王國強,衛(wèi) 寧,王 禹,龐衛(wèi)軍
(西北農(nóng)林科技大學(xué)動物科技學(xué)院,陜西楊凌712100)
近年來,高通量轉(zhuǎn)錄組測序分析發(fā)現(xiàn)哺乳動物基因組中存在一系列不編碼蛋白質(zhì)的正義、反義、內(nèi)含子和基因間的轉(zhuǎn)錄本[1-4],統(tǒng)稱為非編碼RNA(non-coding RNA,ncRNA),其中轉(zhuǎn)錄本長度大于200nt的稱為長鏈非編碼RNA(long non-coding RNA,lncRNA)。lncRNA最初被認(rèn)為是RNA聚合酶II轉(zhuǎn)錄的副產(chǎn)物,不具有生物學(xué)功能。然而,近年來研究表明,lncRNA參與了X染色體沉默、染色體修飾和基因組修飾、轉(zhuǎn)錄激活、轉(zhuǎn)錄干擾、核內(nèi)運輸?shù)戎匾纳飳W(xué)過程,且具有促進細(xì)胞凋亡、病毒入侵、多能干細(xì)胞去分化、細(xì)胞命運標(biāo)記和遺傳印記等多種功能[5-10]。據(jù)統(tǒng)計,哺乳動物蛋白編碼RNA僅占總RNA的1%,而長鏈非編碼RNA占總RNA的比例可達(dá)4%~9%[11]。lncRNA還與多種疾病的發(fā)生、發(fā)展、診斷和治療有密切關(guān)系,特別是在多種癌癥的表觀遺傳調(diào)控方面起著重要作用。本文綜述了lncRNA與DNA、mRNA、miRNA和蛋白的互作關(guān)系,旨在為進一步研究lncRNA調(diào)控網(wǎng)絡(luò)及其在相關(guān)代謝途徑中的功能提供參考。
由于lncRNA數(shù)目眾多,功能各異所以對其還沒有統(tǒng)一的定義。目前,普遍認(rèn)為lncRNA是大于200nt的、沒有編碼蛋白功能的RNA,但以RNA形式在表觀遺傳調(diào)控、轉(zhuǎn)錄調(diào)控以及轉(zhuǎn)錄后調(diào)控等多種層面上調(diào)節(jié)基因的表達(dá)水平。lncRNA可由DNA的正義鏈(sense strand of DNA)或反義鏈(antisense strand of DNA)轉(zhuǎn)錄產(chǎn)生,位于細(xì)胞核內(nèi)或者胞漿中。大多數(shù)lncRNA與mRNA具有相同的轉(zhuǎn)錄機制,即需要RNA聚合酶II的參與以及與轉(zhuǎn)錄起始和延伸相關(guān)的組蛋白的修飾。這些lncRNA具有5'端的甲基鳥苷帽子,相當(dāng)一部分lncRNA的3'端具有多聚腺苷尾[12-14]。
對lncRNA進行科學(xué)的分類是有效地研究lncRNA的前提,目前比較公認(rèn)的是根據(jù)其來源于基因組的不同位置分為五類[11]:①正義的(sense),蛋白編碼基因轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物經(jīng)過剪接產(chǎn)生的無編碼功能的轉(zhuǎn)錄本;②反義的(antisense,AS),由與蛋白編碼基因互補的DNA鏈轉(zhuǎn)錄產(chǎn)生,且和該基因有一個或數(shù)個外顯子的重疊;③雙向的(bidirectional),基因組鄰近區(qū)域互補的兩條鏈上的基因同時表達(dá)的轉(zhuǎn)錄本;④內(nèi)含子的(intronic),即完全來源于基因的內(nèi)含子;⑤基因間的(intergenic),位于兩個基因間的區(qū)域。
2.1.1 等位基因特異性 遺傳印記是等位基因特異性的一個后生調(diào)控機制。多數(shù)情況下,哺乳動物來自親本的兩個等位基因表達(dá)是對等的,然而其中一小部分帶有印記的基因的表達(dá)被表觀遺傳機制限制在母本或父本等位基因。一些lncRNA通過與染色質(zhì)相互作用和招募染色質(zhì)修飾結(jié)構(gòu)來調(diào)節(jié)多種基因的轉(zhuǎn)錄沉默,如被定位于KCNQ1r印跡基因簇的Kcnq1ot1AS lncRNA與組蛋白甲基轉(zhuǎn)移酶G9a和PRC2(Polycomb repressive complex2,PRC2)相互作用,有效地通過招募多梳復(fù)合物在順式位置形成其轉(zhuǎn)錄位點的抑制結(jié)構(gòu)域[15]。
2.1.2 甲基化與泛素化修飾 lncRNA TUG1可與抑制性復(fù)合物CoR結(jié)合作用于甲基化酶Suv39h1對多梳蛋白Pc2進行甲基化修飾,進而結(jié)合E2F1因子(能夠抑制促進生長的一系列基因的表達(dá),使細(xì)胞處于休眠狀態(tài)),形成抑制性復(fù)合體,該復(fù)合體結(jié)合于DNA鏈上可抑制一系列基因的表達(dá);而lncRNA NEAT2則與其作用相反,它能結(jié)合激活性復(fù)合物CoA,作用于Pc2進而使E2F1因子泛素化,從而解除抑制作用,促進一系列促生長基因(MCM3、CDC25A、PCNA、MSH2、RBL1等)的表達(dá),如圖1所示[16]。
圖1 lncRNA TUG1和NEAT2的表觀遺傳調(diào)控功能[16]Fig.1 Epigenetic regulatory function of lncRNA TUG1and NEAT2
2.2.1 直接順式調(diào)控轉(zhuǎn)錄 lncRNA可以結(jié)合轉(zhuǎn)錄因子,直接順式調(diào)節(jié)基因的轉(zhuǎn)錄,而不是通過與DNA結(jié)合而發(fā)揮轉(zhuǎn)錄調(diào)控作用。如電離輻射誘導(dǎo)的細(xì)胞周期蛋白D1(Cyclin D1,CCND1)啟動子上游轉(zhuǎn)錄出的lncRNA與脂肪肉瘤易位蛋白(Translocation liposarcoma protein,TLS)結(jié)合,從而產(chǎn)生變構(gòu)效果,結(jié)合并抑制組蛋白乙酰轉(zhuǎn)移酶,導(dǎo)致CCND1轉(zhuǎn)錄下調(diào)[17]。
2.2.2 與DNA形成異源多聚體 lncRNA與不同功能的幾類效應(yīng)分子--激活性復(fù)合體如三胸苷蛋白(Three thymidine protein,TXG)、抑制性復(fù)合物蛋白質(zhì)如多梳蛋白基團(Polycomb group protein,PCG)等構(gòu)成大分子復(fù)合體,然后與靶基因結(jié)合,形成蛋白質(zhì)-RNA-DNA異源多聚體調(diào)節(jié)基因的轉(zhuǎn)錄。位于CDKN1A基因上游的lincRNA-p21,在DNA損傷的情況下被誘導(dǎo)轉(zhuǎn)錄,作為經(jīng)典p53通路的轉(zhuǎn)錄抑制因子,通過結(jié)合和修飾核內(nèi)非均一核糖核蛋白hnRNP-K,從而作用并抑制p53基因,引發(fā)細(xì)胞凋亡[18]。再如上文提到的TUG1和NEAT2,它們激活或抑制基因的表達(dá)也是通過與DNA形成異源多聚體實現(xiàn)的。
2.2.3 轉(zhuǎn)錄干擾 一些基因的mRNA的內(nèi)源性互補轉(zhuǎn)錄本--天然反義轉(zhuǎn)錄本(Natural antisense transcripts,或AS lncRNA)在轉(zhuǎn)錄時,與正義轉(zhuǎn)錄本(mRNA)的重疊區(qū)較大,兩個RNA聚合酶相互碰撞導(dǎo)致轉(zhuǎn)錄起始受阻,產(chǎn)生一條鏈轉(zhuǎn)錄而另一條鏈轉(zhuǎn)錄受抑制的轉(zhuǎn)錄干擾現(xiàn)象[19],尤其見于“尾對尾”轉(zhuǎn)錄的反義轉(zhuǎn)錄本中[20]。
lncRNA在轉(zhuǎn)錄后水平可通過和互補的mRNA形成雙鏈RNA,影響mRNA加工、剪接、轉(zhuǎn)運、翻譯和降解等過程,從而調(diào)節(jié)基因的表達(dá)。人急性粒細(xì)胞白血病細(xì)胞HL-60細(xì)胞系中PU.1的mRNA的水平很高,而蛋白質(zhì)水平不高,是由于PU.1的AS RNA與其mRNA結(jié)合導(dǎo)致翻譯受抑制[21]。
lncRNA還可以互補結(jié)合mRNA,掩蔽其3'-UTR部位的靶miRNA結(jié)合位點,從而有助于該mRNA的穩(wěn)定并促進其翻譯,interferon-α1的AS RNA即通過掩蔽其mRNA的miR-1270的結(jié)合位點增強其mRNA的穩(wěn)定性[22]。
與多能性相關(guān)的長鏈基因間的非編碼RNA(long intergenetic noncoding RNA,lincRNA)最早發(fā)現(xiàn)于鼠胚胎干細(xì)胞。Loewer等[23]研究發(fā)現(xiàn)與胚胎干細(xì)胞(ESCs)相比較,在誘導(dǎo)多能干細(xì)胞(iPSCs)中檢測到10個的表達(dá)上調(diào)lincRNAs,推測iPSCs的形成是通過這些lincRNAs與多能性因子相互作用實現(xiàn)的。如lincRNA-RoR(Receptor superfamily related to the retinoic acid receptors,RoR)在體細(xì)胞去分化并誘導(dǎo)iPSCs的過程高表達(dá),能靶定結(jié)合關(guān)鍵的多能性因子Oct4、Sox2和Nanog的啟動子鄰近區(qū)域(PrPr區(qū)域),從而促進其表達(dá)而誘導(dǎo)細(xì)胞去分化和多能性的產(chǎn)生。因此,RoR在體外可以促進多種細(xì)胞系去分化產(chǎn)生iPSCs[23]。
3.1.1 肝癌 Yang等[24]證實lncRNA-HEIH(High expression in hepatocellular carcinoma,HEIH)有助于肝癌的發(fā)生,它與EZH2結(jié)合,下調(diào)p21等細(xì)胞周期調(diào)控因子的表達(dá),促進細(xì)胞周期由G0進入S期,誘發(fā)肝細(xì)胞癌變。且lncRNA-HEIH表達(dá)的下調(diào)顯著的抑制了肝癌細(xì)胞的生長,因此,lncRNA-HEIH將成為肝細(xì)胞癌治療的潛在靶點。
lncRNA-HULC(Highly up-regulated in liver cancer,HULC)是轉(zhuǎn)錄自6p24.3的大約500nt的轉(zhuǎn)錄本。在肝癌細(xì)胞中,啟動子結(jié)合蛋白CREB(cAMP-response element binding protein,CREB)可以通過與miR-372相互作用上調(diào)lncRNAHULC的表達(dá),而HULC已經(jīng)被鑒定在肝癌及腸癌轉(zhuǎn)移的組織中特異性高表達(dá)[25]。
3.1.2 乳腺癌 lncRNA-GAS5(Growth arrestspecific transcript 5,GAS5)具有抑制腫瘤的作用,它起初是在小鼠胚胎成纖維細(xì)胞中發(fā)現(xiàn)的,通過選擇性剪切可產(chǎn)生不同的結(jié)構(gòu),它的開放式閱讀框很小且保守性很差。相對于正常乳腺細(xì)胞,lncRNAGAS5在乳腺癌組織中表達(dá)量顯著降低。GAS5轉(zhuǎn)錄加工過程中產(chǎn)生的小核仁RNA具有誘導(dǎo)細(xì)胞生長抑制和凋亡的功能[26]。
3.1.3 前列腺癌 lncRNA-PCGEM1(Prostate cancer gene expression marker 1,PCGEM1)的過量表達(dá)導(dǎo)致了癌細(xì)胞的增殖和克隆形成,其轉(zhuǎn)錄水平的上調(diào)與美洲黑人的惡性前列腺癌的發(fā)生有關(guān)聯(lián),PCGEM1調(diào)控著前列腺癌的發(fā)生進程,是潛在的前列腺癌標(biāo)記。Schilling[27-28]等通過PSA(Prostate-specific antigen,亦稱Differential display code 3,DD3)表達(dá)水平和活體組織檢測的5個案例,認(rèn)為DD3分析可幫助決定立即治療或留待觀察,并提出DD3分析將是診斷前列腺癌的新標(biāo)記。
lncRNA-PCATs(Prostate cancer-associated ncRNA transcripts,PCATs)靶定結(jié)合并抑制多梳抑制性復(fù)合物2(Polycomb Repressive Complex 2,PRC2)的轉(zhuǎn)錄抑制作用,顯著地促進細(xì)胞增殖,因而被認(rèn)定為惡性前列腺癌的標(biāo)記[29]。
3.1.4 肺 癌 lncRNA-MALAT-1(Metastasis-associated lung adenocarcinoma transcript 1,MALAT-1)既是肺癌組織的生物標(biāo)記也是治療肺癌的靶點。MALAT-1可以正調(diào)控與癌癥遷移相關(guān)的基因的表達(dá)。因此,抑制MALAT-1的表達(dá)可以阻止肺癌細(xì)胞的遷移和腫瘤組織的增大[30]。Tripathi等[31]通過基因過表達(dá)載體和siRNA處理,發(fā)現(xiàn)MALAT1可以通過調(diào)節(jié)SR蛋白(絲氨酸/精氨酸豐富蛋白家族)的磷酸化來影響許多mRNA前體的剪切。
目前l(fā)ncRNA在人類肥胖及相關(guān)疾病中的作用還未見報道。轉(zhuǎn)錄因子PU.1是調(diào)控生命過程的關(guān)鍵因子,最近發(fā)現(xiàn),PU.1(Spleen focus forming virus(SFFV)proviral integration oncogene,spi-1或PU.1)在脂肪代謝過程中發(fā)揮調(diào)控作用。PU.1在前體脂肪細(xì)胞中mRNA表達(dá)較高,而蛋白表達(dá)較低,在成熟脂肪細(xì)胞中則相反:過表達(dá)PU.1顯著抑制脂肪細(xì)胞中脂肪的生成[32]。本研究團隊推測PU.1AS lncRNA在該過程中發(fā)揮著關(guān)鍵作用,通過與mRNA結(jié)合進行轉(zhuǎn)錄后調(diào)控[33]。而且有報道,PU.1與生脂關(guān)鍵基因C/EBPα(CCAAT enhancer binding proteinα,C/EBPα)發(fā)揮協(xié)同作用[34]。因此,AS lncRNA很可能在肥胖以及二型糖尿病等相關(guān)疾病的治療中發(fā)揮關(guān)鍵作用。
最近研究發(fā)現(xiàn),β分泌酶的一段保守的反義lncRNA(noncoding AS transcript forβ-secretase-1,BACE1)能夠加速阿爾茨海默?。ˋD)的發(fā)生[35]。分析其在人腦和AD小鼠模型中的表達(dá)和影響結(jié)果表明,在各種細(xì)胞應(yīng)激的誘導(dǎo)下其表達(dá)上調(diào)。而以往研究表明其正義轉(zhuǎn)錄本的缺失會造成記憶缺失和外周神經(jīng)鞘缺損等生理缺陷。因此,lncRNA也能在精細(xì)范圍內(nèi)發(fā)揮調(diào)節(jié)作用。
最近的研究表明lncRNA之間可以競爭結(jié)合共同的miRNAs從而影響miRNAs的靶向干擾作用[36]。這種競爭性的內(nèi)源RNA(Competing endogenous RNAs,ceRNAs)調(diào)控miRNA分子在它們靶序列上的分布,發(fā)揮轉(zhuǎn)錄后水平調(diào)控作用。人類和小鼠成肌細(xì)胞中的一個新的長非編碼RNA-linc-MD1[37],作為ceRNA調(diào)控肌肉分化時序,其被下調(diào)或者過表達(dá)分別導(dǎo)致肌肉分化的滯后和提前。linc-MD1吸附結(jié)合miR-133和miR-135分別解除它們對其靶基因MAML1(Mastermind-like protein1,MAML1)和MEF2C(Muscle-specific enhancing factor 2C,MEF2C)的干擾作用,激活這兩種肌肉特異性因子的表達(dá),從而促進肌細(xì)胞的生存和分化,對杜氏肌營養(yǎng)不良病起到緩解作用。因而lncRNA在肌肉分化過程中發(fā)揮著重要作用。
LncRNA已被公認(rèn)為是基因調(diào)控大家族的新成員。目前,相對于miRNA和siRNA等小非編碼RNA,研究人員對lncRNA的認(rèn)識還相當(dāng)有限。lncRNA數(shù)量繁多且功能復(fù)雜,而且各種功能的lncRNA仍不斷地被發(fā)現(xiàn),揭示其在生命過程的調(diào)控,疾病的發(fā)生、發(fā)展和遺傳學(xué)方面有重要作用。因此,對lncRNA的研究將成為生命科學(xué)領(lǐng)域的新熱點。
綜上所述,lncRNA的識別、鑒定和其與microRNA、蛋白質(zhì)等相互作用在系統(tǒng)生物學(xué)中的研究,以及其在重大疾病發(fā)生、發(fā)展中的基因調(diào)控作用將是今后相當(dāng)長的一段時間內(nèi)有待探索的問題。
[1] Clark M B,Johnston R L,Inostroza-Ponta M,et al.Genomewide analysis of long noncoding RNA stability[J].Genome Res,2012,22:885-898.
[2] Sun L,Goff L A,Trapnell C,et al.Long noncoding RNAs regulate adipogenesis[J].Proc Natl Acad Sci USA,2013,110(9):3 387-3 392.
[3] Chen G,Qiu C,Zhang Q,et al.Genome-wide analysis of human SNPs at long intergenic noncoding RNAs[J].Hum Mutat,2013,34(2):338-344.
[4] Yi F,Yang F,Liu X.RNA-seq identified a super-long intergenic transcript functioning in adipogenesis[J].RNA Biol,2013,10(6):990-1 001.
[5] Mattick J S.The central role of RNA in human development and cognition[J].FEBS Lett,2011,585(11):1 600-1 616.
[6] Nagano T,F(xiàn)raser P.No-nonsense functions for long noncoding RNAs[J].Cell,2011,145(2):178-181.
[7] Khaitan D,Dinger M E,Mazar J,et al.The melanoma-upregulated long noncoding RNA SPRY4-IN1modulates apoptosis and invasion[J].Cancer Res,2011,71(11):3 852-3 862.
[8] Loewer S,Cabili M N,Guttman M,et al.Large intergenic non-coding RNA-RoR modulates reprogramming of human induced pluripotent stem cells[J].Nat Genet,2010,42(12):1 113-1 117.
[9] Ginger M R,Shore A N,Contreras A,et al.A noncoding RNA is a potential marker of cell fate during mammary gland development[J].Proc Natl Acad Sci USA,2006,103(15):5 781-5 786.
[10] Sleutels F,Zwart R,Barlow D P.The non-coding Air RNA is required for silencing autosomal imprinted genes[J].Nature,2002,415(6873):810-813.
[11] Ponting C P,Oliver P L,Reik W.Evolution and functions of long noncoding RNAs[J].Cell,2009,136(6):629-641.
[12] Navikova I V,Hennelly S P,Sanbonmatsu K Y.Tackling structures of long noncoding RNAs[J].Int J Mol Sci,2013,14(12):23 672-23 684.
[13] Mitchell G,John L R.Modular regulatory principles of large non-coding RNAs[J].Nature,2012,482(7385):339-346.
[14] Birney E,Stamatoyannopoulos J A,Dutta A,et al.Identification and analysis of functional elements in 1%of the human genome by the ENCODE pilot project[J].Nature,2007,447(7146):799-816.
[15] Zhang H,Zeitz M J,Wang H,et al.Long noncoding RNA-mediated intrachromosomal interactions promote imprinting at the Kcnq1locus[J].J Cell Biol,2014,204(1):61-75.
[16] Yang L Q,Lin C R,Liu W,et al.ncRNA-and Pc2methylation-dependent gene relocation between nuclear structures mediates gene activation programs[J].Cell,2011,147(4):773-788.
[17] Wang X,Arai S,Song X,et al.Induced ncRNAs allosterically modify RNA-binding proteins in cis to inhibit transcription[J].Nature,2008,454(7200):126-130.
[18] Huarte M,Guttman M,F(xiàn)eldser D,et al.A large intergenic noncoding RNA induced by p53mediates global gene repression in the p53response[J].Cell,2010,142(3):409-419.
[19] Crampton N.Collision events between RNA polymerases in convergent transcription studied by atomic force microscopy[J].Nucleic Acids Res,2006,34(19):5 416-5 425.
[20] Michal L,Yitzhak P.Genome-wide natural antisense transcription:coupling its regulation to its different regulatory mechanisms[J].EMBO Reports,2006,7(12):1 216-1 222.
[21] Ebralidze A K,Guibal F C,Steid U,et al.PU.1expression is modulated by the balance of functional sense and antisense RNAs regulated by a shared cis-regulatory element[J].Genes Dev,2008,22(9):2 085-2 092.
[22] Kimura T,Jiang S W,Nishizawa M,et al.Stabilization of human interferon-a1mRNA by its antisense RNA[J].Cell Mol Life Sci,2013,70(8):1 451-1 467.
[23] Loewer S,Cabili M N,Guttman M,et al.Large intergenic non-coding RNA-RoR modulates reprogramming of human induced pluripotent stem cells[J].Nat Genet,2010,42(12):1 113-1 117.
[24] Yang F,Zhang L,Huo X S,et al.Long noncoding RNA high expression in hepatocellular carcinoma facilitates tumor growth through enhancer of zeste homolog 2in humans[J].Hepatology,2011,54(5):1 679-1 689.
[25] Matouk I J,Abbasi I,Hochberg A,et al.Highly upregulated in liver cancer noncoding RNA is overexpressed in hepatic colorectal metastasis[J].Eur J Gastroen Hepat,2009,21(6):688-692.
[26] Mourtada-Maarabouni M,Pickard M R,Hedge V L,et al.GAS5,a non-protein-coding RNA,controls apoptosis and is downregulated in breast cancer[J].Oncogene,2009,28(2):195-208.
[27] Schilling D,de Reijke T,Tombal B,et al.The prostate cancer gene 3assay:indications for use in clinical practice[J].BJU Int,2010,105(4):452-455.
[28] Maciej S,Jack A S.PCA3and TMPRSS2-ERG:Promising biomarkers in prostate cancer diagnosis[J].Cancers,2010,2(3):1 432-1 440.
[29] Prensner J R,Iyer M K,Balbin O A.Transcriptome sequencing across a prostate cancer cohort identifies PCAT-1,an unannotated lincRNA implicated in disease progression[J].Nat Biotechnol,2011,29(8):742-750.
[30] Gutschner T,Hammerle M,Eissmann M,et al.The noncoding RNA MALAT1is a critical regulator of the metastasis phenotype of lung cancer cells[J].Cancer Res,2013,73(3):1 180-1 189.
[31] Tripathi V,Ellis J D,Shen Z,et al.The nuclear-retained noncoding RNA MALAT1regulates alternative splicing by modulating SR splicing factor phosphorylation[J].Mol Cell,2010,39(6):925-938.
[32] Wang F,Tong Q.Transcription factor PU.1is expressed in white adipose and inhibits adipocyte differentiation[J].Am J Physiol Cell Physiol,2008,295(1):C213-220.
[33] 龐衛(wèi)軍,衛(wèi)寧,熊燕等.PU.1轉(zhuǎn)錄因子調(diào)控前體脂肪細(xì)胞生脂的分子機制研究進展[J].中國細(xì)胞生物學(xué)學(xué)報,2011,33(12):1 394-1 400.
[34] Jin F,Li Y,Ren B,et al.PU.1and C/EBPαsynergistically program distinct response to NF-kappaB activation through establishing monocyte specific enhancers[J].Proc Natl Acad Sci USA,2011,108(13):5 290-5 295.
[35] Xu B,Gerin I,Miao H Z,et al.Multiple Roles for the Non-Coding RNA SRA in Regulation of Adipogenesis and Insulin Sensitivity[J].PLoS ONE,2010,5(12):e14199.
[36] Faghihi M A,Modarresi F,Khalil A M,et al.Expression of a noncoding RNA is elevated in Alzheimer's disease and drives rapid feed-forward regulation of beta-secretase[J].Nat Med,2008,14(7):723-730.
[37] Salmena L,Poliseno L,Tay Y,et al.A ceRNA Hypothesis:The Rosetta Stone of a Hidden RNA Language[J].Cell,2011,146(3):353-358.
[38] Cesana M,Cacchiarelli D,Legnini I,et al.A long noncoding RNA controls muscle differentiation by functioning as a competing endogenous RNA[J].Cell,2011,147(2):358-369.