實驗過程中,涉及到趕氣、水樣轉(zhuǎn)移、示蹤劑添加、樣品存放等一系列流程,這些都很難避免不會受到空氣背景的污染[31]。尋找一種能夠有效校正空氣背景影響的方法,對于準確定量反硝化速率尤為重要。本研究通過對南海海水反硝化速率測定過程中所獲得的N2及其同位素組成的數(shù)據(jù)進行分析,探索測定過程中空氣的N2背景是否對實測結(jié)果產(chǎn)生了影響,進而提出了校正空氣29N2背景影響的方法,通過對實際海水樣品的分析,驗證所提出校正方法的可行性。
2012年8—9月期間,搭載“實驗3號”科學考察船,采集南海中心海盆(10°~18°N,110°~118°E)300~1 500m深度區(qū)間的海水,運用15N標記示蹤的同位素配對技術(shù)開展反硝化速率的測定。為避免采樣過程中的空氣污染,本實驗在鄭敏芳[32]研究的基礎(chǔ)上加以改進,即由CTD-Rossett采水器采集的海水先用乳膠管引出并注入到250cm3玻璃瓶內(nèi)[33],乳膠管的出水口始終保持在液面下方1cm左右處,待水樣溢流3倍采樣瓶體積后,旋緊瓶蓋,在室溫下避光存放。每個層位采集了雙份平行樣。
對每個層位所采集的兩份水樣分別進行預先趕氣和不趕氣處理[32]。取其中一份水樣,將一支通有高純He氣(純度99.999%)的15cm長不銹鋼針穿過帶硅膠墊的瓶蓋插至瓶底,同時在硅膠墊上扎一個小針頭以排出空氣,吹掃30min。將吹掃、趕氣后的水樣通過高壓He氣轉(zhuǎn)移至10支預先用高純He氣吹掃過的12.5cm3帶橡膠墊密封培養(yǎng)瓶內(nèi)(Labco Exetainer,Wycombe,UK),頂空部余留4cm3體積。另一份水樣不做高純He預先的趕氣處理,以相同的方法轉(zhuǎn)移至10支密封的培養(yǎng)瓶內(nèi)。所采用的這種培養(yǎng)瓶也是目前國內(nèi)外研究中最為廣泛采用的培養(yǎng)瓶[23—30,32—33]。
用微量進樣針將0.06μmol K15NO3(15N 原子豐度98.50%,上?;ぱ芯吭海┤芤杭尤敫髋囵B(yǎng)瓶內(nèi),使得培養(yǎng)體系中15N的豐度約為20%,此過程培養(yǎng)瓶始終保持密封。每個層位的水樣均設(shè)置5個培養(yǎng)時間段,即0h、48h、72h、96h和120h,每個時間段的樣品設(shè)置了雙份平行樣。在培養(yǎng)的終點,用10μm3飽和HgCl2溶液抑制生物的活性。所有樣品均在采樣后3h之內(nèi)完成培養(yǎng)前的處理,且都在室溫下的無光的水槽中進行。培養(yǎng)結(jié)束后,樣品倒置在室溫水槽內(nèi)密封存放,帶回陸地實驗室進行N2濃度及其同位素組成的分析。
采用Gas BenchⅡ自動進樣器與DELTAPlusXP穩(wěn)定同位素比值質(zhì)譜儀(Thermo Finnigan,USA)聯(lián)機方式對樣品 的28N2、29N2和30N2同 時 進行測定。分析測試前,先對樣品進行加熱(40℃)超聲處理40min[32],將溶解在海水中的N2完全驅(qū)趕至培養(yǎng)瓶的頂空部,之后進樣進行測定。樣品從采集到分析間隔1個月左右的時間。分析時采用空氣為標準進行測量,本研究中N2濃度測定的相對標準偏差小于8%[32]。
在一個僅存在反硝化作用的培養(yǎng)體系中,加入15N示 蹤 物 后,會 產(chǎn) 生28N2、29N2和30N23種質(zhì)量數(shù)的N2。假設(shè)反硝化細菌隨機利用體系中的14N和15N,那么由生物產(chǎn)生的這3種分子之間的比例關(guān)系與溶液中15N的豐度(即15N濃度占體系N總濃度的份額,用FN表示)有關(guān)[32,34],可表示為:
因此,通過測定29N2、30N2分子的產(chǎn)生速率,即可計算反硝化速率[33,35]:
其中,Rdeni、R29和R30分別代表反硝化速率、29N2產(chǎn)生速率以及30N2產(chǎn)生速率。后兩者可通過對不同培養(yǎng)時間 段 產(chǎn) 生 的29N2和30N2濃 度 做 線 性 擬 合 得到[23—24]。
將所有實驗數(shù)據(jù)的29N2峰面積(Area 29)和30N2峰面積(Area 30)分別對28N2峰面積(Area 28)作圖,發(fā)現(xiàn)這些數(shù)據(jù)點均落在一條直線的上方。若進一步將這些數(shù)據(jù)分為3組:(1)未經(jīng)趕氣處理且不存在反硝化作用的樣品;(2)經(jīng)過趕氣處理但不存在反硝化作用的樣品;(3)存在反硝化作用的樣品,則可明顯看出,前兩組樣品的數(shù)據(jù)都落在一條直線上,而存在反硝化作用樣品的數(shù)據(jù)則離散地分布在直線上方(圖1)。對于不存在反硝化作用的樣品,將未經(jīng)趕氣和經(jīng)趕氣處理的Area 29和Area 28分別進行擬合,可得其關(guān)系分別為y=0.007 29x+0.003(r2=0.998 9,n=34)和y=0.007 35x+0.000 04(r2=0.999 9,n=152);同樣地,對這兩組樣品 Area 30和 Area 28進行線性擬合得到的結(jié)果分別為y=0.003 44x-0.021(r2=0.920 0,n=34)和y=0.002 81 x-0.004(r2=0.971 1,n=152)。上述擬合結(jié)果說明,在沒有反硝化作用發(fā)生的情況下,水樣中所溶存氮氣的29N2/28N2組成相當恒定,且趕氣和未經(jīng)趕氣處理的樣品之間29N2/28N2組成幾乎沒有差異(偏差小于1%),而未經(jīng)趕氣處理的樣品30N2/28N2比值比趕氣處理的30N2/28N2比值來得高,相對偏差大于20%。此前不同學者對采自全球不同區(qū)域的大氣樣品進行過分析,結(jié)果表明,空氣中 N2的15N/14N 比 值 幾 乎 恒定。Junk和Svec對5份來自全球不同海拔地區(qū)的空氣樣品進行了 分 析,其29N2/28N2比 值 平 均 為 0.007 351±0.000 001[36];Mariotti于不同季節(jié)對環(huán)法國17個地區(qū)的空氣樣品進行分析后指出,δ15N標準偏差小于0.03×10-3,即15N相對豐度的偏差小于1×10-5[37],說明大氣的15N/14N比值隨時間和空間的變化很小。Berglund和Wieser為國際純粹與應(yīng)用化學聯(lián)合會(IUPAC)撰寫的“元素同位素組成2009”報告中進一步確定了大氣中15N相對豐度最理想的測試結(jié)果為0.366 3%,換 算 成29N2/28N2的 理 論 比 值 即 為0.007 35[38]。結(jié)合本研究結(jié)果,可以確定空氣中29N2/28N2的比值恒定為0.007 35。
圖1 29 N2、30 N2 和28 N2 峰面積的關(guān)系
空 氣 中15N 的 豐 度 為 0.366%[39—41]。假 設(shè) N2由15N和14N原子隨機組合形成,根據(jù)理論計算,空氣中29N2/28N2的比值應(yīng)為0.007 35,而30N2/28N2的比值應(yīng)為0.000 013 5。比較發(fā)現(xiàn),不存在反硝化作用的樣品中溶解氣體的29N2/28N2比值與空氣的29N2/28N2理論比值幾乎完全一致,但不存在反硝化作用實測樣品的30N2/28N2比值卻較空氣的理論值高出2個數(shù)量級。在一個15N豐度為20%的培養(yǎng)體系中,若存在反硝化作用,假設(shè)細菌隨機利用14N和15N,且不考慮同位素分餾效應(yīng),那么實際產(chǎn)生的29N2/28N2和30N2/28N2比值應(yīng)分別為0.5和0.062 5,均遠大于上述實測值。若培養(yǎng)體系中存在厭氧氨氧化作用,由于該過程不產(chǎn)生30N2,故會導致30N2/28N2比值的降低,而不是升高[27]?;谏鲜隹紤],可以排除生物過程產(chǎn)生過剩30N2的可能性。
為進一步證實這些水樣溶解的N2來自于大氣,取以往不同時間利用實驗周圍空氣所做的標準工作曲線進行對比,可發(fā)現(xiàn)實測得的29N2/28N2比值平均為(0.007 33±0.000 03),與理論值幾乎吻合;而實測得的30N2/28N2比值平均為(0.001 50±0.000 51),同樣較理論值高出2個數(shù)量級,但略低于上述樣品的測定值(圖2)。由此可以說明,研究樣品中確有空氣殘留的N2存在,而且這部分來自于空氣的N2具有30N2顯著“過?!钡奶卣鳌K畼又袣埩舻腘2可能由于趕氣不充分或者是樣品存放過程中外界空氣的擴散進入。鄭敏芳[32]曾仔細探索過趕氣過程去除培養(yǎng)瓶N2的效率,結(jié)果表明當趕氣時間超過10min后,培養(yǎng)瓶內(nèi)N2濃度低于檢測限,因此水樣中殘留的N2更可能是在樣品長時間存放期間外界空氣的擴散進入。由于實測空氣的29N2/28N2比值與樣品測得的29N2/28N2比值十分接近,說明在外界空氣擴散進入培養(yǎng)瓶時,并未導致28N2和29N2的明顯分餾。
如此,樣品和空氣中“過?!?0N2的存在是否是其它組分干擾的結(jié)果?30N2被質(zhì)譜的離子源轟擊后產(chǎn)生30N離子,核質(zhì)比m/e為30。近些年的研究表明,N2O分子被質(zhì)譜離子源的電子轟擊后會產(chǎn)生NO+碎片,且與N2O+離子個數(shù)有恒定的比例關(guān)系[42]。氮、氧 元 素 分 別 以14N(99.637%)和16O(99.757%)豐度最高,故 m/e為30的14N16O+是主要碎片??諝庵?N2O的含量約為300×10-9[43],與 N2含量的比值為4×10-7;海水中溶解N2O平均濃度小于50nmol/kg[43],僅相當于溶解 N2濃度(500μmol/kg)的萬分之一,顯然,即使樣品或空氣中存在N2O,也無法支持所觀察到的30N2過?,F(xiàn)象。除N2O以外,天然海水或空氣中存在的分子量為30的氣體還包括14N16O、13C17O和12C18O,但它們的含量均遠小于N2含量的百萬分之一[40],也不可能是產(chǎn)生30N2過剩的主要原因。就目前認識,尚無法清晰界定所觀察到的30N2過剩來源,有待后續(xù)更深入的研究。鑒于30N2存在未知來源的額外影響,本研究在反硝化速率的計算中僅采用29N2測值進行計算,同時重點考慮培養(yǎng)體系中空氣29N2背景的校正方法。
圖2 不同時間空氣 N2 中29 N2、30 N2 和28 N2 的關(guān)系
根據(jù)上述討論可知,經(jīng)過培養(yǎng)的水樣或者由于趕氣不夠充分,或是因為存放期間外界空氣的擴散進入,導致樣品中產(chǎn)生了N2背景,這勢必會對反硝化速率的計算結(jié)果產(chǎn)生影響。幸運的是,這部分N2具有恒定不變的29N2/28N2比值,故可利用這一特征信號,對實測的29N2峰面積進行校正,從而準確獲得經(jīng)反硝化作用產(chǎn)生的29N2峰面積。
根據(jù)空氣N2和反硝化作用所產(chǎn)生N2的29N2/28N2比值特征,可建立兩種方法來區(qū)分反硝化作用與空氣對N2的貢獻:
方法一:培養(yǎng)后水樣中的N2包含生物反硝化作用產(chǎn)生和空氣N2背景兩部分。設(shè)由生物反硝化作用產(chǎn)生的28N2、29N2峰面積分別為a1、b1,空氣 N2背景的28N2、29N2峰面積分別為a2、b2;實測的28N2和29N2峰面積分別為A和B。由于空氣N2背景中28N2占絕對主導地位,故可假設(shè)生物反硝化作用產(chǎn)生的28N2相比于背景可忽略(即a1=0)。另外,由上述討論可知,b2/a2為一恒定比值,用β表示(β=0.007 35)。由此,可獲得如下質(zhì)量平衡關(guān)系:
求解b1得:
方法二:若考慮生物作用貢獻的28N2,在不存在厭氧氨氧化作用的條件下,假設(shè)反硝化細菌在培養(yǎng)體系中隨機利用14N和15N,且忽略同位素分餾效應(yīng),那么由反硝化作用產(chǎn)生的29N2/28N2峰面積比值等于2FN/(1-FN)[34],用α表示,F(xiàn)N為體系中15N/14N豐度比。同樣,可建立如下質(zhì)量平衡方程:
求解b1得:
將兩種校正方法得到的b1值進行對比,發(fā)現(xiàn)二者所得數(shù)據(jù)十分吻合(圖3)。這個結(jié)果也恰好說明上述兩種方法所對應(yīng)的假設(shè)前提在實際培養(yǎng)體系中可以成立,即:(1)由生物反硝化作用產(chǎn)生的28N2與空氣的28N2背景相比可以忽略;(2)研究樣品不存在厭氧氨氧化作用;(3)反硝化作用的同位素分餾效應(yīng)在計算過程中可以忽略。因此,對于只存在反硝化作用的天然水體,利用15N標記示蹤法測定反硝化速率時,可借助式(3)校正空氣N2背景的影響。
在此前的研究中,一些學者有考慮到環(huán)境本底對29N2濃度測定結(jié)果的影響。Dalsgaard等和Nielsen都在各自的研究中提到關(guān)于“過剩29N2”的概念,即生物過程產(chǎn)生的29N2[30,34],但對計算的方法并未給出具體說明。Holtappels等提出了修正29N2背景干擾的具體方法[33],但并未給出背景29N2/28N2的特征比值,也沒有考慮厭氧氨氧化作用的存在是否會對校正結(jié)果產(chǎn)生影響。樣品受空氣污染程度與樣品保存的方式和時間長短有關(guān)。多數(shù)國外研究并未涉及29N2背景校正這一方面,可能與樣品的存放方式或存放時間有關(guān)。即便如此,一個合適的校正方法對獲得準確的反硝化速率仍就十分重要[33],這也是本研究提出可以準確校正15N示蹤所得反硝化速率的初衷所在。
選取本航次分別位于南海海盆北部和南部的兩個站位 KJ12(18°15.12′N,114°0.12′E)和 KJ63(9°59.94′N,111°0.12′E),以氧極小值層位(分別為1 500 m和800m)經(jīng)預先趕氣后水體的培養(yǎng)結(jié)果進行對比。當測定的數(shù)據(jù)未經(jīng)校正處理時,可以明顯地看出平行樣的結(jié)果之間存在較大的偏差,且29N2濃度與培養(yǎng)時間之間不存在顯著的線性相關(guān)性(p>0.1)(見圖4)。這可能是由于不同培養(yǎng)瓶在放置過程中受外界空氣擴散影響的程度不同所致,導致29N2濃度隨培養(yǎng)時間增加的信號被背景干擾所掩蓋,由此計算得到的反硝化速率將存在很大的不確定度(RSD>50%)。相比之下,對空氣29N2背景進行校正后,平行樣之間的偏差明顯減小,且29N2濃度與培養(yǎng)時間的線性相關(guān)性水平顯著增加(r2>0.7,p<0.001)(圖4),與文獻報道的反硝化作用存在證據(jù)相符[23-24,33]。經(jīng)空氣29N2背景校后得到的反硝化速率不確定度也顯著降低(RSD約為20%)。
就所研究的KJ12和KJ63站氧極小值層位樣品,由式(3)進行空氣29N2背景校正,并由式(1)計算出的反硝化作用潛在速率平均為(1.8±0.2)μmol/(dm3·d)。該數(shù)值落在文獻報道的開闊大洋水體反硝化速率范圍[0.000 24~2.7μmol/(dm3·d)]之內(nèi)[24,28]。
圖4 KJ12站(a)和KJ63站(b)氧極小值層水樣29 N2濃度隨培養(yǎng)時間的變化
(1)利用15N示蹤法測量海水反硝化速率的過程中,樣品長時間的存放有可能會受到空氣擴散進入的影響,由此導致29N2濃度的分析結(jié)果異常,進而影響反硝化速率的準確定量。
(2)由于空氣中29N2/28N2比值恒定為0.007 35,并且在空氣擴散進入培養(yǎng)體系的過程中該比值幾乎不會發(fā)生變化,故提出利用該恒定的比值,通過質(zhì)量平衡方程校正空氣29N2背景的影響,在培養(yǎng)體系只存在反硝化作用的情況下,將樣品實測的29N2濃度扣除由外界空氣貢獻的29N2濃度,就可得到由生物反硝化作用產(chǎn)生的29N2準確值,進而可獲得準確的反硝化速率。
(3)對南海實際海水樣品的研究表明,經(jīng)空氣29N2背景校正后,培養(yǎng)體系29N2濃度與培養(yǎng)時間之間的線性關(guān)系顯著加強,由此計算出的反硝化速率更為可靠。
[1] Codispoti L A.Phosphorus vs.nitrogen limitation of new and export production[C]//Berger W H.Productivity of the Ocean:Present and Past.New York:Wiley,1989:377-394.
[2] Tyrrell T.The relative influences of nitrogen and phosphorus on oceanic primary production[J].Nature,1999,400(6744):525-531.
[3] Gruber N.The marine nitrogen cycle:overview and challenges[M]//Capone D G,Bronk D A,Mulholland M R,et al.Nitrogen in the Marine Environment.2nd ed.Burlington:Academic Press,2008:1-50.
[4] Gruber N,Sarmiento J L.Global patterns of marine nitrogen fixation and denitrification[J].Global Biogeochemical Cycles,1997,11(2):235-266.
[5] Zehr J P,Kudela R M.Nitrogen cycle of the open ocean:from genes to ecosystems[J].Annual Review of Marine Science,2011,3:197-225.
[6] Knowles R.Denitrification[J].Microbiological Reviews,1982,46(1):43-70.
[7] Falkowski P G.Evolution of the nitrogen cycle and its influence on the biological sequestration of CO2in the ocean[J].Nature,1997,387(6630):272-275.
[8] Ganeshram R S,Pedersen T F,Calvert S E,et al.Large changes in oceanic nutrient inventories from glacial to interglacial periods[J].Nature,1995,376(6543):755-758.
[9] Altabet M A.Isotopic tracers of the marine nitrogen cycle:present and past[M]//Volkman J K.Marine Organic Matter:Biomarkers,Isotopes and DNA.Berlin Heidelberg Springer-Verlag,2006:251-293.
[10] Altabet M A.Constraints on oceanic N balance/imbalance from sedimentary15N records[J].Biogeosciences,2007,4(1):75-86.
[11] Mcelroy M B.Marine biological controls on atmospheric CO2and climate[J].Nature,1983,302(5906):328-329.
[12] Altabet M A,F(xiàn)rancois R,Murray D W,et al.Climate-related variations in denitrification in the Arabian Sea from sediment15N/14N ratios[J].Nature,1995,373(6514):506-509.
[13] Codispoti L A,Brandes J A,Christensen J P,et al.The oceanic fixed nitrogen and nitrous oxide budgets:moving targets as we enter the anthropocene?[J].Scientia Marina,2001,65(S2):85-105.
[14] Capone D G,Knapp A N.Oceanography:a marine nitrogen cycle fix?[J].Nature,2007,445(7124):159-160.
[15] Codispoti L A.An oceanic fixed nitrogen sink exceeding 400Tg N a-1vs the concept of homeostasis in the fixed-nitrogen inventory[J].Biogeosciences,2007,4(2):233-253.
[16] Devries T,Deutsch C,Primeau F,et al.Global rates of water-column denitrification derived from nitrogen gas measurements[J].Nature Geoscience,2012,5(8):547-550.
[17] Eugster O,Gruber N.A probabilistic estimate of global marine N-fixation and denitrification[J].Global Biogeochemical Cycles,2012,26(4),doi:10.1029/2012GB004300.
[18] Devol A H.Denitrification including anammox[M]//Capone D G,Bronk D A,Mulholland M R,et al.Nitrogen in the Marine Environment.2nd ed.Burlington:Academic Press,2008:263-301.
[19] Naqvi S W A,Voss M,Montoya J P.Recent advances in the biogeochemistry of nitrogen in the ocean[J].Biogeosciences,2008,5(4):1033-1041.
[20] Zehr J P,Ward B B.Nitrogen cycling in the ocean:new perspectives on processes and paradigms[J].Applied and Environmental Microbiology,2002,68(3):1015-1024.
[21] Brandes J A,Devol A H,Deutsch C.New developments in the marine nitrogen cycle[J].Chemical Reviews,2007,107(2):577-589.
[22] Ward B B.Significance of anaerobic ammonium oxidation in the ocean[J].Trends in Microbiology,2003,11(9):408-410.
[23] Hamersley M R,Lavik G,Woebken D,et al.Anaerobic ammonium oxidation in the Peruvian oxygen minimum zone[J].Limnology and Oceanography,2007,52(3):923-933.
[24] Hannig M,Lavik G,Kuypers M M M,et al.Shift from denitrification to anammox after inflow events in the central Baltic Sea[J].Limnology and Oceanography,2007,52(4):1336-1345.
[25] Dalsgaard T,Thamdrup B,F(xiàn)arías L,et al.Anammox and denitrification in the oxygen minimum zone of the eastern South Pacific[J].Limnology and Oceanography,2012,57(5):1331-1346.
[26] Groffman P M,Altabet M A,B?hlke J K,et al.Methods for measuring denitrification:diverse approaches to a difficult problem[J].Ecological Applications,2006,16(6):2091-2122.
[27] Dalsgaard T,Canfield D E,Petersen J,et al.N2production by the anammox reaction in the anoxic water column of Golfo Dulce,Costa Rica[J].Nature,2003,422(6932):606-608.
[28] Devol A H,Uhlenhopp A G,Naqvi S W A,et al.Denitrification rates and excess nitrogen gas concentrations in the Arabian Sea oxygen deficient zone[J].Deep-Sea ResearchⅠ,2006,53(9):1533-1547.
[29] Bulow S E,Rich J J,Naik H S,et al.Denitrification exceeds anammox as a nitrogen loss pathway in the Arabian Sea oxygen minimum zone[J].Deep-Sea ResearchⅠ,2010,57(3):384-393.
[30] Dalsgaard T,De Brabandere L,Hall P O J.Denitrification in the water column of the central Baltic Sea[J].Geochimica et Cosmochimica Acta,2013,106:247-260.
[31] De Brabandere L,Thamdrup B,Revsbech N P,et al.A critical assessment of the occurrence and extend of oxygen contamination during anaerobic incubations utilizing commercially available vials[J].Journal of Microbiological Methods,2012,88(1):147-154.
[32] 鄭敏芳.海洋水體反硝化作用和厭氧氨氧化作用的15N示蹤研究[D].廈門:廈門大學,2010.
[33] Holtappels M,Lavik G,Jensen M M,et al.15N-labeling experiments to dissect the contributions of heterotrophic denitrification and anammox to nitrogen removal in the OMZ waters of the ocean[M]//Klotz M G.Research on Nitrification and Related Processes,Part A.Burlington:Academic Press,2011:223-251.
[34] Nielsen L P.Denitrification in sediment determined from nitrogen isotope pairing[J].FEMS Microbiology Letters,1992,86(4):357-362.
[35] Seitzinger S P,Nielsen L P,Caffrey J,et al.Denitrification measurements in aquatic sediments:a comparison of three methods[J].Biogeochemistry,1993,23(3):147-167.
[36] Junk G,Svec H J.The absolute abundance of the nitrogen isotopes in the atmosphere and compressed gas from various sources[J].Geochimica et Cosmochimica Acta,1958,14(3):234-243.
[37] Mariotti A.Atmospheric nitrogen is a reliable standard for natural15N abundance measurements[J].Nature,1983,303:685-687.
[38] Berglund M,Wieser M E.Isotopic compositions of the elements 2009(IUPAC Technical Report)[J].Pure and Applied Chemistry,2011,83(2):397-410.
[39] Montoya J P.Nitrogen stable isotopes in marine environments[M]//Capone D G,Bronk D A,Mulholland M R,et al.Nitrogen in the Marine Environment.2nd ed.Burlington:Academic Press,2008:1277-1302.
[40] Hoefs J.Stable isotope geochemistry[M].6th ed.Berlin Heidelberg:Springer-Verlag,2009:48-58.
[41] 黃達峰,羅修泉,李喜斌,等.同位素質(zhì)譜技術(shù)與應(yīng)用[M].北京:化學工業(yè)出版社,2006:21-35.
[42] Toyoda S,Yoshida N.Determination of nitrogen isotopomers of nitrous oxide on a modified isotope ratio mass spectrometer[J].Analytical Chemistry,1999,71(20):4711-4718.
2
2
3