李文超,張迎建,楊紅
(東南大學(xué)公共衛(wèi)生學(xué)院,環(huán)境醫(yī)學(xué)工程教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,江蘇 南京 210009)
肺纖維化是一組由多種病因引起的肺破壞性疾病,包括繼發(fā)因素導(dǎo)致的肺纖維化和特發(fā)性肺纖維化(idiopathic pulmonary fibrosis,IPF),其病理過(guò)程為當(dāng)肺內(nèi)纖維母細(xì)胞受到物理、化學(xué)或生物因素作用時(shí)分泌膠原蛋白修補(bǔ)肺間質(zhì)組織,進(jìn)而造成肺纖維化。肺纖維化的典型特征是肺間質(zhì)中膠原和細(xì)胞外基質(zhì)(extracellular matrix,ECM)過(guò)度沉積,且普遍伴有轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子-β(transforming growth factor-β,TGF-β)[1]及白細(xì)胞介素(IL)- 1、- 6等多種炎癥介質(zhì)的表達(dá)增加。環(huán)境、物理、藥物、個(gè)體差異與遺傳因素等均與肺纖維化發(fā)生有關(guān),但其具體機(jī)制仍不明確。由于微小RNA(microRNA,miRNA)參與細(xì)胞增殖、分化、凋亡等多種生物進(jìn)程,其表達(dá)異常會(huì)導(dǎo)致組織器官的癌變及纖維化等疾病[2- 4],因此miRNA對(duì)肺纖維化的基因表達(dá)調(diào)控日益成為研究的熱點(diǎn)。近年來(lái),一些研究結(jié)果顯示,miRNA與肺纖維化的發(fā)生發(fā)展密切相關(guān)[5]。在本文中作者對(duì)幾種miRNA在肺纖維化過(guò)程中所起作用的最新進(jìn)展作一綜述,以期為深入了解肺纖維化的發(fā)生機(jī)制及防治措施提供新思路。
miRNA表達(dá)譜是指通過(guò)構(gòu)建處于某一特定狀態(tài)下的細(xì)胞或組織的cDNA文庫(kù),收集cDNA序列片段,定性、定量分析其miRNA群體組成,從而描繪該特定細(xì)胞或組織在特定狀態(tài)下的miRNA表達(dá)種類和豐度信息,編制成的數(shù)據(jù)表就稱為miRNA表達(dá)譜。miRNA表達(dá)譜分析技術(shù)是基于核酸雜交和擴(kuò)增的原理。miRNA表達(dá)譜的研究主要分為3個(gè)階段,即miRNA的初步篩選、差異表達(dá)分析和調(diào)控機(jī)制研究。對(duì)于miRNA表達(dá)譜檢測(cè)技術(shù)有多種選擇。針對(duì)miRNA初步篩選的克隆測(cè)序類技術(shù),主要有454焦磷酸測(cè)序技術(shù)、Solexa合成測(cè)序技術(shù)和SOLiD連接測(cè)序技術(shù)[6]等;對(duì)于miRNA表達(dá)譜分析的高通量芯片技術(shù),包括固相微陣列芯片和Luminex- xMAP液態(tài)芯片技術(shù)[7];實(shí)時(shí)熒光定量PCR(qPCR)和經(jīng)典的Northern印跡等技術(shù)廣泛應(yīng)用于研究miRNA表達(dá)調(diào)控機(jī)制。對(duì)miRNA表達(dá)譜的研究方法還有引物入侵法[8]、橋連同位素標(biāo)記法[9]、納米金標(biāo)法[10]、單分子檢測(cè)法[11]等,由于這些技術(shù)缺乏一定的高通量特性、靈敏性或因其耗時(shí)長(zhǎng)、成本高,在科研應(yīng)用中有一定的局限性。
在正常生理和病理狀態(tài)下,了解miRNA的時(shí)空表達(dá)特性是全面理解miRNA功能的基礎(chǔ),miRNA表達(dá)譜分析和生物信息學(xué)方法預(yù)測(cè)靶基因?yàn)檎J(rèn)識(shí)miRNA的功能提供了新視角,以期通過(guò)整合調(diào)控miRNA表達(dá)的上游轉(zhuǎn)錄因子和miRNA的下游靶標(biāo),建立一個(gè)miRNA調(diào)控的包含細(xì)胞分化和代謝的遺傳通路和網(wǎng)絡(luò),闡明miRNA相關(guān)網(wǎng)絡(luò)的混亂會(huì)如何引起病損,最終為疾病的早期發(fā)現(xiàn)和診斷以及治療提供新的切入點(diǎn)。
研究發(fā)現(xiàn),miR- 29在不同的組織細(xì)胞中表達(dá)不同,尤其是在肺、腎臟和心臟組織細(xì)胞中表達(dá)量顯著增加[12],因其可抑制TGF-β1的致纖維化通路以及ECM的合成,并有抗纖維化的功效而備受關(guān)注[13]。Cushing等[14]發(fā)現(xiàn),miR- 29和其下游靶基因COL3A1、COL4A1的表達(dá)在博萊霉素誘導(dǎo)的肺間質(zhì)纖維化發(fā)展過(guò)程中呈負(fù)調(diào)節(jié)作用。miR- 29調(diào)節(jié)與纖維化相關(guān)的大多數(shù)基因,包括COL1A1、COL1A2、COL3A1等,在與纖維化相關(guān)的45個(gè)基因中有23個(gè)(51%)確定為miR- 29的目標(biāo)基因。TGF-β1可使所有的miR- 29家族成員表達(dá)下調(diào),下調(diào)的miR- 29可能導(dǎo)致TGF-β1的控制基因脫抑制。miR- 29作為TGF-β1的下游基因,通過(guò)調(diào)節(jié)TGF-β1的信號(hào)強(qiáng)度調(diào)節(jié)與纖維化相關(guān)的大多數(shù)基因表達(dá),進(jìn)而影響膠原蛋白以及層粘連蛋白的產(chǎn)生。因此,miR- 29是肺纖維化的一個(gè)主要調(diào)節(jié)相關(guān)基因。
Jun 等[15]發(fā)現(xiàn),miR- 29是Smad3的一個(gè)下游靶基因,在博萊霉素誘導(dǎo)的小鼠肺間質(zhì)纖維化過(guò)程中受TGF-β/Smad信號(hào)的負(fù)調(diào)控。同時(shí),miR- 29的過(guò)度表達(dá)可能負(fù)反饋調(diào)節(jié)TGF-β和結(jié)締組織生長(zhǎng)因子(connective tissue growth factor,CTGF)的表達(dá)以及Smad3信號(hào)通路。將睡美人(sleeping beauty,SB)介導(dǎo)的miR- 29基因轉(zhuǎn)移到正常的和病變的肺組織中,可以對(duì)肺間質(zhì)纖維化起到預(yù)防和治療的效果。因此,對(duì)miR- 29的進(jìn)一步研究可能為治療肺間質(zhì)纖維化提供靶向藥物和新的治療方向。
miR- 21被發(fā)現(xiàn)與肺纖維化過(guò)程中肌成纖維細(xì)胞分化有關(guān)。Liu等[16]的研究顯示,在博來(lái)霉素誘導(dǎo)肺纖維化實(shí)驗(yàn)小鼠和IPF患者肺組織中,miR- 21主要集中于肌成纖維細(xì)胞中且表達(dá)上調(diào)。研究人員推測(cè),miR- 21可能通過(guò)抑制Smad蛋白、Smad7的表達(dá)從而實(shí)現(xiàn)對(duì)纖維化的調(diào)控。給予miR- 21反義核苷酸探針可以明顯降低實(shí)驗(yàn)小鼠的纖維化程度,并且α- 平滑肌激動(dòng)蛋白(α- smooth muscleactin,α- SMA,肌成纖維細(xì)胞特異性標(biāo)志)表達(dá)不增加。TGF-β1可以增加初級(jí)肺纖維母細(xì)胞內(nèi)的miR- 21表達(dá),miR- 21水平升高進(jìn)而可以增強(qiáng)纖維母細(xì)胞內(nèi)TGF-β1的促纖維化作用,反之,將miR- 21進(jìn)行基因沉默后可削弱其促纖維化能力,這說(shuō)明miR- 21在誘導(dǎo)肌成纖維細(xì)胞分化中起重要作用。
miR- 155因在成纖維細(xì)胞中抑制角質(zhì)細(xì)胞生長(zhǎng)因子(keratinocyte growth factor,FGF7/KGF)的表達(dá)并增加其遷移而引起關(guān)注。Martin等[17]首次發(fā)現(xiàn)miR- 155的纖維化相關(guān)指標(biāo)是Ⅰ型血管緊張素Ⅱ受體(AT1受體)。另有研究發(fā)現(xiàn),AT1在博來(lái)霉素處理的小鼠與IPF患者的肺間隙成纖維細(xì)胞中表達(dá)增加[18],其水平的增加可導(dǎo)致成纖維細(xì)胞中膠原蛋白合成的活性增強(qiáng),進(jìn)而影響肺纖維化進(jìn)程[19]。
Pottier 等[20]研究發(fā)現(xiàn),miR- 155的表達(dá)上調(diào)可由腫瘤壞死因子-α(tumor necrosis factor-α,TNF-α)和IL- 1β引起,而其下調(diào)可由TGF-β引起。該研究顯示,FGF7/KGF是miR- 155的一個(gè)目標(biāo)。miR- 155可與FGF7/KGF的3′- UTR結(jié)合,下調(diào)FGF7/KGF。同時(shí),miR- 155在特發(fā)性肺纖維化患者的肺組織中的表達(dá)上調(diào)[21]。這些研究結(jié)果提示miR- 155在上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化機(jī)制的調(diào)節(jié)中起重要作用。
對(duì)miR- 149的研究表明,miR- 149在細(xì)胞增殖、凋亡及炎癥反應(yīng)中可能發(fā)揮重要作用。miR- 149在舌鱗癌以及腎透明細(xì)胞癌中表達(dá)降低[22- 23],在鼻咽癌組織中表達(dá)增加[24]。在對(duì)鼻咽癌組織的研究發(fā)現(xiàn),miR- 149通過(guò)抑制E- 鈣黏蛋白的表達(dá)參與了上皮細(xì)胞向間質(zhì)細(xì)胞的轉(zhuǎn)化(epithelial- to- messenchymal,EMT)過(guò)程[25],而EMT是肺纖維化早期的一個(gè)重要體現(xiàn),因此miR149有可能導(dǎo)致肺纖維化。Wang等[26]在研究前體miRNA的常見基因突變與罹患煤工塵肺風(fēng)險(xiǎn)的關(guān)系時(shí)發(fā)現(xiàn),位于miR- 149前體的rs2292832單核苷酸多態(tài)性位點(diǎn)TT基因型可明顯增加煤工塵肺的患病風(fēng)險(xiǎn)。王莎莎等[27]對(duì)一期、二期、三期煤工塵肺病人共27例進(jìn)行了全基因組miRNA測(cè)序、靶基因預(yù)測(cè)及信號(hào)通路分析等,發(fā)現(xiàn)在所有病例組變化方向一致的miRNA中,miR- 149表達(dá)下調(diào)。在此基礎(chǔ)上,制備矽塵誘導(dǎo)肺纖維化小鼠模型,檢測(cè)到肺組織內(nèi)miR- 149表達(dá)下調(diào)、IL- 6表達(dá)上調(diào),肺泡壁中有大量炎癥細(xì)胞浸潤(rùn),肺泡結(jié)構(gòu)略有增厚;體外實(shí)驗(yàn)中,經(jīng)矽塵處理的呼吸系統(tǒng)上皮細(xì)胞中同樣也檢測(cè)到miR- 149的表達(dá)降低以及IL- 6的表達(dá)增多,而上皮細(xì)胞是矽塵引起肺纖維化早期的主要效應(yīng)細(xì)胞之一。這說(shuō)明SiO2粉塵可導(dǎo)致小鼠肺組織產(chǎn)生炎癥反應(yīng),miR- 149的下調(diào)及IL- 6的上調(diào)可能參與了肺部炎癥、肺纖維化等疾病的發(fā)生過(guò)程。這可能為進(jìn)一步揭示肺纖維化的發(fā)病機(jī)制提供理論依據(jù)。
Let- 7家族是近年來(lái)研究較多的一類miRNA,最早在研究線蟲時(shí)被發(fā)現(xiàn),參與調(diào)控細(xì)胞分化和增殖時(shí)序。其中,let- 7d位于肺泡上皮細(xì)胞內(nèi),與肺纖維化密切相關(guān)。Marshall等[19]研究結(jié)果顯示,在肺纖維化尤其是IPF病人中,let- 7d的表達(dá)顯著降低。let- 7d表達(dá)減少可導(dǎo)致膠原蛋白沉積增加,肺泡間隔增厚。在體外試驗(yàn)中[28],let- 7d與TGF-β1關(guān)系密切,TGF-β1可抑制let- 7d的表達(dá)。let- 7d與肺泡內(nèi)皮細(xì)胞間質(zhì)HMGA2(high mobility group AT- hook 2)、ACTA2及COLIA1的表達(dá)呈負(fù)相關(guān),并使內(nèi)皮標(biāo)志物CDH1、TJP1表達(dá)降低。其中,HMGA2是let- 7d的一個(gè)已知靶位點(diǎn)[29],同時(shí)是EMT的調(diào)節(jié)器[30]。而在體內(nèi)試驗(yàn)中[28],抑制let- 7d的表達(dá)可使肺泡壁增厚,而將miRNA高效阻斷劑通過(guò)氣管給藥從而抑制let- 7d的表達(dá),結(jié)果導(dǎo)致了EMT的發(fā)生,進(jìn)而引起肺纖維化。由此可見,抑制let- 7d的表達(dá)可能是肺纖維化中細(xì)胞表型顯著變化的一個(gè)關(guān)鍵調(diào)控點(diǎn),可能為肺纖維化尤其是IPF的治療提供新思路。
Gregory等[31]發(fā)現(xiàn)miR- 200家族通過(guò)E- 鈣黏蛋白的轉(zhuǎn)錄抑制因子ZEB1和SIP1靶向調(diào)節(jié)EMT,增強(qiáng)其表達(dá)可阻止TGF-β誘導(dǎo)EMT的發(fā)生。Yang等[32]報(bào)道,miR- 200家族在博萊霉素致肺纖維化小鼠的肺部(主要為miR- 200a、miR- 200b和miR- 200c)和IPF患者的肺內(nèi)(主要為miR- 200a、miR- 200c)表達(dá)顯著下調(diào)。miR- 200家族在肺泡上皮細(xì)胞中表達(dá)量高于肺成纖維細(xì)胞,并且可以通過(guò)抑制由TGF-β1誘發(fā)的肺泡上皮細(xì)胞的EMT,從而起到抗纖維化作用。由此,miR- 200家族在肺纖維化發(fā)生過(guò)程中起重要作用,增強(qiáng)其在肺部的表達(dá)有可能成為一種新的治療肺纖維化疾病的方法。
研究發(fā)現(xiàn),在囊腫性肺纖維化病人的肺內(nèi)上皮細(xì)胞中,與非囊腫性肺纖維化病人的肺組織相比較,miR- 126的表達(dá)水平降低。miR- 126可調(diào)節(jié)TLR2/4信號(hào)通路的TOM1基因的表達(dá),而其表達(dá)下調(diào)可導(dǎo)致TOM1基因的表達(dá)增加[33- 34]。這表示miR- 126可能與肺纖維化的發(fā)生相關(guān)。
同時(shí),IPF患者的肺成纖維細(xì)胞中miR- 17~92簇的表達(dá)下調(diào)[35],miR- 154表達(dá)上調(diào)[36]。
miRNA轉(zhuǎn)錄后可調(diào)控mRNA,這可能調(diào)控著至少1/3的人類編碼蛋白基因[37- 39]。較多的研究表明,miRNA在肺纖維化中起到調(diào)控作用,尤其是miR- 29、miR- 21、miR- 149等。 miR- 29可引發(fā)特定傳導(dǎo)信號(hào),導(dǎo)致膠原蛋白以及層粘連蛋白的產(chǎn)生,從而使ECM的沉積增加或減少;miR- 21和miR- 155可調(diào)節(jié)肺成纖維細(xì)胞的分化和增殖;miR- 149則是通過(guò)參與免疫因子調(diào)控進(jìn)而影響肺纖維化進(jìn)程。這些miRNAs的異常表達(dá)可以影響肺纖維化疾病的發(fā)生。因此,可以選擇特定的miRNA干預(yù)其靶基因所調(diào)控的疾病的發(fā)生發(fā)展。理論上,對(duì)于miRNA表達(dá)增加的疾病,給予反義核苷酸(如LNA反義寡核苷酸)阻斷miRNA的活性[40],或者通過(guò)干預(yù)相關(guān)活化的信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路(如巨噬細(xì)胞NF- κB信號(hào)通路)[41],從而恢復(fù)其正常調(diào)節(jié)水平;而對(duì)于miRNA表達(dá)減少所致的疾病,通過(guò)構(gòu)建相關(guān)表達(dá)載體,將含有目標(biāo)miRNA導(dǎo)入體內(nèi)重建其表達(dá),以期達(dá)到治療疾病的目的。
隨著對(duì)miRNA及其靶mRNA研究的深入,將更有利于完善對(duì) miRNAs在肺組織中的生理調(diào)節(jié)、疾病發(fā)生和發(fā)展中作用的理解,為疾病的預(yù)防[42]、臨床診斷及治療提供新的依據(jù)和方向。
miRNA自從被發(fā)現(xiàn)以來(lái),其相關(guān)調(diào)控疾病機(jī)制的研究取得了巨大進(jìn)展。由于檢測(cè)miRNA表達(dá)方法的技術(shù)平臺(tái)不斷發(fā)展,這為研究miRNA引發(fā)肺纖維化的機(jī)制、早期診斷以及相關(guān)治療開發(fā)了新視角。盡管對(duì)miRNA的研究越來(lái)越多,但目前對(duì)肺纖維化中miRNA的表達(dá)調(diào)控具體機(jī)制了解甚少。同時(shí),將miRNA應(yīng)用于臨床診斷和治療仍有一些亟待解決的問(wèn)題,如:肺纖維化特別是IPF的發(fā)病機(jī)理并不明確,miRNA在其中發(fā)揮的作用還有待進(jìn)一步實(shí)驗(yàn)證實(shí);miRNA差異表達(dá)的調(diào)節(jié)網(wǎng)絡(luò)尚未清楚;將miRNA導(dǎo)入體內(nèi)的最佳途徑以及如何使其發(fā)揮作用等。相信在不久的將來(lái),miRNA作為特異、靈敏的新型生物標(biāo)記物,會(huì)為研究肺纖維化的發(fā)生發(fā)展提供新思路,為肺纖維化的診斷、治療和預(yù)后判斷開發(fā)新視野。
[1] DU- BOIS R M.Strategies for treating idiopathic pulmonary fibrosis[J].Nat Rev Drug Discov,2010,9(2):129- 140.
[2] FABIAN M R,SONENBERG N,FILIPOWICZ W.Regulation of mRNA translation and stability by microRNAs[J].Annu Rev Biochem,2010,79(1):351- 379.
[3] 徐曉峰,周懷君.miRNA30c的研究進(jìn)展[J].東南大學(xué)學(xué)報(bào):醫(yī)學(xué)版,2011,30(3):514- 518.
[4] 張佳菊,馮毅,王莉娜.循環(huán)miRNA與心血管疾病研究進(jìn)展[J].東南大學(xué)學(xué)報(bào):醫(yī)學(xué)版,2013,32(4):461- 465.
[5] VENTURA A,JACKS T.MicroRNAs and cancer:short RNAs go a long way[J].Cell,2009,136(4):586- 591.
[6] MOROZOVA O,MARRA M A.Applications of next- generation sequencing technologies in functional genomics[J].Genomics,2008,92(5):255- 264.
[7] 劉潛,付潔,宋海峰.微小RNA分析技術(shù)研究進(jìn)展[J].生物技術(shù)通訊,2013:24(5):710- 714.
[8] ALLAWI H T,DAHLBERG J E,OLSON S,et al.Quantitation of microRNAs using a modified invader assay[J].RNA,2004,10(7):1153- 1161.
[9] 景花,宋沁馨,周國(guó)華.MicroRNA定量檢測(cè)方法的研究進(jìn)展[J].遺傳,2010,32(1):31- 40.
[10] FANG S,LEE H J,WARK A W,et al.Attomole microarray detection of microRNAs by nanoparticle- amplified SPR imaging measurements of surface polyadenylation reactions[J].J Am Chem Soc,2006,128(43):14044- 14046.
[11] NEELY L A,PATEL S,GARVER J,et al.A single- molecule method for the quantitation of microRNA gene expression[J].Nat Methods,2006,3(1):41- 46.
[12] van ROOIJ E,SUTHERLAND L B,THATCHER J E,et al.Dysregulation of microRNAs after myocardial infarction reveals a role of miR- 29 in cardiac fibrosis[J].Proc Natl Acad Sci USA,2008,105(35):13027- 13032.
[13] HE Y,HUANG C,LIN X,et al.MicroRNA- 29 family,a crucial therapeutic target for fibrosis diseases[J].Biochimie,2013,95(7):1355- 1359.
[14] CUSHING L,KUANG P P,QIAN J,et al.MiR- 29 is a major regulator of genes associated with pulmonary fibrosis[J].Am J Respir Cell Mol Biol,2010,45(2):287- 294.
[15] JUN X,XIAO M M,XIAO R H,et al.MiR- 29 inhibits bleomycin- induced pulmonary fibrosis in mice[J].Mol Ther,2012,20(6):1251- 1260.
[16] LIU G,FRIGGERI A,YANG Y,et al.MiR- 21 mediates fibrogenic activation of pulmonary fibroblasts and lung fibrosis[J].J Exp Med,2010,207(8):1589- 1597.
[17] MARTIN M M,LEE E J,BUCKENBERGER J A,et al.MicroRNA- 155 regulates human angiotensin Ⅱ type 1 receptor expression in fibroblasts[J].J Biol Chem,2006,281(27):18277- 18284.
[18] KONIGSHOFF M,WILHELM A,JAHN A,et al.The angiotensin II receptor 2 is expressed and mediates angiotensin Ⅱ signaling in lung fibrosis[J].Am J Respir Cell Mol Biol,2007,37(6):640- 650.
[19] MARSHALL R P,GOHLKE P,CHAMBERS R C,et al.Angiotensin II and the fibroproliferative response to acute lung injury[J].Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol,2004,286(1):L156- 164.
[20] POTTIER N,MAURIN T,CHEVALIER B,et al.Identification of keratinocyte growth factor as a target of microRNA- 155 in lung fibroblasts∶implication in epithelial- mesenchymal interactions[J].PLoS One,2009,4(8):e6718.
[21] KUSUM V P,JADRANKA M,NAFTALI K.MicroRNAs in idiopathic pulmonary fibrosis[J].Transl Res,2011,157(4):191- 199.
[22] WONG T S,LIU X B,WONG B Y,et al.Mature miR- 184 as potential oncogenic microRNA of squamous cell carcinoma of tongue[J].Clin Cancer Res,2008,14(9):2588- 2592.
[23] LIU H,BRANNON A R,REDDY A R,et al.Identifying mRNA targets of microRNA dysregulated in cancer∶with application to clear cell renal cell carcinoma[J].BMC Syst Biol,2010,4:51.
[24] LUO Z,ZHANG L,LI Z,et al.MiR- 149 promotes epithelial- mesenchymal transition and invasion in nasopharyngeal carcinoma cells[J].Zhong Nan Da Xue Xue Bao Yi Xue Ban,2011,36(7):604- 609.
[25] LUO Z,ZHANG L,LI Z,et al.An in silico analysis of dynamic changes in microRNA expression profiles in stepwise development of nasopharyngeal carcinoma[J].BMC Med Genomics,2012,5:3.
[26] WANG M L,YE Y,QIAN H Y,et al.Common genetic variants in pre- microRNAs are associated with risk of coal workers’pneumoconiosis[J].J Hum Genet,2010,55(1):13- 17.
[27] 王莎莎.miR- 149調(diào)控矽塵誘導(dǎo)肺纖維化的初步研究[D].江蘇:南京醫(yī)科大學(xué),2012.
[28] PANDIT K V,CORCORAN D,YOUSEF H,et al.Inhibition and role of let- 7d in idiopathic pulmonary fibrosis[J].Am J Respir Crit Care Med,2010,182(2):220- 229.
[29] MAYR C,HEMANN M T,BARTEL D P.Disrupting the pairing between let- 7 and HMGA2 enhances oncogenic transformation[J].Science,2007,315(5818):1576- 1579.
[30] THUAULT S,VALCOURT U,PETERSEN M,et al.Transforming growth factor- beta employs HMGA2 to elicit epithelial- mesenchymal transition[J].J Cell Biol,2006,174(2):175- 183.
[31] GREGORY P A,BERT A G,PATERSON E L,et al.The miR- 200 family and miR- 205 regulate epithelial to mesenchymal transition by targeting ZEB1 and SIP1[J].Nat Cell Biol,2008,10(5):593- 601.
[32] YANG S,BANERJEE S,de FREITAS A,et al.Participation of miR- 200 in pulmonary fibrosis[J].Am J Pathol,2012,180(2):484- 493.
[33] CARUSO P,MACLEAN M R,KHANIN R,et al.Dynamic changes in lung microRNA profiles during the development of pulmonary hy- pertension due to chronic hypoxia and monocrotalin[J].Arterioscler Thromb Vasc Biol,2010,30(4):716- 723.
[34] OGLESBY I K,BRAY I M,CHOTIRMALL S H,et al.MiR- 126 is down- regulated in cystic fibrosis airw ay epithelial cells and regulates TOM1 expression[J].J Immunol,2010,184(4):1702- 1709.
[35] DAKHLALLAH D,BATTE K,WANG Y,et al.Epigenetic regulation of miR- 17~92 contributes to the pathogenesis of pulmonary fibrosis[J].Am J Respir Crit Care Med,2013,187(4):397- 405.
[36] MILOSEVIC J,PANDIT K,MAGISTER M,et al.Profibrotic role of miR- 154 in pulmonary fibrosis[J].Am J Respir Cell Mol Biol,2012,47(6):879- 887.
[37] CALIN G A,CROCE C M.MicroRNA- cancer connection:the beginning of a new tale[J].Cancer Res,2006,66(15):7390- 7394.
[38] KENT O A,MENDELL J T.A small piece in the cancer puzzle:microRNAs as tumor suppressors and oncogenes[J].Oncogene,2006,25(46):6188- 6196.
[39] PFEFFER S,VOINNET O.Viruses,microRNAs and cancer[J].Oncogene,2006,25(46):6211- 6219.
[40] BADER A G,BROWN D,WINKLER M.The promise of microRNA replacement therapy[J].Cancer Res,2010,70(18):7027- 7030.
[41] ZHANG X Y,SHIMURA S,MASUDA T,et al.Antisense oligonucleotides to NF- kappa B improve survival in bleomycin- induced pneumopathy of the mouse[J].Am J Respir Crit Care Med,2000,162(4 Pt 1):1561- 1568.
[42] 張迎建,李文超,楊紅.microRNA在預(yù)防醫(yī)學(xué)中的研究進(jìn)展[J].東南大學(xué)學(xué)報(bào):醫(yī)學(xué)版,2013,32(5):606- 611.