莫正平,陳 榮,*,黃火清,左正宏
1. 廈門大學(xué)環(huán)境與生態(tài)學(xué)院, 近海海洋環(huán)境科學(xué)國家重點實驗室 廈門 361102 2. 廈門大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,廈門 361102
石油污染是各種海洋污染中發(fā)生頻率最高、分布面積最廣、危害程度最大的一種,被稱為海洋環(huán)境的超級殺手。我國也面臨著海上重大石油污染問題,國家海洋局公布的2012年海上環(huán)境災(zāi)害和突發(fā)事件中,蓬萊19-3油田等溢油事故造成事故海域海水中石油類含量超第三類海水水質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)。事故海域浮游生物群落受到溢油影響,多樣性指數(shù)低于背景值,嚴(yán)重破壞了海洋生態(tài)系統(tǒng)。污染物的危害主要體現(xiàn)為對生物體的毒害作用,因此,利用生物體毒性傷害狀況監(jiān)測其所處環(huán)境,可對污染總體效應(yīng)進(jìn)行直觀、綜合的評價[1]。石油水溶性成分(water-soluble fraction,WSF)進(jìn)入生物體內(nèi)后會發(fā)生生物轉(zhuǎn)化,一些成分被氧化代謝后形成各種中間代謝物,這些中間代謝物具有很高的生物活性,容易對生物體產(chǎn)生毒性。WSF對魚類的危害的最敏感階段主要是早期發(fā)育階段,如魚精子的活性、精卵的受精率、受精卵的孵化率、仔魚的存活率及仔魚生長發(fā)育過程等,具體表現(xiàn)為:抑制、畸變、致死等效應(yīng)[2]。相關(guān)研究表明暴露于多環(huán)芳烴等石油成分中會影響幼魚發(fā)育,從而導(dǎo)致幼魚死亡率急速上升[3]。
熱休克蛋白(Heat Shock Proteins,HSPs),是生物體在受到外界環(huán)境脅迫因子(如高溫、低溫、缺氧、病原入侵、污染和饑餓等)刺激下所產(chǎn)生的一類對細(xì)胞起保護(hù)和修復(fù)作用的特殊蛋白[4]。HSPs普遍存在于自然界原核、真核細(xì)胞中,分為4個家族——HSP90家族(分子量為83~90 kDa)、HSP70家族(分子量為66~78 kDa)、HSP60家族以及小分子量HSPs家族(12~43 kDa)。HSC70是HSP70家族中組成型的基因,主要參與蛋白質(zhì)的折疊、解折疊和組配[5],并且能被外界刺激所誘導(dǎo)[6]。一些研究表明,HSC70對不同污染物有著廣泛反應(yīng)性[7-11]。暴露在農(nóng)藥毒死蜱40 d后,鯉魚(CyprinuscarpioL.)肝臟等器官內(nèi)HSC70表達(dá)量顯著上升[12];重金屬銅和鎘則明顯抑制中國對蝦(Fenneropenaeuschinensis)HSC70基因表達(dá)[13];在24 h急性暴露后,搖蚊(Chironomustentans)幼蟲HSC70基因被壬基苯酚顯著誘導(dǎo)[14]。但石油污染對海洋魚類HSC70的影響鮮見報道。
褐菖鲉(Sebastiscusmarmoratus)分布于北太平洋西部,我國產(chǎn)于南海、東海、黃海和渤海,為暖溫性底層魚類。褐菖鲉對污染物相應(yīng)敏感,適合于作為石油類污染及其生化效應(yīng)尤其是低劑量效應(yīng)的監(jiān)測生物[15]。
環(huán)介導(dǎo)等溫擴(kuò)增(Loop-mediated isothermal amplification,LAMP)技術(shù)是Notomi等[16]建立的一種新穎的核酸擴(kuò)增技術(shù),具有高特異性、高效率、便捷等特點,在等溫條件下即可高效快速地完成擴(kuò)增反應(yīng),可用于現(xiàn)場的快速檢測。自2000年開發(fā)以來,LAMP技術(shù)已廣泛應(yīng)用于細(xì)菌、病毒、寄生蟲等病原體的定性檢測及動物胚胎性別的鑒定[17-19]。本文在國內(nèi)首次將LAMP技術(shù)引入海洋環(huán)境監(jiān)測領(lǐng)域,以褐菖鲉為實驗動物,建立LAMP技術(shù)檢測海洋魚類HSC70基因的方法,并利用該技術(shù)檢測不同濃度WSF暴露后褐菖鲉肝HSC70的表達(dá)量,從而為探究HSC70基因的生物功能及作為生物標(biāo)志物應(yīng)用于海洋石油污染監(jiān)測的可行性提供科學(xué)依據(jù)。
主要儀器:凈化工作臺(SW-CJ-1FD,蘇州凈化設(shè)備工程有限公司),熒光定量PCR儀(Mx3000p,吉泰生物科技有限公司),恒溫金屬浴(CHB-A4-9602,杭州博日科技有限公司),NanoDrop2000 Spectrophotometer(Thermo Fisher公司),LA-320C實時濁度儀(北京藍(lán)譜生物科技有限公司),PCR儀(Bioer Serves Life公司),5415R型冷凍離心機(jī)(Eppendorf公司)。
主要試劑:Bst DNA聚合酶(NEB公司),瓊脂糖(西班牙Biowest公司),MgCl2(Sigma公司),betaine(Bio Basic公司),T4 DNA 連接酶 (Fermentas公司),SYBR Green qPCR Mix (廈門鷺隆生物科技有限公司),dNTP和DS2000 DNA Marker (東盛生物公司),Tris和EDTA (上海生物工程公司),原油 (AM,中油,購自阿根廷),其它試劑均為國產(chǎn)分析純。
褐菖鲉購自廈門市第八市場,體長(11.7±1.2) cm,體重(24.79±5.8) g,雌雄不拘。先在清潔沙濾海水中暫養(yǎng)7 d,選取活力好的個體進(jìn)行污染實驗。實驗過程中如有個體死亡,減少缸內(nèi)水量確保每只個體占據(jù)水體積2 L。
1.3.1 石油水溶性成分污染實驗
WSF的制備:含油海水儲備母液的制備:將原油(中油,阿根廷)與清潔沙濾海水按體積比1:10 混合,電動低速攪拌機(jī)連續(xù)攪拌4 h,靜置16 h后通過虹吸法分離出下層水溶相作為儲備母液,置于4 ℃冰箱避光保存,使用前測定其油濃度。水溶相中油濃度的測定采用熒光分光光度法,以國家海洋環(huán)境監(jiān)測中心20-3 油為標(biāo)準(zhǔn),熒光測定波長Ex = 310 nm,Em = 365 nm。開始實驗時,根據(jù)需要用清潔沙濾海水把原油WSF母液稀釋到相應(yīng)濃度及相應(yīng)體積。
驗證實驗:實驗設(shè)對照組和20、60、180 μg·L-13個不同的濃度組。每組10 條魚,每組設(shè)兩個平行,對照組50 L沙濾海水不含原油WSF。用充氣機(jī)連續(xù)充氣,喂以人工餌料,每天采用靜態(tài)半置換法更新相應(yīng)濃度的含油海水溶液50%。飼養(yǎng)期間水溫17~19 ℃,鹽度22~24‰。暴露后的第1 d取肝臟,置于-80 ℃冰箱保存待用。
劑量—效應(yīng)實驗:實驗設(shè)對照組和25,50,75,100,125,150,175 μg·L-17個不同的濃度組。每濃度組10 條魚,每組設(shè)兩個平行,對照組50 L沙濾海水不含原油WSF。其余同驗證實驗。
1.3.2 褐菖鲉HSC70基因的克隆
1.3.2.1 簡并引物的設(shè)計:利用NCBI檢索親緣關(guān)系相近物種相應(yīng)的mRNA系列,用DNAMAN和Primer Premier 5.0軟件設(shè)計引物。具體引物序列如表1所示。
表1 HSC70基因的簡并引物Table 1 Degenerate primers of HSC70 gene
1.3.2.2 RNA提取及反轉(zhuǎn)錄:RNA 提取參照TaKaRa公司提供的RNAiso Plus 說明書進(jìn)行,得到的RNA加入適量DEPC水使其濃度均為1 000 ng·μL-1;反轉(zhuǎn)錄按照Thermo公司提供的ReverAid First Strand cDNA Synthesis Kit使用說明進(jìn)行,產(chǎn)物cDNA稀釋5倍,分裝保存于-20 ℃冰箱待用。
1.3.2.3 從模板cDNA中擴(kuò)增基因序列及T載體克隆
以反轉(zhuǎn)錄得到的cDNA為模板進(jìn)行PCR反應(yīng),產(chǎn)物純化后與T載體連接,轉(zhuǎn)化到大腸桿菌中,克隆得到的片段送至上海英駿公司測序。測序結(jié)果經(jīng)NCBI數(shù)據(jù)庫比對后,確認(rèn)為褐菖鲉相關(guān)基因的mRNA序列,上傳至NCBI基因數(shù)據(jù)庫。
1.3.3 實時熒光定量PCR及環(huán)介導(dǎo)等溫擴(kuò)增技術(shù)引物設(shè)計
根據(jù)已登錄GenBank的褐菖鲉HSC70(基因序列號:JX255673) cDNA序列設(shè)計real-time PCR引物,利用在線引物設(shè)計軟件(http://primerexplorer.jp/elamp4.0.0/index.html)設(shè)計LAMP 特異引物:FIP、BIP、F3 和B3,對應(yīng)的引物序列如表2 所示。
表2 熒光定量PCR和環(huán)介導(dǎo)等溫擴(kuò)增方法引物Table 2 Primers of real-time PCR and LAMP methods
1.3.4 環(huán)介導(dǎo)等溫擴(kuò)增定量方法
LAMP反應(yīng)體系:總體積25 μL,經(jīng)優(yōu)化后體系內(nèi)各試劑含量分別為:8 mmol·L-1Mg2+,0.4 mol·L-1Betaine,1.4 mmol·L-1dNTPs,2.4 μmol·L-1內(nèi)引物,0.4 μmol·L-1外引物,8 U Bst DNA聚合酶,1×ThermoPol Reaction Buffer,2 μL模板DNA,5 μL dd H2O。反應(yīng)溫度64 ℃。反應(yīng)過程可產(chǎn)生焦磷酸鎂乳白色沉淀,其含量與DNA含量成正比,因此利用濁度儀進(jìn)行定量檢測。
LAMP標(biāo)準(zhǔn)曲線的測定:以F3和B3(表2)為引物進(jìn)行PCR反應(yīng),瓊脂糖凝膠電泳回收PCR產(chǎn)物,即得到LAMP反應(yīng)的DNA標(biāo)準(zhǔn)品,利用NanoDrop2000分光光度計測定其DNA濃度,根據(jù)公式計算拷貝數(shù):
其中質(zhì)量——DNA標(biāo)準(zhǔn)品的質(zhì)量濃度,ng·μL-1;分子量——DNA標(biāo)準(zhǔn)品的平均分子量=堿基數(shù)×660道爾頓/堿基,g·mol-1;阿伏伽德羅常數(shù),copies·mol-1。
10倍稀釋標(biāo)準(zhǔn)品,配制25 μL體系標(biāo)準(zhǔn)系列。利用LA-320C 實時濁度儀測定。實時濁度儀每6 s自動測定一次濁度,以濁度達(dá)到0.1時作為陽性判定標(biāo)準(zhǔn),記錄反應(yīng)所需時間。
1.3.5 實時熒光定量PCR方法
配制10 μL real-time PCR反應(yīng)體系,以GAPDH為內(nèi)參,在熒光定量PCR儀上設(shè)置反應(yīng)程序:95 ℃熱啟動變性2 min,進(jìn)行40個循環(huán)(95 ℃變性20 s,63 ℃退火20 s,72 ℃延伸20 s,并在延伸階段之后設(shè)置讀值溫度83 ℃讀值20 s),收集FAM/Sybr 熒光信號。
LAMP檢測結(jié)果采用Microsoft Excel和SPSS 17.0軟件處理,real-time PCR的檢測結(jié)果用Microsoft Excel、Rest 軟件分析處理,采用單因素方差分析(One-Way ANOVA),并用Origin 8.0軟件繪圖。所有結(jié)果均用6個平行樣的平均值±標(biāo)準(zhǔn)誤差表示,實驗組與對照組間數(shù)據(jù)的比較采用單尾t檢驗分析顯著性差異。p<0.05為顯著差異;p<0.01 為極顯著差異。
LAMP標(biāo)準(zhǔn)系列在擴(kuò)增過程中,濁度值隨著時間的增加而增大,由圖1可以明顯觀察到標(biāo)準(zhǔn)系列濁度值到達(dá)閾值0.1所需的反應(yīng)時間隨著模板含量的增加而逐漸減少。曲線1~6分別表示含有模板濃度依次為 0、4.77×105、4.77×106、4.77×107、4.77×108、4.77×109copies·μL-1的標(biāo)準(zhǔn)系列擴(kuò)增變化趨勢。
圖1 HSC70擴(kuò)增曲線Fig. 1 Amplification curves of HSC70
以標(biāo)準(zhǔn)品拷貝數(shù)對數(shù)值為橫坐標(biāo),濁度儀反應(yīng)達(dá)到閾值所需時間為縱坐標(biāo),繪制LAMP標(biāo)準(zhǔn)曲線,如圖2所示。
圖2 環(huán)介導(dǎo)等溫擴(kuò)增定量方法反應(yīng)標(biāo)準(zhǔn)曲線Fig. 2 Standard curve of quantitative LAMP method
原油WSF暴露1 d后取褐菖鲉肝臟,用LAMP和real-time PCR技術(shù)同時測定肝HSC70 mRNA 的表達(dá)量,結(jié)果如圖3和圖4所示,LAMP檢測結(jié)果與real-time PCR檢測結(jié)果基本一致。由圖3可知,原油WSF暴露1 d后,褐菖鲉肝臟中HSC70 mRNA 表達(dá)量有明顯的上調(diào)趨勢,其中20 μg·L-1濃度組為顯著增加,為對照組的1.38倍,之后隨著WSF濃度升高,HSC70 mRNA表達(dá)量下降,60 μg·L-1濃度組和180 μg·L-1濃度組則沒有顯著性增加,只是略高于對照組。
圖3 WSF暴露1 d后褐菖鲉肝HSC70 mRNA 表達(dá)量的變化(LAMP)Fig. 3 The expression of HSC70 mRNA in the liver of S. marmoratus after exposure to WSF for 1 day (LAMP) (n=6; *p<0.05)
圖4 WSF暴露1 d后褐菖鲉肝HSC70 mRNA 表達(dá)量的變化(real-time PCR)Fig. 4 The expression of HSC70 mRNA in the liver of S. marmoratus after exposure to WSF for 1 day (real-time PCR) (n=6; * p<0.05)
WSF暴露5 d后,利用LAMP定量測定HSC mRNA水平,結(jié)果如圖5所示。褐菖鲉肝HSC70 mRNA 表達(dá)量在50 μg·L-1組即有顯著性增加,并在75 μg·L-1時達(dá)到最高值。而后HSC70 mRNA水平逐漸下降,除了100 μg·L-1濃度組仍表現(xiàn)為顯著性誘導(dǎo)外,其他濃度組雖然較對照組有所誘導(dǎo)但沒有顯著性差異。
圖5 WSF誘導(dǎo)5 d后褐菖鲉肝HSC70 mRNA 表達(dá)量的變化Fig. 5 The expression of HSC70 mRNA in the liver of S. marmoratus after exposure to WSF for 5 days (n=6; * p<0.05; ** p<0.01)
LAMP技術(shù)已經(jīng)在病毒、寄生蟲等定性檢測方面得到廣泛應(yīng)用,但在定量方面的應(yīng)用研究報道不多。有研究表明,LAMP技術(shù)已經(jīng)應(yīng)用于人類星狀病毒和某些微生物的定量檢測中[20-21],但在毒理學(xué)方面的應(yīng)用目前未見報道。在本研究中,褐菖鲉肝HSC70標(biāo)準(zhǔn)品拷貝數(shù)對數(shù)值與LAMP反應(yīng)達(dá)到閾值所需時間表現(xiàn)出良好的線性相關(guān)性,相關(guān)系數(shù)達(dá)到0.9985,表明利用LAMP技術(shù)進(jìn)行定量具有較高的精確性。同時利用LAMP技術(shù)和real-time PCR技術(shù)對WSF污染1 d后的褐菖鲉肝臟HSC70 mRNA的表達(dá)量進(jìn)行定量檢測,結(jié)果表明兩種定量技術(shù)測定結(jié)果基本一致,說明LAMP技術(shù)可以應(yīng)用于實際樣品檢測。與real-time PCR相比較,LAMP法具有無法比擬的簡便快速、高度靈敏特異、成本低廉等優(yōu)點,因此實際應(yīng)用中更具優(yōu)勢。
熱休克蛋白對污染物響應(yīng)敏感,以往關(guān)于HSC70對重金屬的響應(yīng)研究開展較多[22-24],近年逐漸關(guān)注有機(jī)污染物的影響,如烴類物質(zhì)可以顯著誘導(dǎo)生物體內(nèi)HSPs mRNA 的表達(dá)[25]。在本研究中,褐菖鲉暴露于50 μg·L-1WSF 5 d后,HSC70基因就被顯著誘導(dǎo),在75 μg·L-1下達(dá)到最大值,而后隨WSF濃度增加逐漸下降至對照組水平。與之變化趨勢類似的,以不同濃度的苯并(а)芘(0、5、50、500 μg·L-1)處理搖蚊幼蟲,5 μg·L-1的苯并(а)芘即可顯著誘導(dǎo)搖蚊幼蟲體內(nèi)HSC70 基因,隨著濃度升高,HSC70 mRNA表達(dá)量下降,但仍被顯著誘導(dǎo)[14]。此外,以不同濃度的敵百蟲處理近江牡蠣,發(fā)現(xiàn)極低濃度的敵百蟲(0.1 μg·L-1)仍然能夠誘導(dǎo)鰓中HSC70 基因顯著高表達(dá),表明HSC70 對敵百蟲的刺激反應(yīng)非常靈敏[26]。這都說明HSC70基因?qū)ξ廴疚锓磻?yīng)比較敏感,而且可引起HSC70顯著誘導(dǎo)的污染物濃度均較接近環(huán)境濃度,同時野外調(diào)查研究也發(fā)現(xiàn),長期的海洋重金屬污染仍然可以顯著誘導(dǎo)HSC70蛋白[27],因此HSC70有望作為生物標(biāo)志物用于監(jiān)測海洋環(huán)境污染[28]。
暴露在WSF環(huán)境下,褐菖鲉肝HSC70的誘導(dǎo)表達(dá)可以認(rèn)為是生物體克服不良環(huán)境和防止中毒的一種適應(yīng)性改變,而誘導(dǎo)量的下降則反映了生物體可能因污染的毒性作用而產(chǎn)生了中毒反應(yīng),導(dǎo)致生物體在高濃度暴露后調(diào)節(jié)能力下降[29-30]。雖然本研究中并未出現(xiàn)HSC70基因表達(dá)被抑制的效應(yīng),但可以看到較高濃度WSF污染下,HSC70表達(dá)量逐步下降至對照組水平。若進(jìn)一步增加污染物濃度或延長暴露時間,就有可能抑制HSC70基因的表達(dá)。
綜合以上分析,作為一種快速、新穎的核酸擴(kuò)增生物技術(shù),LAMP定量測定褐菖鲉肝HSC70基因結(jié)果可靠,在海洋石油污染監(jiān)測中應(yīng)用中具有可行性和優(yōu)越性。褐菖鲉肝HSC70對石油WSF污染響應(yīng)較為敏感,在短期暴露中低濃度下即被顯著誘導(dǎo),有望海洋石油污染早期預(yù)警分子。但這還需進(jìn)一步研究加以確定。
致謝:感謝廈門大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院王重剛教授及國家海洋局第三海洋研究所張玉生研究員等給予的大力支持和幫助。
參考文獻(xiàn):
[1] Lin Z F, Wang L S, Zhong P, et al. Advances on the monitoring approaches of organic pollutants in the marine environment [J]. Marine Environmental Science, 2006, 25(1): 88-93 (in Chinese)
[2] 王振, 鄭森林, 劉文華, 等. 原油水溶性成分對斜帶髭鯛受精卵及仔魚的急性毒性效應(yīng)[J]. 臺灣海峽, 2010, 29(3): 367-372
Wang Z, Zheng S L, Liu W H, et al. Acute toxic effects of the water accommodated fraction of crude oil onHapalogenysnitenszygotesand larvae [J]. Journal of Oceanography in Taiwan Strait, 2010, 29(3): 367-372 (in Chinese)
[3] Ingvarsdáttir A, Bj?rkblom C, Ravagnan E, et al. Effects of different concentrations of crude oil on first feeding larvae of Atlantic herring (Clupeaharengus) [J]. Journal of Marine Systems, 2012, 93: 69-76
[4] Daugaard M, Rohde M, J??ttel? M. The heat shock protein 70 family: Highly homologous proteins with overlapping and distinct functions [J]. FEBS letters, 2007, 581(19): 3702-3710
[5] 尚進(jìn)才, 王亞洲, 高巖, 等. 熱休克蛋白的研究進(jìn)展[J]. 醫(yī)學(xué)理論與實踐, 2010, 23(5): 527-529
[6] 劉志剛, 張其中, 張占會, 等. 近江牡蠣HSC70 基因?qū)θ茉寤【腥镜姆磻?yīng)[J]. 中國水產(chǎn)科學(xué), 2012, 19(3): 500-508
Liu Z G, Zhang Q Z, Zhang Z H, et al. mRNA expression of heat-shock cognate protein 70 gene (HSC70) in the oyster (Crassostreahongkongensis) in response toVibrioalginolyticuschallenge [J]. Journal of Fishery Sciences of China, 2012, 19(3): 500-508 (in Chinese)
[7] Jurgen F, Valerio M, Roberto R, et al. 2-DE proteomic analysis of HSP70 in molluscChameleagallina[J]. Fish & Shellfish Immunology, 2011, 30(2): 739-743
[8] Planelló R, Martine-Guitarte J L, Morcillo G. Effect of acute exposure to cadmium on the expression of heat-shock and hormone-nuclear receptor genes in the aquatic midgeChironomusriparius[J]. Science of the Total Environment, 2010, 408(7): 1598-1603
[9] Byth-Illing H A, Bornman L. Heat shock, with recovery, promotes protection ofNicotianatabacumduring subsequent exposure toRalstoniasolanacearum[J]. Cell Stress and Chaperones, 2013, 8: 1-11
[10] Planelló R, Servia M J, GómeSande P, et al. Transcriptional responses, metabolic activity and mouthpart deformities in natural populations of Chironomus riparius larvae exposed to environmental pollutants [J]. Environmental Toxicology, 2013, published online, DOI: 10.1002/tox.21893
[11] Radlowska M, Pempkowiak J. Stress-70 as indicator of heavy metals accumulation in blue musselMytilusedulis[J]. Environment International, 2002, 27(8): 605-608
[12] Xing H, Li S, Wang X, et al. Effects of atrazine and chlorpyrifos on the mRNA levels of HSP70 andHSC70 in the liver, brain, kidney and gill of common carp (CyprinuscarpioL.) [J]. Chemosphere, 2013, 90(3): 910-916
[13] Luan W, Li F, Zhang J, et al. Identification of a novel inducible cytosolic Hsp70 gene in Chinese shrimpFenneropenaeuschinensisand comparison of its expression with the cognateHSC70 under different stresses [J]. Cell Stress and Chaperones, 2010, 15(1): 83-93
[14] Lee S M, Lee S B, Park C H, et al. Expression of heat shock protein and hemoglobin genes inChironomustentans(Diptera, chironomidae) larvae exposed to various environmental pollutants: A potential biomarker of freshwater monitoring [J]. Chemosphere, 2006, 65(6): 1074-1081
[15] 鄭榕輝, 張玉生, 陳清福. 原油 WSF 對三種海洋魚類肝微粒體 EROD 活性的誘導(dǎo)和恢復(fù)的比較[J]. 海洋學(xué)報, 2010, 32(5): 60-66
Zheng R H, Zhang Y S, Chen Q F. A comparison of the hepatic microsomal EROD activity in three species of marine fish exposed to crude oil WSF [J]. Acta Oceanologica Sinica, 2010, 32(5): 60-66 (in Chinese)
[16] Notomi T, Okayama H, Masubuchi H, et al. Loop-mediated isothermal amplification of DNA [J]. Nucleic Acids Research, 2000, 28(12): e63
[17] Denschlag C, Vogel R F, Niessen L. Hyd5 gene-based detection of the major gushing-inducing Fusarium spp. in a loop-mediated isothermal amplification (LAMP) assay [J]. International Journal of Food Microbiology, 2012, 156(3): 189-196
[18] Wang X, Zhu J, Zhang Q, et al. Detection of enterovirus 71 using reverse transcription loop-mediated isothermal amplification (RT-LAMP) [J]. Journal of Virological Methods, 2012, 179(2): 330-334
[19] Thekisoe O M M, Rambritch N E, Nakao R, et al. Loop-mediated isothermal amplification (LAMP) assays for detection ofTheileriaparvainfections targeting the PIM and p150 genes [J]. International Journal for Parasitology, 2010, 40(1): 55-61
[20] Aoi Y, Hosogai M, Tsuneda S. Real-time quantitative LAMP (loop-mediated isothermal amplification of DNA) as a simple method for monitoring ammonia-oxidizing bacteria [J]. Journal of Biotechnology, 2006, 125(4): 484-491
[21] Wei H, Zeng J, Deng C, et al. A novel method of real-time reverse-transcription loop-mediated isothermal amplification developed for rapid and quantitative detection of human astrovirus [J]. Journal of Virological Methods, 2013, 188: 126-131
[22] Franzellitti S, Fabbri E. Cytoprotective responses in the Mediterranean mussel exposed to Hg2+and CH3Hg+[J]. Biochemical and Biophysical Research Communications, 2006, 351(3): 719-725
[23] Singer C, Zimmermann S, Sures B. Induction of heat shock proteins (hsp70) in the zebra mussel (Dreissenapolymorpha) following exposure to platinum group metals (platinum, palladium and rhodium): Comparison with lead and cadmium exposures [J]. Aquatic Toxicology, 2005, 75(1): 65-75
[24] Moraga D, Meistertzheim A L, Tanguy-Royer S, et al. Stress response in Cu2+and Cd2+exposed oysters (Crassostreagigas): An immunohistochemical approach [J]. Comparative Biochemistry and Physiology Part C: Toxicology & Pharmacology, 2005, 141(2): 151-156
[25] Boutet I, Tanguy A, Moraga D. Response of the Pacific oysterCrassostreagigasto hydrocarbon contamination under experimental conditions [J]. Gene, 2004, 329: 147-157
[26] 李春勇. 敵百蟲誘導(dǎo)近江牡蠣 (Crassostreahongkongensis)HSC70 基因表達(dá)的定量研究[D]. 濟(jì)南大學(xué)碩士學(xué)位論文, 2007
[27] Matranga V, Pinsino A, Randazzo D, et al. Long-term environmental exposure to metals (Cu, Cd, Pb, Zn) activates the immune cell stress response in the common European sea star (Asteriasrubens) [J]. Marine Environmental Research, 2012, 76: 122-127
[28] 張占會. 近江牡蠣 HSP70 基因及其對污染物的反應(yīng)[D]. 暨南大學(xué), 2010
[29] 高永剛, 李正炎. 壬基酚對櫛孔扇貝組織抗氧化酶活性的影響[J]. 中國海洋大學(xué)學(xué)報, 2006, 36: 135-138
Gao Y G, Li Z Y. Effect of nonylphenol on anti-oxidant enzymes ofClamysfarreri[J]. Periodical of Ocean University of China, 2006, 36: 135-138 (in Chinese)
[30] Celander M, Stegeman J J, F?rlin L. CYP1A1-, CYP2B-and CYP3A-like proteins in rainbow trout (Oncorhynchusmykiss) liver: CYP1A1-specific down-regulation after prolonged exposure to PCB [J]. Marine Environmental Research, 1996, 42(1): 283-286