張 炯 綜述 劉志紅 審校
腎臟損傷后的再生現(xiàn)象廣泛存在于人類和其他物種[1-3]。人類腎小管損傷后可發(fā)生的古老修復(fù)方式在幾乎所有物種中存在,該方式即完全的細(xì)胞再生修復(fù)[4]。這種修復(fù)的特征是細(xì)胞再生,死亡的腎小管上皮細(xì)胞被新生細(xì)胞所替代,腎小管結(jié)構(gòu)和功能恢復(fù)[4]。除細(xì)胞再生修復(fù)外,還存在一種再生修復(fù)方式為腎單位整體再生,然后者僅存于魚類和其他低等級(jí)物種中[4-6]。
器官發(fā)育過程中,復(fù)雜的組織結(jié)構(gòu)可出現(xiàn)多種分類細(xì)胞和其細(xì)胞功能分化[6]。不同種類細(xì)胞特有的獨(dú)自再生方式對(duì)維持組織器官整體協(xié)調(diào)性起到重要作用[6,7]。能夠參與所有成熟組織器官再生過程的細(xì)胞被稱為干細(xì)胞(可分化為多種不同細(xì)胞亞型)或祖細(xì)胞(可向特異靶細(xì)胞定向分化)[6-8]。所有多細(xì)胞器官中的干細(xì)胞均有兩個(gè)重要特點(diǎn):一是自我更新復(fù)制,即通過細(xì)胞周期進(jìn)行增生復(fù)制,產(chǎn)生與其有相同生物學(xué)特性的子代;二是能停留在未成熟分化階段,為后續(xù)細(xì)胞分化作準(zhǔn)備[6-8]。與干細(xì)胞類似,祖細(xì)胞可進(jìn)一步分化為一種或多種特定的細(xì)胞系,但是不具備或僅具備非常有限的自我增生復(fù)制能力[6-8]。一系列研究證實(shí)腎臟干細(xì)胞和祖細(xì)胞在腎臟發(fā)育和再生過程中起到非常重要作用[6-9]。我們將匯總近年關(guān)于腎臟干細(xì)胞和祖細(xì)胞在腎臟發(fā)育進(jìn)化和組織再生中的最新研究,了解這類細(xì)胞是如何保守地遺傳在人類和哺乳類動(dòng)物腎臟中的;在腎臟復(fù)雜的形成過程及損傷后修復(fù)過程中,祖細(xì)胞系統(tǒng)又是如何調(diào)控參與了細(xì)胞、組織再生過程的。
本綜述涉及相關(guān)名詞解釋見表1。
表1 名詞解釋
了解腎臟的發(fā)育進(jìn)化過程,尤其是哺乳類動(dòng)物腎臟在外界環(huán)境干預(yù)情況下是如何進(jìn)化、發(fā)展至今天的復(fù)雜結(jié)構(gòu),對(duì)于研究腎臟再生學(xué)非常重要。最早的原始的脊椎動(dòng)物生活在與自生細(xì)胞外液成分相同的含鹽水環(huán)境中,因此這些生物能夠自由攝取周圍海水而不影響體內(nèi)環(huán)境的組成成分。早期的脊椎動(dòng)物魚類在進(jìn)化過程中產(chǎn)生了排泄類器官,其主要作用是維持水生環(huán)境中滲透壓的變化,并發(fā)育形成了現(xiàn)在稱之為腎小球的一組血管叢,能夠?yàn)V過出自身血液中過多的水分[10]。
早在五億年前,即有現(xiàn)在認(rèn)為的功能性腎臟的原始魚類,諸如七鰓鰻和盲鰻出現(xiàn)了早期腎單位結(jié)構(gòu),表現(xiàn)為單個(gè)巨大的腎單位排泄系統(tǒng)——前腎,濾過體腔中溶于水的代謝廢物和多于水分 (圖1A)。隨后,更高級(jí)魚類,如硬骨魚和鯊魚分支動(dòng)物腎單位就復(fù)雜許多。此類生物幼年階段,早期腎單位仍保留低等生物特點(diǎn),但是成年后,原來(lái)的前腎腎單位完全被一個(gè)新的高級(jí)排泄系統(tǒng)所替代——中腎(圖1B)[9,10]。
大約三億四千萬(wàn)年前,部分魚類向兩棲類動(dòng)物進(jìn)化。兩棲類動(dòng)物憑借肺臟可離開水環(huán)境生存,但是又必須回到水中繁殖,因?yàn)槠渎丫拖耵~類的卵一樣柔軟,且必須保持在潮濕環(huán)境中; 類似高級(jí)魚類,兩棲動(dòng)物首先發(fā)育一組前腎腎單位,隨后經(jīng)過變態(tài)發(fā)育,成蟲階段被中腎所替代(圖1)。同期,一類能夠完全生活在陸地上的動(dòng)物,即昆蟲登上了物種進(jìn)化史舞臺(tái)[10]。這類小體積的動(dòng)物意味著它們僅需要一個(gè)簡(jiǎn)單的排泄器官。的確,昆蟲類動(dòng)物尿液的產(chǎn)生依靠主動(dòng)轉(zhuǎn)運(yùn)方式,而不是壓力下驅(qū)動(dòng)的超濾和選擇性的重吸收[11]。
從大約3億年前到6 500萬(wàn)年前,是生命現(xiàn)象大規(guī)模從水中向陸地轉(zhuǎn)移時(shí)期,爬行類動(dòng)物是此期的主角,而促成此類物種繁衍的就是蛋的出現(xiàn)。與卵不同,蛋具有堅(jiān)硬的外殼和內(nèi)含羊水的生命支持系統(tǒng),從而讓胚胎生活在類似水的環(huán)境中[10]。爬行類動(dòng)物腎臟早期發(fā)育兼具魚類和兩棲類動(dòng)物特點(diǎn),即胚胎期腎臟發(fā)育經(jīng)歷了前腎和中腎;從孵育出生到個(gè)體成熟,這類早期腎臟逐漸退化,并被一個(gè)全新的更高級(jí)排泄器官替代——后腎(圖1C)。
原始的哺乳類動(dòng)物和鳥類的出現(xiàn)時(shí)間大約是1 700萬(wàn)年前[10]。哺乳類、鳥類和爬行類動(dòng)物統(tǒng)屬羊膜動(dòng)物。鳥類也需要具有堅(jiān)硬外殼的蛋來(lái)保護(hù)和孕育子代;哺乳類則更進(jìn)一步進(jìn)化,具有更高級(jí)的孕育系統(tǒng)即子宮,保證胚胎在體內(nèi)近似原始物種一樣的水環(huán)境中發(fā)育[10]。鳥類和哺乳類動(dòng)物一樣,不論是蛋,還是子宮,胚胎發(fā)育期先后經(jīng)歷前腎和中腎,隨后這些器官退化,取而代之的是發(fā)育成熟的后腎(圖1C)。值得注意的是,有別于爬行類動(dòng)物,鳥類和哺乳類動(dòng)物均進(jìn)化修飾了后腎成熟腎單位結(jié)構(gòu),產(chǎn)生了一種新的位于近端腎小管和遠(yuǎn)端腎小管之間的發(fā)夾環(huán),稱亨利氏袢。亨利氏袢的形成產(chǎn)生了尿液循環(huán)過程中的一個(gè)滲透梯度變化,以便于集合管對(duì)水的重吸收和尿液濃縮[10]。
圖1 腎臟的發(fā)育進(jìn)化[10]
盡管不斷變化的外界環(huán)境和脊椎動(dòng)物體態(tài)差異,導(dǎo)致了不同物種間腎臟形態(tài)和內(nèi)部組織結(jié)構(gòu)有所不同,但是腎臟的基本結(jié)構(gòu)——腎單位的發(fā)育進(jìn)化過程在不同物種間是相似的、保守的、逐步高級(jí)的。
從魚類到哺乳類動(dòng)物,成熟腎臟的發(fā)育均起源于中胚層。中腎的間葉質(zhì)成分通過與上皮組分中腎管相互作用,介導(dǎo)間葉細(xì)胞向胚芽頂端聚集,并向上皮細(xì)胞分化[9]。這些早期的上皮細(xì)胞逐漸形成一個(gè)球形結(jié)構(gòu),即腎小囊;該小囊后續(xù)發(fā)生內(nèi)陷、延長(zhǎng)生長(zhǎng),形成S形小體。血管向該小體的近端部分浸潤(rùn)生長(zhǎng),形成后來(lái)的腎小球絲球體;與此同時(shí),S形小體的中部和遠(yuǎn)端與尿囊胚芽部相連,形成一個(gè)單一的、連續(xù)的,由上皮細(xì)胞組成的管腔。這些位于S形小體中部和遠(yuǎn)端的連續(xù)分布細(xì)胞開始表達(dá)腎小管上皮細(xì)胞特征性蛋白[12]。腎小管各個(gè)節(jié)段進(jìn)行分段分化、發(fā)育、延伸,最終形成了連續(xù)的近端腎小管和遠(yuǎn)端腎小管[12]。尿胚芽另一端上皮細(xì)胞不斷增生、分化,形成了連接腎單位并插入輸尿管的集合管[10]。在整個(gè)腎臟發(fā)育階段,上述過程不斷重復(fù),因此早期腎單位分布于腎臟中心,新的腎單位逐漸向外周拓展。魚類、兩棲類和爬行類動(dòng)物,在幼年中腎或后腎發(fā)育成熟后,后續(xù)生命過程中還會(huì)不斷有新的上述腎單位產(chǎn)生,以適應(yīng)成年動(dòng)物體重增加和損傷后修復(fù)的需要[10]。
值得注意的是,鳥類和哺乳類動(dòng)物,類似上述的后腎發(fā)育終止在剛出生的時(shí)候,圍產(chǎn)期不再有新生腎單位,而是獨(dú)特的亨利氏袢出現(xiàn)并發(fā)育成熟[13]。新生的哺乳類動(dòng)物腎臟中,沒有腎臟外髓和內(nèi)髓的明顯分界,也沒有髓袢升支細(xì)段。出生后,伴隨著腎乳頭的發(fā)生,亨利氏袢的升支細(xì)段迅速發(fā)育,連接著S3段的近端腎小管和靠近腎小球血管極的遠(yuǎn)端腎小管。上述大量腎單位的進(jìn)一步發(fā)育使腎臟出現(xiàn)明顯的皮質(zhì)和髓質(zhì)分區(qū)[13]。
除了亨利氏袢在腎臟發(fā)育后期出現(xiàn)外,腎單位的基本組織結(jié)構(gòu)發(fā)育貫穿著整個(gè)物種進(jìn)化過程。低等生物不論在胚胎時(shí)期,還是成年以后,廣泛存在腎單位整體再生現(xiàn)象。高等級(jí)物種再生現(xiàn)象只發(fā)生在腎單位的節(jié)段部位,屬于細(xì)胞水平再生。近年來(lái),越來(lái)越多的研究證實(shí),腎臟干細(xì)胞和祖細(xì)胞在腎臟進(jìn)化、發(fā)育和細(xì)胞再生過程中扮演著重要角色[10]。接下來(lái)將進(jìn)一步詳細(xì)闡述不同物種,尤其是哺乳類動(dòng)物腎臟再生特點(diǎn),及祖細(xì)胞系統(tǒng)在腎單位組織再生中的作用。
魚類魚類腎臟生發(fā)于造血組織,不是一個(gè)完全獨(dú)立的器官,腎單位周圍是造血系統(tǒng)的細(xì)胞外基質(zhì)和間質(zhì)成分[10]。這些來(lái)源于造血系統(tǒng)的間質(zhì)可在腎臟受到損傷后再生新的腎單位[5,14]。Diep等[14]通過腎移植技術(shù)研究了成年斑馬魚腎單位是如何再生的,研究者通過慶大霉素注射造成腎單位損傷模型,隨后,將帶有熒光標(biāo)記的供腎從頭側(cè)植入,新植入的腎臟可新生腎單位,并100%替代原有受損的腎臟區(qū)域。魚類腎臟形成早期過程表達(dá)多種轉(zhuǎn)錄因子,比如Lhx1/Lim1和Wt1。該作者發(fā)現(xiàn)lhx1a:EGFP+(Enhanced green fluorescent protein)細(xì)胞具有自我更新能力,提示這類細(xì)胞可能是斑馬魚腎臟的干細(xì)胞。上述研究證實(shí)了斑馬魚腎單位再生初期出現(xiàn)多個(gè)聚集的lhx1a:EGFP+細(xì)胞聚合體,呈簇的lhx1a:EGFP+細(xì)胞聚合體則成功地再生了33%腎單位,而單個(gè)的lhx1a:EGFP+細(xì)胞聚合體則不能新生完整腎單位。該結(jié)果表明,成年斑馬魚新生腎單位需要多種腎臟祖細(xì)胞參與進(jìn)行一系列不同的分化過程[12,14]。Diep等[14]通過對(duì)斑馬魚轉(zhuǎn)基因模型進(jìn)一步研究還發(fā)現(xiàn),lhx1a:EGFP+細(xì)胞聚合體是由最初的3~4個(gè)lhx1a:EGFP+細(xì)胞合并生長(zhǎng),并最終分化為成熟的腎小球囊,表達(dá)wt1b。因?yàn)閣t1b+細(xì)胞仍具有進(jìn)一步分化的能力,但無(wú)自我增生、更新復(fù)制功能,所以認(rèn)為這類細(xì)胞是腎臟再生過程中的祖細(xì)胞。當(dāng)斑馬魚成年后,lhx1a+細(xì)胞則僅限于遠(yuǎn)端腎小管(圖2A)[10],而wt1b+細(xì)胞則分布于腎小球包囊、尿極和近端腎小管。另有研究發(fā)現(xiàn),當(dāng)斑馬魚足細(xì)胞損傷后,wt1b+細(xì)胞開始向包囊血管極聚集,提示其可能參與腎小球足細(xì)胞損傷后的再生修復(fù)過程[15,16]。所以,上述研究表明,成年魚類(斑馬魚)腎臟具有完全的腎單位再生功能,成熟腎臟中的干細(xì)胞和祖細(xì)胞參與該過程[14-17]。
昆蟲類果蠅的腎臟類似于脊椎動(dòng)物的腎小管,無(wú)腎小球結(jié)構(gòu)[18,19]。果蠅的腎小管系統(tǒng)來(lái)源于生發(fā)層小管,包括兩條上皮管狀結(jié)構(gòu):一條較長(zhǎng)的較早發(fā)育小管,連接著血液淋巴管中腸;一條較短的發(fā)育后期小管,于后腸伴行[18,19]。這種小管有兩類細(xì)胞組成,一類是腎小管上皮細(xì)胞,另一類是臨近中胚葉來(lái)源的細(xì)胞。這些細(xì)胞相互作用,通過間充質(zhì)向上皮轉(zhuǎn)分化促進(jìn)上皮組織結(jié)構(gòu)形成。該系統(tǒng)中的每部分小管分為四段:起始段、移行段、主段和近段(也稱為低位小管和輸尿管)[18,19]。Singh等[19]科學(xué)家通過基因標(biāo)記細(xì)胞系示蹤技術(shù)發(fā)現(xiàn),在果蠅低位小管與輸尿管連接處散在分布一類具有再生、分化潛能的細(xì)胞,能分化出該物種成熟腎臟中所有類型的細(xì)胞(圖2B)[10,19]。
兩棲類盡管尚無(wú)兩棲類動(dòng)物腎臟干細(xì)胞或祖細(xì)胞方面的深入研究報(bào)道,但是兩棲類動(dòng)物有著與魚類相似的基本腎臟組織結(jié)構(gòu)[10]。兩棲類動(dòng)物腎臟已經(jīng)進(jìn)化為一個(gè)獨(dú)立的排泄器官,造血系統(tǒng)組織不再散在分布于腎臟間充質(zhì)組織,而是分布在腎臟外周生發(fā)區(qū)域[10]。兩棲類動(dòng)物在整個(gè)生命過程中均可再生完整的腎單位,該現(xiàn)象甚至可在已經(jīng)變態(tài)發(fā)育成熟的青蛙的中腎組織中觀察到[20]。
爬行類爬行類動(dòng)物首次出現(xiàn)了后腎組織結(jié)構(gòu),但無(wú)明顯的皮質(zhì)和髓質(zhì)分區(qū)[10]。成年蓍草多刺蜥蜴[21]和綠海龜[22]等爬行類動(dòng)物后腎中仍可見與魚類和兩棲類完全一樣的腎單位再生方式,新生腎單位來(lái)源于成熟腎臟外周生發(fā)區(qū)。蓍草多刺蜥蜴成年后可不斷產(chǎn)生新的腎單位以適應(yīng)體型增長(zhǎng)的需要[21]。這些發(fā)現(xiàn)說明,爬行類動(dòng)物遺傳保留了魚類所具有的持續(xù)腎單位再生方式。有意思的是,當(dāng)腎臟進(jìn)化至爬行類動(dòng)物后腎階段,此種再生現(xiàn)象仍存在。
鳥類鳥類后腎組織有一個(gè)顯著特點(diǎn)是出現(xiàn)了亨利氏袢,使腎單位呈現(xiàn)放射樣分布;集合管和血管叢圍繞、伴行在亨利氏袢周圍,共同構(gòu)成了鳥類腎臟的髓質(zhì)區(qū),腎臟皮髓區(qū)分界明顯[10]。鳥類出生后腎臟新生腎單位的能力很快喪失,成熟發(fā)育的鳥類后腎組織不在具有完整腎單位再生能力,取而代之的是局部細(xì)胞水平再生[23]。
哺乳類成年哺乳類動(dòng)物腎臟均為后腎組織,特點(diǎn)是由亨利氏袢和集合管形成了深髓質(zhì)區(qū),使腎臟結(jié)構(gòu)類似金字塔或椎體結(jié)構(gòu);與其他物種還有顯著區(qū)別的是,哺乳類動(dòng)物腎單位數(shù)目一定,基本上與動(dòng)物自身體重呈比例[10]。哺乳類動(dòng)物大約在出生前后即停止新生腎單位,但是遺傳保留著由腎臟干細(xì)胞和祖細(xì)胞參與的細(xì)胞水平的再生,起到維持局部組織結(jié)構(gòu)和損傷后修復(fù)的功能。
圖2 各類物種腎臟祖細(xì)胞的分布[10,14,19,36-39]
嚙齒類最近越來(lái)越多研究證明,嚙齒類動(dòng)物腎臟存在祖細(xì)胞。Kobayashi等[24]通過建立同源轉(zhuǎn)錄因子Six2基因標(biāo)記細(xì)胞系示蹤技術(shù)發(fā)現(xiàn),腎臟祖細(xì)胞群位于后腎間充質(zhì)組織,在腎臟胚胎發(fā)育過程中可新生腎小囊、S形腎小體,并分化出皮質(zhì)腎單位多種上皮類細(xì)胞,包括足細(xì)胞、近端和遠(yuǎn)端腎小管上皮細(xì)胞、連接管上皮細(xì)胞,但不參與形成間質(zhì)細(xì)胞、血管細(xì)胞和集合管細(xì)胞。Barker等[25]發(fā)現(xiàn)富亮氨酸重復(fù)序列G蛋白偶聯(lián)受體5(Lgr5)是S形小體期腎臟祖細(xì)胞的一個(gè)標(biāo)志物,該類祖細(xì)胞主要參與腎小管升支粗段,遠(yuǎn)端小管回旋部及連接管的形成。雖然一些科學(xué)家推斷成熟腎臟祖細(xì)胞位于腎間質(zhì)或集合管區(qū)域[26-28]。但是,相關(guān)的該區(qū)域細(xì)胞系示蹤研究并不能證實(shí)。相反,新近的研究發(fā)現(xiàn),當(dāng)小鼠腎單位受損后,相應(yīng)的受損細(xì)胞可被腎小管或腎單位其他部位上皮細(xì)胞進(jìn)行局部再生修復(fù)[29],這些參與修復(fù)過程的細(xì)胞被證實(shí)是腎臟上皮祖細(xì)胞[29-34],因?yàn)檫@些細(xì)胞表達(dá)干細(xì)胞標(biāo)志物[31,33],有克隆和再生能力[29-34]。Humphreys等[35]研究發(fā)現(xiàn),腎小管上皮細(xì)胞在缺血損傷后的再生過程中,祖細(xì)胞表現(xiàn)的是一種隨機(jī)分布的增生和再生分化,而非在某一固定區(qū)域出現(xiàn)聚集的祖細(xì)胞亞群。另外,Langworthy等利用活化T細(xì)胞核因子1蛋白(NFATc1)建立了兩個(gè)基因標(biāo)記小鼠模型(NFATc1-P2-LacZ和NFATc1-P2-Cre),同樣應(yīng)用細(xì)胞系示蹤技術(shù)證實(shí)小鼠腎臟中有一類表現(xiàn)為對(duì)細(xì)胞死亡具有很強(qiáng)抵抗性的細(xì)胞亞群,可新生腎小管上皮細(xì)胞[34]。因此,目前認(rèn)為,腎小管內(nèi)存在祖細(xì)胞亞群,在腎臟受損過程中不易死亡,可進(jìn)行自我更新復(fù)制,并進(jìn)一步分化,恢復(fù)腎小管上皮細(xì)胞數(shù)目,修復(fù)腎小管組織結(jié)構(gòu)和功能。
其他關(guān)于嚙齒類動(dòng)物祖細(xì)胞的研究還有,Appel等[36]觀察到有一類祖細(xì)胞亞群分布于腎小球包囊壁上的壁層細(xì)胞中,認(rèn)為其可能是足細(xì)胞特異的祖細(xì)胞,細(xì)胞系示蹤技術(shù)顯示,位于包囊壁的部分壁層上皮細(xì)胞亞群可自我增生復(fù)制,并從尿極到血管極逐步分化,最終轉(zhuǎn)變?yōu)樾律淖慵?xì)胞。除小鼠外,在成年大鼠腎小球中也發(fā)現(xiàn)了腎臟祖細(xì)胞存在[37]。Benigni等[37]在包囊上分別發(fā)現(xiàn)了三類細(xì)胞亞群:幼稚的祖細(xì)胞、轉(zhuǎn)分化中的祖細(xì)胞(即同時(shí)表達(dá)祖細(xì)胞和足細(xì)胞標(biāo)記物)及壁層足細(xì)胞(僅表達(dá)足細(xì)胞標(biāo)記物)。當(dāng)然,也有研究發(fā)現(xiàn)位于包囊的壁層上皮祖細(xì)胞亞群,向足細(xì)胞分化過程中,是從非血管極以外的區(qū)域向絲球體移行的[38,39]。
通過嚙齒類動(dòng)物一系列基因標(biāo)記細(xì)胞系示蹤技術(shù)研究,可以得出結(jié)論,哺乳類動(dòng)物腎臟存在不同種類的祖細(xì)胞亞群,這些細(xì)胞分布于腎小管和包囊壁,參與了腎臟發(fā)育過程和組織損傷后腎小管上皮細(xì)胞、腎小球內(nèi)上皮細(xì)胞再生過程(圖2C)。
圖3 人類腎臟發(fā)育過程中的祖細(xì)胞系統(tǒng)[10,41-46]
人類研究者利用干細(xì)胞標(biāo)記物CD133[40]和后腎間充質(zhì)細(xì)胞標(biāo)記物CD24發(fā)現(xiàn)并證實(shí)人類腎臟存在祖細(xì)胞[41],并發(fā)現(xiàn)這些細(xì)胞可分化為腎小球內(nèi)和腎小管上皮細(xì)胞(圖2C,圖3)[10,42-45]。目前研究表明,CD133+/CD24+細(xì)胞是腎小管上皮細(xì)胞和足細(xì)胞共同的祖細(xì)胞[46]。在胚胎期,這類腎臟祖細(xì)胞位于腎小囊和S形小體[46],保留了可同時(shí)向腎小球和腎小管上皮細(xì)胞分化的能力[44]。在接下來(lái)的腎小球和近端腎小管發(fā)育及最終形成腎皮質(zhì)區(qū)過程中起重要作用。在妊娠第8~9周,由大量間充質(zhì)成分構(gòu)成的非成熟后腎期,腎臟祖細(xì)胞量達(dá)最富集狀態(tài);在隨后的發(fā)育過程中,該類細(xì)胞數(shù)量又逐漸減少,最終僅占成年人類腎臟固有細(xì)胞數(shù)量的2%左右[46]。腎臟發(fā)育成熟后,該類細(xì)胞分布于包囊壁[42,43]和散在于延長(zhǎng)后的腎小管中(圖2C,圖3)[10,44,45]。能分別向腎小球上皮細(xì)胞和腎小管上皮細(xì)胞分化的祖細(xì)胞位于腎小球尿極處,即腎小球上皮和腎小管上皮結(jié)合的部位(圖3)[10,43]。
作為足細(xì)胞的祖細(xì)胞,僅存在于包囊壁上,同時(shí)表達(dá)足細(xì)胞和祖細(xì)胞相關(guān)的分化標(biāo)志物,此類細(xì)胞只能再生足細(xì)胞(圖3)[10,45]。而腎小管上皮細(xì)胞的祖細(xì)胞存在于皮質(zhì)小管中,包括S3節(jié)段區(qū)域,共表達(dá)CD133、CD24和近端腎小管上皮細(xì)胞標(biāo)志物,也只能負(fù)責(zé)再生新的腎小管上皮細(xì)胞(圖3)[10,45,46]。目前,有方法將屬于腎小管的祖細(xì)胞和屬于腎小球的祖細(xì)胞從包囊壁上區(qū)分出來(lái),即前者不表達(dá)CD106[45]。位于包囊壁CD106+祖細(xì)胞有著向腎小球足細(xì)胞和腎小管上皮細(xì)胞雙向分化的潛能,但是CD106-祖細(xì)胞已經(jīng)出現(xiàn)了腎小管上皮的表型特征,不能向足細(xì)胞分化[45]。
此外,利用CD133、CD24分別結(jié)合升支粗段細(xì)胞標(biāo)記物Tamm-Horsfall糖蛋白和遠(yuǎn)端回旋支小管和連接管位置細(xì)胞標(biāo)志物噻嗪類的NaCl協(xié)同轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白(NCCT)檢測(cè)發(fā)現(xiàn),還有部分腎小管祖細(xì)胞位于升支初段[47]、遠(yuǎn)端回旋支和連接管處(圖3)[10,45]。盡管部分腎小管祖細(xì)胞位于髓質(zhì)區(qū)[47],但是這些細(xì)胞并不共表達(dá)亨利氏袢降支細(xì)段和升支細(xì)段細(xì)胞標(biāo)志物[45]。目前研究尚未發(fā)現(xiàn)來(lái)源于后腎間充質(zhì)組織的集合管中有腎小管祖細(xì)胞存在[45,47],而且也未能在亨利氏袢的升支細(xì)段發(fā)現(xiàn)祖細(xì)胞。這些研究提示,亨利氏袢結(jié)構(gòu)在發(fā)育過程中一次形成,損傷后可能難以修復(fù)[45]。
最近的還有研究證實(shí),人類腎小管祖細(xì)胞也有著較強(qiáng)的抗死亡能力[45,46]。盡管腎小管祖細(xì)胞僅占成熟腎臟所有腎小管細(xì)胞數(shù)目的2%,但是這種抗死亡的能力使其存活,可自我更新復(fù)制,并參與組織再生[40,46]。不論在急性腎損傷,還是急性腎小管壞死(ATN)和腎移植物功能延遲恢復(fù)患者中,均可見腎小管祖細(xì)胞增殖現(xiàn)象[40-42,45,48,49]。而且,在ATN患者中,腎小管祖細(xì)胞增殖能力與患者的預(yù)后有重要關(guān)系[49]。
上述一系列的科學(xué)研究證實(shí),哺乳類動(dòng)物腎臟再生已經(jīng)不像古老的魚類祖先一樣可新生完整腎單位,而是保守地遺傳進(jìn)化了干細(xì)胞和祖細(xì)胞參與的細(xì)胞水平再生[4]。為什么哺乳類動(dòng)物會(huì)喪失再生完整腎單位的能力呢?從進(jìn)化論的角度來(lái)看,哺乳類動(dòng)物腎單位在長(zhǎng)期進(jìn)化過程中,為了適應(yīng)環(huán)境需要而不斷修飾腎臟結(jié)構(gòu)和功能,如出現(xiàn)亨利氏袢,形成皮質(zhì)和髓質(zhì)分區(qū),腎臟結(jié)構(gòu)更加復(fù)雜;此外,哺乳類動(dòng)物腎臟進(jìn)化發(fā)展到從胚胎期即開始產(chǎn)生足夠數(shù)量的腎單位,這點(diǎn)也可能就導(dǎo)致了以后腎單位不可再生的缺陷[10]。哺乳類動(dòng)物腎臟祖細(xì)胞散在分布,目前研究也僅證實(shí)不同部位的祖細(xì)胞具有向靶細(xì)胞定向分化的能力,尚未發(fā)現(xiàn)具有全能分化功能的干細(xì)胞亞群[10]。
物種進(jìn)化過程中腎臟的發(fā)育進(jìn)化受到外界環(huán)境影響,呈現(xiàn)一種保守式的、逐步高級(jí)進(jìn)化模式。腎臟祖細(xì)胞系統(tǒng)保守地遺傳在各個(gè)進(jìn)化階段的物種中,在腎臟發(fā)育和損傷后起到局部細(xì)胞再生和腎單位新生作用。祖細(xì)胞參與的細(xì)胞再生是哺乳類動(dòng)物組織再生中的關(guān)鍵環(huán)節(jié)。研究腎臟祖細(xì)胞再生機(jī)制,對(duì)了解人類腎臟發(fā)育進(jìn)化,研究腎臟再生醫(yī)學(xué),解決腎臟疾病治療具有重要的科學(xué)意義。
1Remuzzi G,Benigni A,Remuzzi A.Mechanisms of progression and regression of renal lesions of chronic nephropathies and diabetes.J Clin Invest,2006,116(2):288-296.
2Remuzzi A.Gagliardini E,Sangalli F,et al.ACE inhibition reduces glomerulosclerosis and regenerates glomerular tissue in a model of progressive renal disease.Kidney Int,2006,69(7):1124-1130.
3Ma LJ,Nakamura S,Aldigier JC,et al.Regression of glomerulosclerosis with high-dose angiotensin inhibition is linked to decreased plasminogen activator inhibitor1.J Am Soc Nephrol,2005,16(4):966-976.
4Reimschuessel R.A fish modelof renal regeneration and development.ILAR J,2001,42(4):285-291.
5Elger M,Hentschel H,Litteral J,et al.Nephrogenesis is induced by partial nephrectomy in the Elasmobranch Leucoraja erinacea.J Am Soc Nephrol,2003,14(6):1506-1518.
6Romagnani P.From Proteus to Prometheus:learning from fish to modulate regeneration.J Am Soc Nephrol,2010,21(5):726-728.
7Blanpain C,Horsley V,Fuchs E.Epithelial stem cells:turning over new leaves.Cell,2007,128(3):445-458.
8He S,Nakada D,Morrison SJ.Mechanisms of stem cell self-renewal.Annu Rev Cell Dev Biol,2009,25:377-406.
9Romagnani P.Toward the identification of a “renopoietic system”? Stem Cells,2009,27(9):2247-2253.
10 Romagnani P,Lasagni L,Remuzzi G.Renal progenitors:an evolutionary conserved strategy for kidney regeneration.Nat Rev Nephrol,2013,9(3):137-146.
11 Dow JA,Romero MF.Drosophila provides rapid modeling of renal development,function,and disease.Am J Physiol Renal Physiol,2010,299(6):1237-1244.
12 Schedl A.Renal abnormalities and their developmental origin.Nat Rev Genet,2007,8(10):791-802.
13 Cha JH,Kim YH,Jung JY,et al.Cell proliferation in the loop of Henle in the developing rat kidney.J Am Soc Nephrol,2001,12(7):1410-1421.
14 Diep CQ,Ma D,Deo RC,et al.Identification of adult nephron progenitors capable of kidney regeneration in zebrafish.Nature,2011,470(7332):95-100.
15 Zhou W,Boucher RC,Bollig F,et al.Characterization of mesonephric development and regeneration using transgenic zebrafish.Am J Physiol Renal Physiol,2010,299(5):F1040-1047.
16 Zhou W,Hildebrandt F.Inducible podocyte injury and proteinuria in transgenic zebrafish.J Am Soc Nephrol,2012,23(6):1039-1047.
17 Zeng X,Hou SX.Kidney stem cells found in adult zebrafish.Cell Stem Cell,2011,8(3):247-249.
18 Singh SR,Liu W,Hou SX.The adult Drosophila malpighian tubules are maintained by multipotent stem cells.Cell Stem Cell,2007,1(2):191-203.
19 Singh SR,Hou SX.Lessons learned about adult kidney stem cells from the malpighian tubules of Drosophila.J Am Soc Nephrol,2008,19(4):660-666.
20 Gray P.The development of the amphibian kidney.I.The development of the mesonephros of rana temporaria.Q J Micr Sci,1930,73:507-545.
21 Beuchat CA,Braun EJ.Allometry of the kidney:implications for the ontogeny of osmoregulation.Am J Physiol,1988,255(5 Pt 2):R760-767.
22 Solomon SE.The morphology of the kidney of the green turtle (Chelonia mydas L.).J Anat,1985,140(Pt 3):355-369.
23 Nishimura H,Yang Y,Lau K,et al.Aquaporin2 water channel in developing quail kidney:possible role in programming adult fluid homeostasis.Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol,2007,293(5):R2147-R2158.
24 Kobayashi A,Valerius MT,Mugford JW,et al.Six2 defines and regulates a multipotent self-renewing nephron progenitor population throughout mammalian kidney development.Cell Stem Cell,2008,3(2):169-181.
25 Barker N,Rookmaaker MB,Kujala P,et al.Lgr5(+ve) stem/progenitor cells contribute to nephron formation during kidney development.Cell Reports,2012,2(3):540-552.
26 Oliver JA,Maarouf O,Cheema FH,et al.The renal papilla is a niche for adult kidney stem cells.J Clin Invest,2004,114(6):795-804.
27 Dekel B,Zangi L,Shezen E,et al.Isolation and characterization of nontubular sca1+lin-multipotent stem/progenitor cells from adult mouse kidney.J Am Soc Nephrol,2006,17(12):3300-3314.
28 Bussolati B,Bruno S,Grange C,et al.Isolation of renal progenitor cells from adult human kidney.Am J Pathol,2005,166(2):545-555.
29 Humphreys BD,Valerius MT,Kobayashi A,et al.Intrinsic epithelial cells repair the kidney after injury.Cell Stem Cell,2008,2(3):284-291.
30 Kitamura S,Yamasaki Y,Kinomura M,et al.Establishment and characterization of renal progenitor like cells from S3 segment of nephron in rat adult kidney.FASEB J,2005,19(13):1789-1797.
31 Gupta S,Verfaillie C,Chmielewski D,et al.Isolation and characterization of kidney-derived stem cells.J Am Soc Nephrol,2006,17(11):3028-3040.
32 Maeshima A,Sakurai H,Nigam SK.Adult kidney tubular cell population showing phenotypic plasticity,tubulogenic capacity,and integration capability into developing kidney.J Am Soc Nephrol,2006,17(1):188-198.
33 Challen GA,Bertoncello I,Deane JA,et al.Kidney side population reveals multilineage potential and renal functional capacity but also cellular heterogeneity.J Am Soc Nephrol,2006,17(7):1896-1912.
34 Langworthy M,Zhou B,de Caestecker M,et al.NFATc1 identifies a population of proximal tubule cell progenitors.J Am Soc Nephrol,2009,20(2):311-321.
35 Humphreys BD,Czerniak S,DiRocco DP,et al.Repair of injured proximal tubule does not involve specialized progenitors.Proc Natl Acad Sci U S A,2011,108(22):9226-9231.
36 Appel D,Kershaw DB,Smeets B,et al.Recruitment of podocytes from glomerular parietal epithelial cells.J Am Soc Nephrol,2009,20(2):333-343.
37 Benigni A,Morigi M,Rizzo P,et al.Inhibiting ACE promotes renal repair by limiting progenitor cells proliferation and restoring the glomerular architecture.Am J Pathol,2011,179(2):628-638.
38 Peti-Peterdi J,Sipos A.A high-powered view of the filtration barrier.J Am Soc Nephrol,2010,21(11):1835-1841.
39 Pippin JW,Sparks MA,Glenn ST,et al.Cells of renin lineage are progenitors of podocytes and parietal epithelial cells in experimental glomerular disease.Am J Pathol,2013,183(2):542-557.
40 Coskun V,Wu H,Blanchi B,et al.CD133+ neural stem cells in the ependyma of mammalian postnatal forebrain.Proc Natl Acad Sci U S A,2008,105(3):1026-1031.
41 Ivanova L,Hiatt MJ,Yoder MC,et al.Ontogeny of CD24 in human kidney.Kidney Int,2010,77(12):1123-1131.
42 Sagrinati C,Netti GS,Mazzinghi B,et al.Isolation and characterization of multipotent progenitor cells from the Bowman’s capsule of adult human kidneys.J Am Soc Nephrol,2006,17(9):2443-2456.
43 Ronconi E,Sagrinati C,Angelotti ML,et al.Regeneration of glomerular podocytes by human renal progenitors.J Am Soc Nephrol,2009,20(2):322-332.
44 Lazzeri E,Crescioli C,Ronconi E,et al.Regenerative potential of embryonic renal multipotent progenitors in acute renal failure.J Am Soc Nephrol,2007,18(12):3128-3138.
45 Angelotti ML,Ronconi E,Ballerini L,et al.Characterization of renal progenitors committed toward the tubular lineage and their regenerative potential in renal tubular injury.Stem Cells,2012,30(8):1714-1725.
46 Lindgren D,Bostr?m AK,Nilsson K,et al.Isolation and characterization of progenitor-like cells from human renal proximal tubules.Am J Pathol,2011,178(2):828-837.
47 Ward HH,Romero E,Welford A,et al.Adult human CD133/1(+) kidney cells isolated from papilla integrate into developing kidney tubules.Biochim Biophys Acta,2011,1812(10):1344-1357.
48 Loverre A,Capobianco C,Ditonno P,et al.Increase of proliferating renal progenitor cells in acute tubular necrosis underlying delayed graft function.Transplantation,2008,85(8):1112-1119.
49 Ye Y,Wang B,Jiang X,et al.Proliferative capacity of stem/progenitor-like cells in the kidney may associate with the outcome of patients with acute tubular necrosis.Hum Pathol,2011,42(8):1132-1141.