張明杰
(廣東紫金正天藥業(yè)有限公司,河源 517000)
重組酵母產人IFN-α2a與LL-37融合蛋白的工藝優(yōu)化
張明杰
(廣東紫金正天藥業(yè)有限公司,河源 517000)
通過單因素試驗探索重組酵母P. pastoris GS115LI產人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的最佳條件。結果顯示,重組酵母菌產蛋白酶的最佳表達條件是利用BMMY為誘導培養(yǎng)基,以接種量OD600=5.5、溫度26℃、pH6.0、誘導劑(甲醇)為每隔24 h添加1.0%、振蕩速度為200 r/min條件下連續(xù)誘導144 h。在最佳培養(yǎng)條件下,發(fā)酵液中的LL-37最高抗菌活性達27.9 mm。與初始的發(fā)酵條件相比,人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的產量提高了32.29%。
干擾素α2a LL-37 工藝
英國科學家Isaacs和Lindenmann于1957年發(fā)現一種能干擾病毒感染的細胞因子,命名為干擾素[1]。隨著人類研究的深入,不斷發(fā)現了許多新的干擾素分子。目前,人類在哺乳動物中發(fā)現的干擾素共有10個家族,其中人干擾素有7個家族。按其功能和作用方式,可將人干擾素細分為I型、II型和III型。I型包括α、β、ε、τ、ω、κ,具有抗病毒和抗腫瘤的功能;II 型包括γ,具有調節(jié)免疫的功能[2];III型為干擾素樣蛋白,功能與I型類似,但受體不同[3]。人IFN-α2a是由165個氨基酸殘基構成,具有防治病毒性疾病[4]和惡性腫瘤[5]的功能。LL-37是目前在人體內發(fā)現的抗菌肽Cathelicedin家族中唯一的成員,對革蘭氏陽性菌和陰性菌均具有較廣譜的抗性[6]。除此之外,LL-37還具有免疫調節(jié)作用,可趨化單核細胞、T淋巴細胞、中性粒細胞和肥大細胞等[7]。當人體受到病原微生物、炎癥或創(chuàng)傷刺激,LL-37的表達水平就會上升[8]。動物試驗表明,LL-37可明顯降低銅綠假單胞菌感染小鼠的死亡率[2]。
將人LL-37基因與IFN-α2a融合表達,形成同時具有抗病毒、抗腫瘤和抗菌的三重功效的新功能蛋白,在一些特殊的臨床治療中存在潛在的市場需求。本課題組前期的工作實現了在畢赤酵母(Pichia pastoris)GS115表達三功能的人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白。在進入工業(yè)化生產之前,有必要建立所構建的基因工程菌工藝條件,并對產品的應用
性能進行驗證。本研究通過單因素試驗旨在探索重組酵母P. pastoris GS115LI產人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的最佳條件。
1.1 材料
1.1.1 試驗菌株 P. pastoris GS115LI,表達人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白。大腸桿菌(Escherichia coli)ATCC 25922,用于檢測融合蛋白的抗菌活性。
1.1.2 培養(yǎng)基
1.1.2.1 YPD培養(yǎng)基 酵母提取物10 g/L,蛋白胨20 g/L,葡萄糖20 g/L,121℃滅菌30 min。
1.1.2.2 BMGY培養(yǎng)基 見參考文獻[10]。
1.1.2.3 BMMY培養(yǎng)基 同BMGY培養(yǎng)基,僅將其中的甘油10 mL換為甲醇5 mL。
1.1.2.4 初始培養(yǎng)基 種子培養(yǎng):保藏的菌種先經YPD活化,后將入BMGY培養(yǎng)基,接種量2%,后振蕩培養(yǎng)。培養(yǎng)條件:溫度28℃,轉速200 r/min,培養(yǎng)時間24 h。
誘導培養(yǎng):種子培養(yǎng)液離心去培養(yǎng)液,后接種入BMMY培養(yǎng)液,使酵母OD600值達6.0,在溫度28℃與轉速150 r/min下振蕩培養(yǎng),每24 h補充甲醇0.5%(體積比)誘導表達[11],重復誘導5次。
1.2 方法
1.2.1 單因素發(fā)酵試驗
1.2.1.1 誘導時長對P. pastoris GS115LI產人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的影響 按出發(fā)條件進行誘導,誘導過程中每12 h取樣分析發(fā)酵液抗菌活性,直至檢測的抗菌活性不再上升。
1.2.1.2 接種量對P. pastoris GS115LI產人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的影響 按前述確定的最佳誘導時長,分別調節(jié)接種量以OD600計為3.5、4.0、4.5、5.0、5.5、6.0、6.5和7.0,其它條件不變。誘導完成后取發(fā)酵液分析抗菌活性。
1.2.1.3 溫度對P. pastoris GS115LI產人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的影響 在出發(fā)條件的基礎上,按前述確定的最佳誘導時間與接種量,改變誘導溫度,分別置于24℃、26℃、28℃、30℃和32℃下振蕩培養(yǎng)。培養(yǎng)完后取樣檢測產物的抗菌活性。
1.2.1.4 溶氧對P. pastoris GS115LI產人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的影響 通過改變搖床的轉速探索溶氧對重組P. pastoris GS115LI產人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的影響。分別選擇搖床轉速為120、160、240和280 r/min進行誘導培養(yǎng),其它條件參照前述選擇的最佳條件。誘導結束后取發(fā)酵液分析抗菌活性。
1.2.1.5 誘導劑(甲醇)添加量對P. pastoris GS115-LI產人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的影響 通過改變誘導劑甲醇的添加量分別對體積比為0.6%、0.8%、1.0%、1.2%、1.4%和1.6%的菌株進行誘導表達。其它誘導條件為前述所確定的最佳條件。誘導結束后取發(fā)酵液分析抗菌活性。
1.2.1.6 pH對P. pastoris GS115LI產人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的影響 為了探索pH對P. pastoris GS115LI產人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的影響,分別選擇pH為5.0、5.5、6.0、6.5、7.0、7.5和8.0進行試驗。其它發(fā)酵條件為前述優(yōu)化的最佳條件。誘導結束后取發(fā)酵液分析抗菌活性。
1.2.2 驗證試驗 在上述確定的最適培養(yǎng)和誘導表達條件下,重復試驗3次,進行驗證。
1.2.3 發(fā)酵液中人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的抗菌活性分析 培養(yǎng)液中LL-37的活性測定參照文獻[5]。用E. coli ATCC 25922作為檢測菌種,用雙層瓊脂糖打孔法測定。底層培養(yǎng)基上打直徑3 mm的圓孔,每孔加10 μL發(fā)酵液,37℃孵化3 h后,在底層上覆蓋一層營養(yǎng)瓊脂,37℃繼續(xù)培養(yǎng)20 h,測量無菌生長的透明圈直徑。
2.1 誘導時長的影響
誘導時長對P. pastoris GS115LI產人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的影響結果(圖1)顯示,誘導開始后的前24 h,發(fā)酵液中檢測出的以抗菌活性表示的融合蛋白產量上升較慢,這可能與菌體本身處于環(huán)境適應期的延遲期有關;而后產量呈直線上升,至第132 h,此后產量緩慢上升,至144 h達到最大值25.3 mm;此后24 h的誘導期內,融合蛋白產量出現輕微下降,可能是由于宿主老化后,產品有所降解引起。根據以上試驗結果,確定144 h為最佳誘導時長。
圖1 誘導時長對P. pastoris GS115LI產人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的影響
2.2 接種量的影響
接種量對P. pastoris GS115LI產人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的影響結果(圖2)顯示,隨著接種量自OD600=3.5上升,在其它條件不變的情況下,發(fā)酵液中以LL-37抗菌活性表示的人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白逐漸上升,至接種量達到OD600=5.5后,達到最大值約26.0 mm;之后,呈現逐漸下降的趨勢。這表明,當OD600<5.5,發(fā)酵液中的酵母濃度太少,導致表達能力低。在OD600=5.5時達到飽和。之后再升高酵母濃度,可能由于營養(yǎng)或溶氧供應受限,從而導致產物的合成能力不升反降。在此,選擇接種量為OD600≈5.5作為最佳的接種條件。
圖2 接種量對P. pastoris GS115LI產人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的影響
2.3 溫度的影響
溫度對P. pastoris GS115LI產人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的影響結果(圖3)顯示,在溫度為26℃時,以抗菌活性表示的人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白產量最高,可達26.5 mm以上。溫度低于26℃,產量會有所下降,可能與低溫下酵母代謝活性受影響有關。溫度高于26℃,產量也出現下降,可能與在溫度高時,酵母自身代謝加快后,衰老同樣加快的原因。綜合上述情況,選擇26℃作為誘導時的最佳溫度條件。
圖3 溫度對P. pastoris GS115LI產人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的影響
2.4 溶氧的影響
在搖瓶階段,溶氧難以直接測定,故只能采用以搖床振蕩轉速為依據來進行探索。溶氧對P. pastoris GS115LI產人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的影響結果(圖4)顯示,在振蕩轉速低于200 r/min時,由于溶氧處于受限狀態(tài),故以抗菌活性表示的人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白產量較低。振蕩轉速高于200 r/min后,產量不再繼續(xù)上升,表明此階段溶氧已經到達飽和。綜合考慮效應與成本,選擇200 r/min作為誘導表達時最佳的溶氧控制條件。
圖4 溶氧對P. pastoris GS115LI產人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的影響
2.5 誘導劑(甲醇)添加量的影響
誘導劑(甲醇)添加量對P. pastoris GS115LI產
人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的影響結果(圖5)顯示,甲醇濃度添加量為1.0%(以體積比計,下同)時,以抗菌活性計的人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白表達量達最大,約為27 mm。低于1.0%,可能是由于誘導的強度不夠,表達速度下降,致使產物產量下降。高于1.0%,可能是由于誘導強度太大,超出了宿主菌的代謝負荷,反而產生負作用,從而也使表達量下降。綜合考慮選擇1.0%為誘導的最佳甲醇用量。
圖5 甲醇添加量對P. pastoris GS115LI產人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的影響
2.6 pH的影響
pH對P. pastoris GS115LI產人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的影響結果(圖6)顯示,試驗條件下,pH6.0時人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的表達量最高,達到27.5 mm以上。pH主要通過影響細胞膜及基質的帶電狀態(tài),從而影響膜對基質的通透性,再傳遞到對產物產量的影響。酵母的最適生長pH為偏酸性的環(huán)境,此處產物最佳表達量所需的pH6.0,恰好可在不影響宿主本身生長條件下實現產物的最佳表達,故確定pH6.0為最佳條件。
圖6 pH對P. pastoris GS115LI產人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的影響
2.7 最佳工作條件驗證
根據前面的試驗結果,確定P. pastoris GS115LI產人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的最佳工藝條件為利用BMMY培養(yǎng)基,接種量以OD600計為5.5、溫度26℃、pH6.0、誘導劑(甲醇)為每隔24 h添加1%、振蕩速度為200 r/min條件下連續(xù)誘導144 h。在該工藝條件下重復驗證3次,得到結果(以LL-37抗菌活性計)分別為27.8、28.1和27.9 mm,平均值為27.93±0.12(mm)。該結果與出發(fā)培養(yǎng)條件下的表達量(21.1 mm,參考1.2.1.1誘導時間120 h時的結果)相比,產物產量提高了32.39%。
LL-37作為人源性抗菌肽,已經在臨床上獲得廣泛的應用。由于其分子小,與其它蛋白多肽或蛋白類藥物融合表達時,不易對與其融合蛋白的功能產生影響,因此將LL-37與其它蛋白融合表達生產多功能藥物成為可能[13]。例如,將LL-37與人酸性成纖維細胞生長因子融合表達形成的新蛋白,既具有酸性成纖維細胞生長因子促進傷口愈合的功能,又具有防止傷口感染的功能[14]。受此思路的啟發(fā),將LL-37與人IFN-α2a融合表達,構建出了同時具有抗癌、抗病毒和抗菌的三效藥物。發(fā)酵工藝是將構建的蛋白轉化為產物的關鍵。
從單因素試驗的各因素變化所引起的人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白表達水平的波動情況分析,接種量、時間和pH是3個較為敏感的量,其它屬于次敏感量,這可能預示著這些因素對表達產量的關鍵程度。接種量主要影響發(fā)酵時延遲期的長短和菌體與營養(yǎng)之間的協調關系。接種量小,延遲期長,產物合成量低;接種量大,菌體濃度高,會引起營養(yǎng)競爭[15]。pH不僅影響宿主菌對外源基因的表達,同時也可能對產物的穩(wěn)定性及活性產生影響[16]。適宜的培養(yǎng)條件,有利于提高細胞的相對活性和延長細胞的高相對活性狀態(tài),從而實現融合蛋白產量的最大化累積[17,18]。各因素之間的影響還需要通過正交試驗或序貫試驗設計,利用統(tǒng)計學的原理進行詳細分析。
試驗中為了操作的方便,僅以LL-37的抗菌
活性進行表征。經過在菌種構建階段的試驗確認,LL-37的抗菌活性檢測與IFN-α2a干擾素活性檢測結果是相一致的,表明二者既實現了融合,而且融合蛋白還同時保留了二者各自獨立時的活性(結果發(fā)表在本課題組另一篇文章中)。
本試驗所有數據均是建立在搖瓶的試驗基礎之上的。眾所周知,搖瓶并不能真正代替發(fā)酵罐的生產,因此本試驗的結果還只能是發(fā)酵生產的參考。在達到生產水平之前,還需通過小型發(fā)酵罐進一步優(yōu)化工藝參數,再逐步放大至生產規(guī)模。
本研究確定了重組畢赤酵母P. pastoris GS115LI產人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的最佳工藝條件為利用BMMY培養(yǎng)基、接種量以OD600=5.5、溫度26℃、pH6.0、誘導劑(甲醇)為每隔24 h添加1%、振蕩速度為200 r/min條件下連續(xù)誘導144 h。與出發(fā)條件相比,產量提高了32.29%。
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(責任編輯 馬鑫)
The Process Optimization of Pichia pastoris GS115LI for Producing Fused Protein of LL-37 and IFN-α2a
Zhang Mingjie
(Pharmaceutical Co.,Ltd. Guangdong Zijing Zhengtian,Heyuan 517000)
With experiments of single factor, the optimal process of recombinant P. pastoris GS115LI for producing fused protein of LL-37 and IFN-α2a were using BMMY as inducing medium, inoculum as OD600=5.5, temperature as 26℃, pH6.0, inducing chemical(methanol)adding amount as 1.0% every 24 h, incubating shaking speed as 200 r/min, and inducing time as 144 h. Under those optimal conditions, the 27.9 mm of LL-37 antimicrobial activity could be gotten. Compared with the original conditions, the productivity of fused protein of LL-37 and IFN-α2a was increased as 32.29%.
Interferon-α2a LL-37 Fermentation process
2014-03-18
廣東省重大科技專項(2011A080502011)
張明杰,教授,研究方向:微生物工程技術;E-mail:mingjiezh@126.com