王翀,吳鵬飛,王明昊,劉濟源
(1.沈陽市第四人民醫(yī)院神經(jīng)外科,沈陽110031;2.中國醫(yī)科大學(xué)附屬第一醫(yī)院神經(jīng)外科,沈陽110001)
細胞外信號調(diào)節(jié)激酶對神經(jīng)膠質(zhì)瘤環(huán)氧合酶2基因表達的影響
王翀1,吳鵬飛2,王明昊2,劉濟源2
(1.沈陽市第四人民醫(yī)院神經(jīng)外科,沈陽110031;2.中國醫(yī)科大學(xué)附屬第一醫(yī)院神經(jīng)外科,沈陽110001)
目的探討細胞外信號調(diào)節(jié)激酶(ERK)對神經(jīng)膠質(zhì)瘤組織中環(huán)氧合酶2(COX-2)基因表達的作用。方法60只大鼠被隨機分成對照組、膠質(zhì)瘤組和ERK抑制劑組,每組20只。采用注射C6膠質(zhì)瘤細胞的方法制作小鼠膠質(zhì)瘤模型。采用免疫組織化學(xué)和Western blot檢測膠質(zhì)瘤組織中COX-2蛋白表達水平的變化,并采用RT-PCR檢測膠質(zhì)瘤組織中COX-2mRNA表達水平的變化。結(jié)果免疫組織化學(xué)方法和Western blot結(jié)果顯示,與對照組比較,膠質(zhì)瘤組大鼠膠質(zhì)瘤COX-2表達水平顯著升高(P<0.01);而與膠質(zhì)瘤組比較,ERK抑制劑組大鼠膠質(zhì)瘤COX-2表達水平顯著降低(P<0.01)。RT-PCR檢測發(fā)現(xiàn),與對照組比較,膠質(zhì)瘤組大鼠膠質(zhì)瘤COX-2mRNA表達水平顯著升高(P<0.01);而與膠質(zhì)瘤組比較,ERK抑制劑組大鼠膠質(zhì)瘤COX-2mRNA表達水平顯著降低(P<0.01)。結(jié)論ERK能夠上調(diào)神經(jīng)膠質(zhì)瘤組織中COX-2基因的表達。
細胞外信號調(diào)節(jié)激酶;環(huán)氧合酶2;神經(jīng)膠質(zhì)瘤;大鼠
腦膠質(zhì)瘤為中樞神經(jīng)系統(tǒng)最常見的惡性腫瘤,其發(fā)生、發(fā)展及惡性生物學(xué)特征與腫瘤細胞內(nèi)的異常信號轉(zhuǎn)導(dǎo)網(wǎng)絡(luò)相關(guān),而且因為其臨床手術(shù)全切除困難、易復(fù)發(fā)的特性,嚴重危害人類的健康。細胞外信號調(diào)節(jié)激酶(extracellular signal-regulated kinase,ERK)信號傳導(dǎo)通路參與了細胞生長、發(fā)育、增殖和分化以及細胞間的功能同步和細胞惡性轉(zhuǎn)化等多種生理、病理過程。ERK可被各種生長因子等有絲分裂原激活,進入細胞核,促進某些特異基因的轉(zhuǎn)錄與激活,進而在細胞惡性轉(zhuǎn)化及演進中起著重要作用[1~3]。研究并利用ERK在神經(jīng)膠質(zhì)瘤中的作用,能更好地指導(dǎo)神經(jīng)膠質(zhì)瘤治療策略的制定。本研究通過阻斷ERK后檢測環(huán)氧合酶2(cyclooxygenase-2,COX-2)表達的變化來探討ERK在神經(jīng)膠質(zhì)瘤中的作用機制。
1.1 實驗材料
COX-2單克隆抗體,購自美國Santa Cruz公司;二抗山羊抗兔多克隆抗體,購自北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司;MEK1/2抑制劑U0126,購自碧云天有限公司;免疫組化SP試劑盒和DAB試劑盒,購自邁新公司。
1.2 大鼠C6膠質(zhì)瘤細胞培養(yǎng)和實驗動物分組
大鼠C6膠質(zhì)瘤細胞購自上海研域生物科技有限公司,在含10%胎牛血清、100 mg/mL鏈霉素及100 U/mL青霉素的高糖DMEM培養(yǎng)基中,37℃、濕度100%、4%CO2培養(yǎng)。
Wistar健康雄性大鼠60只,體質(zhì)量180~200 g,購自中國醫(yī)科大學(xué)實驗動物中心。大鼠以10%水合氯醛(3.4 mL/kg)腹腔注射麻醉后,固定于大鼠腦立體定位儀上,取冠狀縫前1.0 mm、矢狀縫右側(cè)3.0 mm鉆骨孔。以微量注射器抽吸10 μL含有1×106個C6細胞的懸液,于骨孔處進針深達硬膜下4.4 mm,退針0.4 mm,注射時間為10 min,留針10 min,使細胞充分沉積于右側(cè)尾狀核區(qū)[4]。移植C6膠質(zhì)瘤細胞14 d后,隨機分為3組。膠質(zhì)瘤組:解剖顯微鏡下分離并結(jié)扎右側(cè)頸總、頸外動脈的近心端,經(jīng)右側(cè)頸總動脈遠心端泵入無菌生理鹽水10 μL,作用30 min。ERK抑制劑組:泵入10 μL DMSO稀釋的U0126溶液(400 μmol/L)。對照組不作任何處理。
1.3 免疫組化方法
麻醉各組大鼠,經(jīng)左心室用4%多聚甲醛灌注固定,斷頭取腦后固定6 h,浸入20%~30%蔗糖溶液中浸泡脫水72 h。常規(guī)等級乙醇脫水,二甲苯透明,石蠟包埋,作連續(xù)冠狀腦切片,切片厚6 μm。采用SP方法檢測COX-2的表達,按照試劑盒說明書操作,結(jié)果進行平均光密度值分析。
1.4 Western blot方法
麻醉各組大鼠后立即在冰上斷頭,開顱取腫瘤組織,加入裂解緩沖液,剪碎并勻漿,4℃、17 000 r/min離心14 min,取上清液。采用BCA方法測定蛋白濃度,計算蛋白上樣量。SDS-PAGE電泳分離,轉(zhuǎn)印,4%脫脂奶粉封閉,4℃孵育過夜,一抗COX-2,βactin(1∶400)室溫搖床孵育2 h,加辣根過氧化物酶標(biāo)記的二抗(1∶4 000),室溫搖床孵育2 h,ECL(美國Santa Cruz公司)光化學(xué)法顯色,曝光,膠片經(jīng)透射掃描儀掃描獲得圖像,以凝膠圖像掃描分析軟件測定條帶的積分光密度值,計算COX-2與β-actin的比值。
1.5 RT-PCR方法檢測COX-2mRNA的表達
麻醉各組大鼠后立即在冰上斷頭,開顱取腫瘤組織,按RNAout說明書進行總mRNA提取,然后以逆轉(zhuǎn)錄合成cDNA,再進行PCR擴增。COX-2引物序列見表1。擴增產(chǎn)物進行1.4%瓊脂糖電泳,UVP凝膠顯像儀掃描并進行圖像分析。
表1 引物設(shè)計及長度Tab.1 The designed primers and amplification length
1.6 統(tǒng)計學(xué)分析
2.1 COX-2蛋白表達
免疫組化結(jié)果(圖1)顯示,對照組腦組織可見少量COX-2蛋白陽性細胞,膠質(zhì)瘤組大鼠膠質(zhì)瘤部位COX-2蛋白陽性細胞數(shù)明顯增多,ERK抑制劑組大鼠膠質(zhì)瘤COX-2蛋白陽性細胞數(shù)介于對照組與膠質(zhì)瘤組之間。膠質(zhì)瘤組與對照組比較、ERK抑制劑組與膠質(zhì)瘤組比較,COX-2蛋白陽性表達平均光密度值的差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01)。見表2。
從Western blot結(jié)果(圖2)可以看出,對照組大鼠COX-2蛋白表達量較低,與對照組比較,膠質(zhì)瘤組大鼠COX-2蛋白表達水平顯著升高,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01)。ERK抑制劑組COX-2蛋白表達水平介于對照組與膠質(zhì)瘤組之間,與膠質(zhì)瘤組比較,ERK抑制劑組COX-2蛋白表達水平顯著降低,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01)。見表2。
2.3COX-2mRNA的表達結(jié)果
對RT-PCR(圖3)結(jié)果進行分析發(fā)現(xiàn),膠質(zhì)瘤組與對照組比較,COX-2mRNA表達水平顯著升高,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01);而ERK抑制劑組與膠質(zhì)瘤組相比,COX-2mRNA表達水平顯著降低,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01)。見表2。
圖1 免疫組化方法檢測COX-2的表達×200Fig.1 The expression of COX-2 detected by immunohistochemistry×200
表2 各組大鼠COX-2蛋白和mRNA表達的平均光密度值Tab.2 The average optical density value of COX-2 protein and mRNA expressions in rats of each group
圖2 Western blot檢測COX-2的表達Fig.2 The expression of COX-2 determined by Western blot
圖3 RT-PCR方法檢測COX-2mRNA的表達Fig.3 The expression of COX-2mRNA analyzed by RT-PCR
腦膠質(zhì)瘤起源于神經(jīng)間質(zhì)細胞,是最常見的顱內(nèi)原發(fā)性腫瘤,占成人所有惡性腫瘤的2%,具有浸潤性生長、易復(fù)發(fā)、侵襲性強、血管豐富等惡性生物學(xué)特征。膠質(zhì)瘤的發(fā)病原因目前尚不清楚,但有證據(jù)表明膠質(zhì)瘤的形成與一定的內(nèi)環(huán)境改變和基因變異有關(guān),是一個多因素、多步驟的多種癌基因失調(diào)及抑癌基因缺失導(dǎo)致的信號轉(zhuǎn)導(dǎo)失調(diào)的協(xié)同積累過程[4]。近年來,一些與膠質(zhì)瘤發(fā)生、發(fā)展密切相關(guān)的異常信號通路成為研究熱點[6]。
ERK信號通路是普遍存在于真核細胞的一條高度保守的細胞信號傳導(dǎo)通路,該信號傳導(dǎo)通路的異常激活與多種腫瘤的發(fā)生及惡性進展密切相關(guān)。ERK受體信號轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑其級聯(lián)中一般包括Ras、Raf、MAPKK和p42/44 MAPK(ERK1/ERK2)。ERK有兩條主要激活途徑:(1)經(jīng)受體酪氨酸激酶途徑激活ERK:Ras活化Raf,Raf作為MAPKK將MEK磷酸化激活,進而使ERK磷酸化活化;(2)G蛋白耦聯(lián)受體途徑:配體與膜上G蛋白耦聯(lián)受體結(jié)合引起受體構(gòu)型改變,激活磷脂酶C,使磷脂酰胺醇4、4二磷酸水解生成三磷酸肌醇和二酰基甘油。二?;视图せ畹鞍准っ窩,通過Ras或不依賴Ras激活ERK[7]。研究發(fā)現(xiàn),Ras/Raf/MEK/ERK信號通路的異常激活幾乎見于所有膠質(zhì)瘤中,與膠質(zhì)瘤的發(fā)生、發(fā)展及其惡性生物學(xué)特性密切相關(guān),抑制該信號通路可能成為干預(yù)膠質(zhì)瘤的有效措施[8~10]。
環(huán)氧化酶是由2種基因型即COX-1和COX-2組成的催化前列腺素合成的限速酶。其中COX-2在大多數(shù)組織正常生理條件下并不存在,僅在細胞受到刺激時迅速合成,催化花生四烯酸產(chǎn)生多種前列腺素類物質(zhì),通過多種途徑參與包括炎癥、腫瘤等多種病理生理過程。
COX-2是花生四烯酸代謝、前列腺素和血栓素A2生物合成過程中重要的誘導(dǎo)性酶,在正常生理狀態(tài)下幾乎不表達或甚少表達,具有廣泛的生理功能,對炎性反應(yīng)、腫瘤的發(fā)生發(fā)展、炎性疼痛、血管生成及栓塞和骨代謝等都具有重要的作用。研究發(fā)現(xiàn),乳腺癌、前列腺癌、結(jié)腸癌、肺癌、頭頸部腫瘤、膀胱癌、淋巴瘤等多種腫瘤組織中均可見COX-2過度表達[11~13],可見COX-2過度表達與腫瘤的發(fā)生、發(fā)展密切相關(guān)。COX-2過度表達可抑制腫瘤細胞凋亡,促進腫瘤細胞的過度增殖,使細胞增殖和凋亡之間的平衡失調(diào),從而促進腫瘤惡性行為的發(fā)生。研究認為其可能機制有:(1)COX-2的催化產(chǎn)物前列腺素E2能增加凋亡抑制蛋白Bcl-2的表達,從而抑制腫瘤細胞的凋亡[14];(2)促進Survivin基因產(chǎn)生凋亡抑制蛋白,從而抑制細胞凋亡,加速腫瘤細胞生長[14];(3)降低神經(jīng)酰胺水平,神經(jīng)酰胺是眾所周知的死亡信號,因此神經(jīng)酰胺水平下降可促進腫瘤細胞死亡;(4)影響一氧化氮通路,COX-2催化產(chǎn)物前列腺素E2可通過減弱和抑制一氧化氮途徑抑制細胞凋亡。
研究表明,緩激肽能夠通過B2受體誘導(dǎo)COX-2mRNA和蛋白的表達介導(dǎo)炎性反應(yīng),MAPK家族的p38MAPK和ERKl/2通過調(diào)節(jié)COX-2的表達調(diào)節(jié)炎癥信號從細胞膜到細胞核的傳遞[16]。本研究利用顯微注射C6膠質(zhì)瘤細胞制作大鼠腦膠質(zhì)瘤模型,檢測發(fā)現(xiàn)腦膠質(zhì)瘤組大鼠COX-2蛋白及mRNA表達顯著高于對照組,結(jié)果說明COX-2可能在腦膠質(zhì)瘤的發(fā)生發(fā)展中發(fā)揮著重要作用,但是ERK是否能夠通過COX-2的表達參與神經(jīng)膠質(zhì)瘤的病理機制尚不清楚。
為了進一步研究ERK信號通路對COX-2的作用,我們通過泵入ERK抑制劑U0126阻斷ERK信號通路,進一步檢測COX-2的表達變化。結(jié)果發(fā)現(xiàn),與膠質(zhì)瘤組相比,ERK抑制劑組大鼠膠質(zhì)瘤COX-2蛋白及mRNA表達水平顯著降低。結(jié)果提示,ERK很可能通過調(diào)節(jié)其下游蛋白COX-2參與神經(jīng)膠質(zhì)瘤的病理機制。綜上所述,本研究結(jié)果有利于更好地指導(dǎo)神經(jīng)膠質(zhì)瘤治療策略的制定。
[1]Chi AS,Sorensen AG,Jain RK,et al.Angiogenesis as a therapeutic target in malignant gliomas[J].Oncologist,2009,14(6):621-636.
[2]Hjelmeland AB,Lattimore KP,F(xiàn)ee BE,et al.The combination of novel low molecular weight inhibitors of RAF(LBT613)and target of rapamycin(RAD001)decreases glioma proliferation and invasion[J].Mol Cancer Ther,2007,6(9):2449-2447.
[3]Sathornsumetee S,Hjelmeland AB,Keir ST,et al.AAL881,a novel small molecule inhibitor of RAF and vascular endothelial growth factor receptor activities,blocks the growth of malignant glioma[J]. Cancer Res,2006,66(17):8722-8730.
[4]李振,劉云會,薛一雪,等.內(nèi)皮—單核細胞激活多肽酶Ⅱ增強血腫瘤屏障通透性的機制[J].解剖科學(xué)進展,2012,18(1):34-39.
[5]Hambardzumyan D,Squatrito M,Carbajal E,et al.Glioma formation,cancer stem cells,and akt signaling[J].Stem Cell Rev,2008,4(3):203-210.
[6]叢子翔,王漢東.Ras/Raf/Mek/Erk信號通路在膠質(zhì)瘤中的研究進展[J].中國微侵襲神經(jīng)外科雜志,2012,17(9):430-434.
[7]Inagami T,Eguchi S,Numaguchi K,et al.Cross-talk between angiotensinⅡreceptors and the tyrosine kinases and phosphatases[J].J Am Soc Nephrol,1999,10(Suppl 11):S47-S61.
[8]Lyustikman Y,Momota H,Pao W,et al.Constitutive activation of Raf-1 induces glioma formation in mice[J].Neoplasia,2008,10(4):401-410.
[9]Robinson JP,Vanbrocklin MW,Lastwika KJ,et al.Activated MEK cooperates with Ink4a/Arf loss or Akt activation to induce gliomas in vivo[J].Oncogene,2011,30(11):1341-1340.
[10]Nakada M,Kita D,Watanabe T,et al.Aberrant signaling pathways in glioma[J].Cancers,2011,3(3):3242-3278.
[11]Zha S,Yegnasubramanian V,Nelson WG,et a1.Cyclooxygenases in cancer:progress and perspective[J].Cancer Lett,2004,214(1):1-20.
[12]Nie D.Cyclooxygenases and lipoxygenases in prostate and breast cancers[J].Front Biosci,2007,12:1474-1484.
[13]李杰,郝洪嶺,薛麗英,等.Cox-2、bcl-2、caspase-3在彌漫大B細胞淋巴瘤中表達的意義[J].白血病·淋巴瘤,2009,18(4):223-224.
[14]王魯建,孫麗梅.肺癌組織中COX-2和Bcl-2蛋白的相關(guān)性及對預(yù)后的影響[J].中國組織化學(xué)與細胞化學(xué)雜志,2007,16(3):308-311.
[15]張惠忠,魏益平,華平,等.Survivin蛋白在非小細胞肺癌組織表達及與COX-2蛋白的關(guān)系[J].中國熱帶醫(yī)學(xué),2006,6(10):1774-1777.
[16]Lee SJ,Lim KT.Inhibitory effect of 30 kDa phytoglycoprotein on expression of TNF-alpha and COX-2 via activation of PKCalpha and ERK 1/2 in LPS-stimulated RAW 264.7 cells[J].Mol Cell Biochem,2008,317(1-2):141-149.
(編輯 陳姜)
EffectofExtracellular Signal-regulated Kinase on Cyclooxygenase-2 Expression in Glioma
WANGChong1,WUPeng-fei2,WANGMing-hao2,LIUJi-yuan2
(1.Department of Neurosurgery,The Fourth People′s Hospital of Shenyang City,Shenyang 110031,China;2.Department of Neurosurgery,The First Hospital,China MedicalUniversity,Shenyang 110001,China)
ObjectiveTo study the effectofextracellularsignal-regulated kinase(ERK)on the expression ofcyclooxygenase-2(COX-2)in glioma.MethodsA total of 60 rats were randomly divided into control group,glioma group and ERK inhibitor group(n=20 each group).The expression ofCOX-2 protein was detected by and Western blotand immunohistochemistry.The expression ofCOX-2mRNA was detected by RT-PCR.Re?sultsThe results of immunohistochemistry Western blot showed that the expression level of COX-2 in rats of glioma group was higher than control group(P<0.01).Compared with glioma group,the expression of COX-2 was significantly decreased in rats of ERK inhibitor group.The level ofCOX-2mRNA in rats of glioma group was higher than the control group(P<0.01).Compared with glioma group,the expression ofCOX-2mRNA in rats of ERK inhibitor group was significantly decreased detected by RT-PCR(P<0.01).ConclusionERK could up-regulate the expression ofCOX-2in glioma.
extracellular signal-regulated kinase;cyclooxygenase-2;glioma;rat
R730.264
A
0248-4646(2014)04-0333-04
遼寧省博士科研啟動基金(20131149)
王翀(1976-),男,副主任醫(yī)師,本科. E-mail:wangchong197644@126.com
2013-12-29
網(wǎng)絡(luò)出版時間: