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        黃鯽線粒體DNA控制區(qū)結(jié)構(gòu)及長度多態(tài)性分析

        2014-03-17 00:39:20蔡珊珊徐勝勇宋娜高天翔張朝暉
        水生生物學(xué)報(bào) 2014年5期
        關(guān)鍵詞:控制區(qū)魚類多態(tài)性

        蔡珊珊徐勝勇宋 娜高天翔張朝暉

        (1. 中國海洋大學(xué)海洋生物多樣性與進(jìn)化研究所, 青島 266003; 2. 國家海洋局第一海洋研究所, 青島 266061)

        黃鯽線粒體DNA控制區(qū)結(jié)構(gòu)及長度多態(tài)性分析

        蔡珊珊1徐勝勇1宋 娜1高天翔1張朝暉2

        (1. 中國海洋大學(xué)海洋生物多樣性與進(jìn)化研究所, 青島 266003; 2. 國家海洋局第一海洋研究所, 青島 266061)

        魚類線粒體DNA(Mitochondrial DNA, mtDNA)因?yàn)榫哂薪Y(jié)構(gòu)簡單、嚴(yán)格的母系遺傳、缺少重組等特點(diǎn)而成為重要的分子標(biāo)記[1—4]。線粒體DNA控制區(qū)(Control region, CR, 又稱D-loop區(qū))是一段非編碼區(qū), 進(jìn)化速率快, 容易積累較多的變異(如堿基的替換、插入和缺失等), 被廣泛應(yīng)用于種內(nèi)分子遺傳學(xué)研究[5—7]??刂茀^(qū)一般分為終止序列區(qū)、中央保守區(qū)和保守序列區(qū)3部分。控制區(qū)變異多發(fā)生于終止序列區(qū), 中央保守區(qū)和保守序列區(qū)相對(duì)保守,且存在多個(gè)保守片段(CSB-F、CSB-E、CSB-D、CSB-1、CSB-2、CSB-3等)[7]。目前已分析研究了多種魚類的線粒體DNA控制區(qū)結(jié)構(gòu)[7—15], 并總結(jié)歸納出控制區(qū)各保守片段的普遍形式[7]。在部分魚類線粒體DNA控制區(qū)中亦發(fā)現(xiàn)長度多態(tài)性現(xiàn)象[7,14,15], 控制區(qū)長度多態(tài)性可能應(yīng)用于種內(nèi)或種間群體學(xué)研究[16]。

        黃鯽(Setipinna tenuifilis)隸屬鯡形目(Clupeiformes)、鳀科(Engraulididae)、黃鯽屬, 廣泛分布于印度洋西部和西北太平洋海域, 中國沿海各海域均有分布。黃鯽為近海中下層魚類, 喜棲息于泥沙底、水流較緩的海區(qū)[17,18]。黃鯽是一種小型經(jīng)濟(jì)魚類。20世紀(jì)80年代以來, 隨著小黃魚、藍(lán)點(diǎn)馬鮫、帶魚等傳統(tǒng)經(jīng)濟(jì)魚類資源量下降, 黃鯽的捕獲量逐年增加[18]。由于捕撈壓力過大, 黃鯽資源量已呈現(xiàn)下降趨勢(shì)[19—21]。目前對(duì)黃鯽的研究主要集中在時(shí)空分布、種群結(jié)構(gòu)和生物學(xué)等方面[18—22]。Li等[23]和張博[24]對(duì)黃鯽控制區(qū)序列進(jìn)行分析研究, 識(shí)別了CSB-F、CSB-E、CSB-D、CSB-1、CSB-2、CSB-3, 并在終止序列區(qū)內(nèi)發(fā)現(xiàn)重復(fù)序列現(xiàn)象。本研究在分析黃鯽線粒體DNA控制區(qū)結(jié)構(gòu)的基礎(chǔ)上, 對(duì)控制區(qū)長度多態(tài)性進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析, 以期為黃鯽群體遺傳學(xué)研究奠定基礎(chǔ), 同時(shí)探討重復(fù)序列應(yīng)用于黃鯽群體遺傳學(xué)分析的有效性。

        1 材料與方法

        1.1 實(shí)驗(yàn)材料

        本研究所用黃鯽樣品于2005—2013年采自中國沿海7個(gè)地點(diǎn)(東營、煙臺(tái)、青島、南通、溫州、廈門、北部灣), 共202尾個(gè)體(表1)。在實(shí)驗(yàn)樣品經(jīng)形態(tài)學(xué)鑒定后, 取小塊肌肉組織于 95%酒精溶液中固定, 置于–20℃冰箱中保存待用。

        1.2 DNA提取及PCR擴(kuò)增

        取肌肉組織約100 mg經(jīng)蛋白酶K消化后, 使用標(biāo)準(zhǔn)酚-氯仿法抽提獲得線粒體基因組DNA。使用100 mL去離子水溶解線粒體基因組 DNA, 置于–4℃冰箱中保存待用。每個(gè)群體取5尾個(gè)體擴(kuò)增控制區(qū)全序列用于控制區(qū)結(jié)構(gòu)分析, 其他個(gè)體僅擴(kuò)增控制區(qū)高變區(qū)(Hypervariable region I)用于長度多態(tài)性分析。

        表1 黃鯽樣品信息Tab. 1 Sample information of Setipinna tenuifilis

        黃鯽控制區(qū)全序列擴(kuò)增分兩段測序, 其中控制區(qū)高變區(qū)引物[25]為: HJF: 5′-CACCCYTRRCTCCCAAAGCYA-3′; HJR: 5′-GGAACACCGAGTAATGCTGAG-3′; 控制區(qū)后半段引物為: HJHF: 5′-CATTTTCTATGCGTTCCTCAG-3′; HJHR: 5′-GTGCGGATACTTGCATGTGT-3′。

        PCR反應(yīng)體系為25 μL, 其中Taq酶0.25 μL, DNA模板1 μL, 正、反向引物各1 μL, dNTP 2 μL, 10×PCR buffer 2.5 μL, 去離子水17.25 μL。PCR反應(yīng)條件為94℃預(yù)變性5min; 94℃變性45s, 52℃退火45s, 72℃延伸45s, 共35個(gè)循環(huán); 72℃延伸10min。取2 μL PCR產(chǎn)物進(jìn)行1.5%瓊脂糖凝膠電泳(U = 300 V), 使用回收試劑盒(上海沃森生物科技公司)對(duì)目的條帶進(jìn)行回收純化, 使用 ABI Prism 3730型DNA序列分析儀對(duì)回收純化的PCR產(chǎn)物進(jìn)行正反鏈測序。

        1.3 數(shù)據(jù)分析

        使用 DNASTAR軟件包(DNASTAR, Inc., Madison, USA)對(duì)序列進(jìn)行比對(duì)、編輯和分析, 并對(duì)結(jié)果輔以人工校正; 使用Microsoft Excel 2010軟件對(duì)重復(fù)序列頻率進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析; 使用RNAstructure 4.3軟件[26]分析重復(fù)序列二級(jí)結(jié)構(gòu)并計(jì)算其釋放的自由能; 使用SPSS 18.0軟件對(duì)重復(fù)序列頻率進(jìn)行卡方檢驗(yàn)(Chi-square test), 以計(jì)算兩兩群體間重復(fù)序列頻率的差異顯著性。

        按照Birky等[27]的理論, 計(jì)算不同層次遺傳多樣性。由于黃鯽控制區(qū)DNA不存在個(gè)體內(nèi)異質(zhì)性現(xiàn)象, 個(gè)體內(nèi)遺傳多樣性 Kb= 0; 群體內(nèi)個(gè)體間遺傳多樣性 Kc= 1–ΣXi2, Xi指某一DNA類型(長度差異)在群體內(nèi)的頻率; 總體遺傳多樣性Kt= 1–ΣYi2, Yi指某一DNA類型(長度差異)在所有個(gè)體內(nèi)的頻率。根據(jù)公式Cip= (mean Kc–Kb)/Kt和Cpt= (Kt–mean Kc)/Kt計(jì)算遺傳差異在群體內(nèi)和群體間所占比例[28]。

        2 結(jié)果

        2.1 控制區(qū)序列長度和堿基組成

        對(duì)黃鯽控制區(qū)序列進(jìn)行編輯和人工校正后, 得到黃鯽全序列長度為1193—1271 bp。35條序列共定義了6個(gè)單倍型, 檢測到9個(gè)變異位點(diǎn), 其中9個(gè)位點(diǎn)均為轉(zhuǎn)換。以CSB-F起始位置和CSB-1起始位置分別為終止序列區(qū)和中央保守區(qū)、中央保守區(qū)和保守序列區(qū)的界線, 8個(gè)變異位點(diǎn)位于終止序列區(qū)內(nèi), 1個(gè)變異位點(diǎn)位于中央保守區(qū),在保守序列區(qū)內(nèi)未發(fā)現(xiàn)變異位點(diǎn)。同時(shí), 在終止序列區(qū)內(nèi)(165—437 bp)檢測到串聯(lián)重復(fù)序列(Tandem repeat sequence)結(jié)構(gòu), 重復(fù)序列單元長度為 39 bp, 重復(fù)次數(shù)為 5—7次。重復(fù)序列現(xiàn)象僅存在于個(gè)體間, 并沒有發(fā)現(xiàn)個(gè)體內(nèi)異質(zhì)性(Heterogeneous)現(xiàn)象。

        以長度為1271 bp的控制區(qū)序列為例分析序列中堿基A、T、G、C的含量(表2)??刂茀^(qū)全序列A+T含量(64.9%)高于 C+G含量, 這一結(jié)果與其他魚類控制區(qū)堿基組成相似。重復(fù)序列單元 A+T含量(79.5%)均高于全序列含量(64.9%)、終止序列區(qū)含量(72.4%)、中央保守區(qū)含量(57.1%)和保守序列區(qū)(55.9%)。

        表2 黃鯽控制區(qū)序列堿基組成及長度Tab. 2 Nucleotide compositions and length of mitochondrial DNA control region of S. tenuifilis

        2.2 終止序列區(qū)

        終止序列區(qū)是控制區(qū)內(nèi)變異最多的區(qū)域。黃鯽控制區(qū)終止序列區(qū)長度為592—670 bp, 在終止序列區(qū)前端發(fā)現(xiàn)串聯(lián)重復(fù)序列。參考鱭屬魚類線粒體DNA控制區(qū)擴(kuò)展終止相關(guān)序列(Extended termination associated sequence, ETAS)特征序列[9]和 鲿科魚類ETAS特征序列[13], 確定黃鯽控制區(qū)ETAS特征序列為TACAT ACTATGCATTATATT ACAT, 與劉煥章[7]對(duì)ETAS的描述略有不同, 與Li等[23]的研究結(jié)果相似(圖 1), 且 ETAS包含在串聯(lián)重復(fù)單元中,黃鯽控制區(qū)終止序列區(qū)內(nèi)存在5—7個(gè)ETAS。

        圖1 黃鯽控制區(qū)終止序列區(qū)序列Fig. 1 Termination associated sequence of S. tenuifilis

        2.3 中央保守區(qū)

        中央保守區(qū)內(nèi)含有多個(gè)保守序列。參照劉煥章[7]給出的 魚類中央保守區(qū)D、E、F 3個(gè)保守片段的特征序列及鱭屬魚類中央保守區(qū)D、E、F 3個(gè)保守片段的特征序列[9], 在黃鯽控制區(qū)中央保守區(qū)內(nèi)共識(shí)別出CSB-D、CSB-E、CSB-F 3個(gè)保守序列。其中CSB-F序列為ATGTAG TA AGAAACCACC, CSB-E序列為AGGG ACAACTATTGTGGGGGACTG GCATCTG , CSB-D 序列為 TATT

        GT, 與Li等[23]的研究結(jié)果相似(圖2)。CSB-E序列中發(fā)現(xiàn) GTGGG-box, 且與鱭屬魚類 CSB-E序列相同, 其他2個(gè)序列與鱭屬魚類特征序列分別存在1個(gè)堿基差異[9]。

        2.4 保守序列區(qū)

        參照鱭屬魚類的CSB-1、CSB-2和CSB-3的特征序列, 我們識(shí)別出黃鯽的3個(gè)保守序列區(qū)片段。CSB-1的序列為TTGATAGAAGAATTGCATAA; CSB-2和CSB-3的序列分別為AAACCCCCTTACCCCC和TGTCAAACCCC GAAA, 與Li等[23]的研究結(jié)果相似(圖2)。

        圖2 黃鯽控制區(qū)中央保守區(qū)和保守序列區(qū)序列Fig. 2 Central conserved domain and conserved sequence block sequence of S. tenuifilis

        2.5 重復(fù)序列

        對(duì)202尾黃鯽個(gè)體的控制區(qū)高變區(qū)序列進(jìn)行3%瓊脂糖凝膠電泳(U = 100V), 發(fā)現(xiàn)個(gè)體間存在長度多態(tài)性現(xiàn)象(圖 3)。對(duì)黃鯽控制區(qū)高變區(qū)序列進(jìn)行正反鏈測序, 測序結(jié)果顯示黃鯽控制區(qū)高變區(qū)存在長度為39 bp的重復(fù)序列單元, 重復(fù)次數(shù)為 5—7次。結(jié)合瓊脂糖凝膠電泳圖及測序結(jié)果, 統(tǒng)計(jì)黃鯽控制區(qū)重復(fù)序列單元頻率, 結(jié)果顯示 6次重復(fù)的個(gè)體最多, 其次為7次重復(fù)個(gè)體, 5次重復(fù)個(gè)體最少, 僅出現(xiàn)在東營、煙臺(tái)、南通和溫州群體內(nèi); 北部灣群體內(nèi)7次重復(fù)個(gè)體較多, 其他6個(gè)群體均為6次重復(fù)個(gè)體比例較大(圖4)。在重復(fù)序列頻率上, 卡方檢驗(yàn)結(jié)果(表3)顯示北部灣群體與其他 6個(gè)群體存在極顯著的差異(χ2>16.655, P=0.000), 其他各群體間差異不顯著(χ2<2.945, P > 0.229)。

        使用RNAstructure軟件分析、構(gòu)建重復(fù)序列二級(jí)結(jié)構(gòu), 發(fā)現(xiàn)重復(fù)序列能夠形成穩(wěn)定的莖環(huán)結(jié)構(gòu)并釋放一定的自由能(圖5), 5次重復(fù)序列釋放的自由能為–24.2 kcal/M; 6次重復(fù)序列釋放的自由能為–28.7 kcal/M; 7次重復(fù)序列釋放的自由能為–34.2 kcal/M。隨著重復(fù)次數(shù)的增加, 重復(fù)序列形成的二級(jí)結(jié)構(gòu)越來越穩(wěn)定, 釋放的自由能也越來越高。

        對(duì)黃鯽控制區(qū)重復(fù)序列遺傳多樣性和群體遺傳差異進(jìn)行分析比較, 結(jié)果顯示 7個(gè)群體遺傳多樣性(Kc)為0.255—0.423, 平均為 0.347; 所有個(gè)體遺傳多樣性為0.435。79.77%的遺傳差異來自群體內(nèi)個(gè)體間, 而20.23%的遺傳差異來自群體間(表4)。

        圖3 黃鯽控制區(qū)高變區(qū)長度多態(tài)性(以東營群體為例)Fig. 3 Length polymorphism in hypervariable region I of S. tenuifilis in population Dongying

        表3 兩兩群體間卡方檢驗(yàn)結(jié)果(對(duì)角線下側(cè)為χ2值, 對(duì)角線上側(cè)為P值)Tab. 3 Pairwise χ2(below diagonal) and P values (above diagonal) among S. tenuifilis populaitons

        圖4 黃鯽7個(gè)群體重復(fù)序列頻率Fig. 4 Frequency of tandem repeat sequence in seven populations of S. tenuifilis

        表4 黃鯽群體重復(fù)序列遺傳多樣性和遺傳差異分析結(jié)果Tab. 4 Results of genetic diversity and genetic differentiation of seven populations of S. tenuifilis

        3 討論

        3.1 黃鯽控制區(qū)結(jié)構(gòu)

        黃鯽控制區(qū)結(jié)構(gòu)與其他海洋魚類相似, 通過比對(duì)其他魚類的控制區(qū)結(jié)構(gòu), 我們發(fā)現(xiàn)在黃鯽控制區(qū)終止序列區(qū)內(nèi)存在5—7個(gè)擴(kuò)展終止相關(guān)序列(ETAS), 這一重復(fù)片段也是造成黃鯽控制區(qū)長度多態(tài)性的主要原因。同時(shí), 在中央保守區(qū)和保守序列區(qū)內(nèi)分別識(shí)別6個(gè)保守序列(CSBD—F和CSB-1—3)。

        終止序列區(qū)是魚類控制區(qū)內(nèi)變異積累最多的區(qū)域,重復(fù)序列也多發(fā)生在終止序列區(qū)。朱世華等[13]發(fā)現(xiàn)在康氏似 鲹(Scomberoides commersonianus)的控制區(qū)終止序列區(qū)內(nèi)存在串聯(lián)重復(fù)序列, 在中華鱘[14](Acipenser sinensis)、高首鱘[29](Acipenser transmontanus)控制區(qū)終止序列區(qū)內(nèi)也發(fā)現(xiàn)重復(fù)序列, 且在康氏似 鲹和高首鱘控制區(qū)內(nèi)存在多個(gè) TAS。黃鯽控制區(qū)結(jié)構(gòu)分析的研究中, 張博[24]在終止序列區(qū)內(nèi)發(fā)現(xiàn)5個(gè)ETAS, Li等[23]發(fā)現(xiàn)7個(gè)ETAS。本研究中, 黃鯽控制區(qū)ETAS出現(xiàn)頻率為5—7次, 呈現(xiàn)個(gè)體間長度多態(tài)性。

        中央保守區(qū)是整個(gè)控制區(qū)中最為保守的區(qū)域[30],Southern等[31]識(shí)別出哺乳動(dòng)物中央保守區(qū)B、C、D、E、F 5個(gè)保守序列; Randi和Lucchini[32]識(shí)別了鳥類中央保守區(qū)C、D、E、F 4個(gè)保守序列。但在多種魚類[7—13]中僅識(shí)別3個(gè)保守片段(CSB-D、E、F)。對(duì)黃鯽的中央保守區(qū)進(jìn)行分析, 也僅識(shí)別了 CSB-D、E、F等保守片段, 并沒有發(fā)現(xiàn)CSB-B和CSB-C序列。

        圖5 重復(fù)序列二級(jí)結(jié)構(gòu)及自由能Fig. 5 Predicted secondary structure and free energy of tandem repeat sequences

        保守序列區(qū)可能是控制區(qū)中最為重要的區(qū)域, 其包含有H鏈復(fù)制起始區(qū)(OH)、H鏈啟動(dòng)子(HSP)、L鏈啟動(dòng)子(LSP)和 3個(gè)保守片段(CSB-1—3)等多個(gè)功能區(qū)域[30],其中 CSB-1是區(qū)分中央保守區(qū)和保守序列區(qū)的標(biāo)志, 其變異較大, 而 CSB-2和 CSB-3相對(duì)保守[7]?,F(xiàn)已識(shí)別出多種魚類保守序列區(qū)的保守片段并給出各保守片段的一般形式[7—15]。在黃鯽保守序列區(qū)內(nèi)并沒有發(fā)現(xiàn)CSB-1的特征序列(GACATA), 參照鱭屬魚類等的CSB-1特征序列,我們發(fā)現(xiàn)黃鯽的CSB-1序列為TTGATAGAAGAATTGC ATAA。CSB-2和CSB-3序列相對(duì)保守。

        3.2 黃鯽控制區(qū)重復(fù)序列

        黃鯽控制區(qū)終止序列區(qū)出現(xiàn)多個(gè)串聯(lián)重復(fù)序列, 且個(gè)體間重復(fù)次數(shù)不同。串聯(lián)重復(fù)序列形成機(jī)制較多, 如重組(Recombination)和轉(zhuǎn)座(Transposition)[16]、不等交換(Unequal crossing over)或基因轉(zhuǎn)換(Gene conversion)[33]、滑鏈(Strand slippage)[34]等。由于脊椎動(dòng)物線粒體DNA中一般不發(fā)生重組現(xiàn)象[35], 滑鏈錯(cuò)配(Slipped-strand mispairing)是最有可能形成串聯(lián)重復(fù)序列的機(jī)制。這一機(jī)制在核基因中也同樣存在[36,37]。目前仍需要深入研究以確定決定重復(fù)次數(shù)頻率的機(jī)制。

        重復(fù)序列頻率差異可能應(yīng)用于群體比較和種類鑒別。Stepien等[38]對(duì)梅花鱸(Gymnocephalus cernua)重復(fù)序列多態(tài)性進(jìn)行分析研究, 發(fā)現(xiàn)梅花鱸各地理群體間重復(fù)序列頻率差異顯著; Broughton和 Dowling[39]對(duì)斑鰭真小鯉(Cyprinella spiloptera)重復(fù)序列進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析, 發(fā)現(xiàn)其地理群體間重復(fù)序列頻率存在顯著差異; Cesaroni等[40]對(duì)2個(gè)群體的歐洲鱸魚(Dicentrarchus labrax)的線粒體重復(fù)序列進(jìn)行分析, 發(fā)現(xiàn)串聯(lián)重復(fù)序列頻率能夠較好的將 2個(gè)群體區(qū)分開; 但Miracle和Campton[41]對(duì)尖吻鱘(Acipenser oxyrhynchus desotoi)的線粒體重復(fù)序列進(jìn)行分析, 沒有發(fā)現(xiàn)重復(fù)序列頻率與地理分布存在相關(guān)性。Li等[23]利用線粒體DNA控制區(qū)序列對(duì)中國近海5個(gè)黃鯽群體進(jìn)行遺傳學(xué)分析, 結(jié)果顯示東海海域與黃海海域黃鯽群體間不存在顯著的遺傳差異; 張博[24]利用微衛(wèi)星標(biāo)記方法對(duì)中國近海5個(gè)黃鯽群體進(jìn)行分析, 發(fā)現(xiàn)東海海域與黃海海域黃鯽群體間存在顯著的遺傳分化; Xu等[25]利用線粒體 DNA控制區(qū)序列對(duì)中國近海 7個(gè)黃鯽群體進(jìn)行遺傳學(xué)分析,發(fā)現(xiàn)中國沿海黃鯽群體可分為黃渤海組群、東海組群和南海組群, 各組群間存在較大的遺傳差異。在本研究中, 對(duì)黃鯽控制區(qū)重復(fù)序列頻率進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析, 卡方檢驗(yàn)結(jié)果顯示北部灣群體與其他 6個(gè)群體間差異極顯著, 這一結(jié)果與Xu等[25]的研究結(jié)果相似, 佐證了南海組群與其他組群存在遺傳差異, 但并未發(fā)現(xiàn)東海海域群體與黃渤海海域群體間的遺傳差異。僅通過重復(fù)序列頻率不能將北部灣群體與其他群體完全區(qū)分, 重復(fù)序列頻率可能作為一種補(bǔ)充和輔助手段用于群體遺傳學(xué)研究。

        致謝:

        感謝孫典榮研究員、李龍、李淵為本研究采集黃鯽樣品!

        [1] Buonnacorsi V P, McDowell J R, Graves J E. Reconciling patterns of inter-ocean molecular variance from four classes of molecular markers in blue marlin (Makaira nigricans) [J]. Molecular Ecology, 2001, 10(5): 1179—1196

        [2] Domingues V S, Faria C, Stefanni S, et al. Genetic divergence in the Atlantic-Mediterranean Montagu’s blenny, Coryphoblennius galerita (Linnaeus 1758) revealed by molecular and morphological characters [J]. Molecular Ecology, 2007, 16(17): 3592—3605

        [3] Engelbrecht C C, Freyhof J, Nolte A, et al. Phylogeography of the bullhead Cottus gobio (Pisces: Teleostei: Cottidae) suggests a pre-Pleistocene origin of the major central European populations [J]. Molecular Ecology, 2000, 9(6): 709—722

        [4] Whitehead A, Anderson S L, Kuivila K M, et al. Genetic variation among interconnected populations of Catostomus occidentalis: implications for distinguishing impacts of contaminants from biogeographical structuring [J]. Molecular Ecology, 2003, 12(10): 2817—2833

        [5] Birt T P, Green J M, Davidson W S. Mitochondrial DNA variation reveals genetically distinct sympatric populations of anadromous and nonanadromous Atlantic salmon, Salmo salar [J]. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 1991, 48(4): 577—582

        [6] Xiao W H, Zhang Y P. Genetics and evolution of mitochondrial DNA in fish [J]. Acta Hydrobiologica Sinica, 2000, 24(4): 384—391 [肖武漢, 張亞平. 魚類線粒體DNA的遺傳與進(jìn)化. 水生生物學(xué)報(bào), 2000, 24(4): 384—391]

        [7] Liu H Z. The structure and evolution of mitochondrial DNA control region of fish: focus on Acheilognathinae fish [J]. Progress in Natural Science, 2002, 12(3): 266—270 [劉煥章.魚類線粒體DNA控制區(qū)的結(jié)構(gòu)和進(jìn)化: 以魚類為例.自然科學(xué)進(jìn)展, 2002, 12(3): 266—270]

        [8] Zhu S H, Zheng W J, Zou J X, et al. Mitochondrial DNA control region structure and molecular phylogenetic relationship of Carangidae [J]. Zoological Research, 2007, 28(6): 606—614 [朱世華, 鄭文娟, 鄒記興, 等. 鲹科魚類線粒體DNA控制區(qū)結(jié)構(gòu)及系統(tǒng)發(fā)育關(guān)系. 動(dòng)物學(xué)研究, 2007, 28(6): 606—614]

        [9] Zhu T J, Yang J Q, Tang W Q. MtDNA control region sequence structure of the genus Coilia in Yangtze River estuary [J]. Journal of Shanghai Fisheries University, 2008, 17(2): 152—157 [諸廷鈞, 楊金權(quán), 唐文喬. 長江口鱭屬魚類線粒體 DNA控制區(qū)結(jié)構(gòu)分析. 上海水產(chǎn)大學(xué)學(xué)報(bào), 2008, 17(2): 152—157]

        [10] Xie Z Y, Du J Z, Chen X Q, et al. The significance of mitochondrial control region (D-loop) in intraspecific genetic differentiation of fish [J]. Hereditas, 2006, 28(3): 362—368 [謝振宇, 杜繼增, 陳學(xué)群, 等. 線粒體控制區(qū)在魚類種內(nèi)遺傳分化中的意義. 遺傳, 2006, 28(3): 362—368]

        [11] Liu H L, Zhang Q, Tang Y L, et al. Structure and genetic diversity of mtDNA D-Loop sequences among Trachidermus fasciatus stocks in Yellow Sea and Bohai Sea of China [J]. Marine Science Bulletin, 2010, 29(3): 283—288 [劉海林,章群, 唐優(yōu)良, 等. 黃渤海松江鱸魚線粒體控制區(qū)結(jié)構(gòu)與序列多態(tài)性分析. 海洋通報(bào), 2010, 29(3): 283—288]

        [12] Tan W, Guo Y S, Wang Z D, et al. Structure of the mitochondrial DNA control region of snapper species and their phylogenetic relationship [J]. Acta Oceanologica Sinica, 2010, 32(1): 139—145 [譚圍, 郭昱嵩, 王中鐸, 等. 笛鯛魚類的線粒體DNA控制區(qū)結(jié)構(gòu)及其系統(tǒng)發(fā)育分析. 海洋學(xué)報(bào), 2010, 32(1): 139—145]

        [13] Zhang Y, Zhang E, He S P. Studies on the structure of the control region of the bagridae in China and its phylogenetic significance [J]. Acta Hydrobiologica Sinica, 2003, 27(5): 463—467 [張燕, 張鶚, 何舜平. 鲿中國 科魚類線粒體DNA控制區(qū)結(jié)構(gòu)及其系統(tǒng)發(fā)育分析. 水生生物學(xué)報(bào), 2003, 27(5): 463—467]

        [14] Zhang S M, Deng H, Wang D Q, et al. Mitochondrial DNA length variation and heteroplasmy in Chinese sturgeon (Acipenser sinensis) [J]. Acta Genetica Sinica, 1999, 26(5): 489—496 [張四明, 鄧懷, 汪登強(qiáng), 等. 中華鱘(Acipenser sinensis)mtDNA個(gè)體間的長度變異與個(gè)體內(nèi)的長度異質(zhì)性. 遺傳學(xué)報(bào), 1999, 26(5): 489—496]

        [15] He C B, Cao J, Liu W D, et al. Structure analysis of mtDNA control region of spotted halibut (Verasper variegatus) and its related species [J]. Hereditas, 2007, 29(7): 829—836 [赫崇波, 曹潔, 劉衛(wèi)東, 等. 圓斑星鰈及相關(guān)種類線粒體DNA控制區(qū)結(jié)構(gòu)分析. 遺傳, 2007, 29(7): 829—836]

        [16] Rand D M, Harrison R G. Molecular population genetics of mtDNA size variation in crickets [J]. Genetics, 1989, 121(3): 551—569

        [17] Cheng Q T, Zhou C W. The Fishes of Shandong Province [M]. Jinan: Shandong Science and Technology Press 1997, 81 [成慶泰, 周才武. 山東魚類志. 濟(jì)南: 山東科學(xué)技術(shù)出版社. 1997, 81]

        [18] Gu H. Feeding habits and food composition of scaly half-fin anchovy, Setipinna taty (C et V) in the Bohai Sea [J]. Chinese Journal of Oceanology and Limnology, 1990, 8(3): 280—289

        [19] Guo B, Zhang B, Dai F Q, et al. Diet composition and ontogenetic variation in feeding habits of juvenile Setipinna taty in the Haizhou Bay [J]. Journal of Fisheries of China, 2010, 34(6): 921—927 [郭斌, 張波, 戴芳群, 等. 海洲灣黃鯽幼魚的食性及其隨叉長的變化. 水產(chǎn)學(xué)報(bào), 2010, 34(6): 921—927]

        [20] Liu Y, Cheng J H, Li S F. A study on the distribution of Setipinna taty in the East China Sea [J]. Marine Fisheries, 2004, 26(4): 255—260 [劉勇, 程家驊, 李圣法. 東海區(qū)黃鯽數(shù)量分布特征的分析研究. 海洋漁業(yè), 2004, 26(4): 255—260]

        [21] Xiong Y, Tang J H, Liu P T, et al. Resource estimate on Setipinna taty in the southern Yellow Sea [J]. Oceanologia et Limnologia Sinica, 2009, 40(4): 500—505 [熊瑛, 湯建華,劉培廷, 等. 黃海南部黃鯽(Setipinna taty)資源利用分析.海洋與湖沼, 2009, 40(4): 500—505]

        [22] Guo A, Zhou Y D, Jin H W, et al. Seasonal changes on food composition and feeding habitat of Colilia mystus (Linnaeus)in the east China sea [J]. Modern Fisheries Information, 2010, 25(8): 10—13 [郭愛, 周永東, 金海衛(wèi), 等. 東海黃鯽的食物組成和食性的季節(jié)變化. 現(xiàn)代漁業(yè)信息, 2010, 25(8): 10—13]

        [23] Li H, Xu T J, Cheng Y, et al. Genetic diversity of Setipinna taty (Engraulidae) populations from the China Sea based on mitochondrial DNA control region sequences [J]. Genetics and Molecular Research, 2012, 11(2): 1230—1237

        [24] Zhang B. Analysis of genetic diversity in Setipinna taty germplasms [D]. Thesis for Master of Science. Zhejiang Ocean University, Zhoushan. 2013 [張博. 黃鯽分子標(biāo)記開發(fā)及遺傳多樣性分析. 碩士學(xué)位論文, 浙江海洋學(xué)院, 舟山. 2013]

        [25] Xu S Y, Song N, Lu Z C, et al. Genetic variation in scaly hair-fin anchovy Setipinna tenuifilis (Engraulididae) based on the mitochondrial DNA control region [J]. Mitochondrial DNA, doi: 10.3109/19401736.2013.845754

        [26] Mathews D H, Disney M D, Childs J L, et al. Incorporating chemical modification constraints into a dynamic programming algorithm for prediction of RNA secondary structure [J]. Proceedings of National Academy of Scicences of the United States of America, 2004, 101(19): 7287—7292

        [27] Birky C W, Fuerst P, Maruyama T. Organelle gene diversity under migration, mutation and drift: equilibrium expectations, approach to equilibrium, effects of heteroplasmic cells, and comparisons to nuclear genes [J]. Genetics, 1989, 121(3): 613—627

        [28] Lewontin R C. The apportionment of human diversity [J]. Evolutionary Biology, 1972, 6: 381—398

        [29] Buroker N E, Brown J R, Gilbert T A, et al. Length heteroplasmy of sturgeon mitochondrial DNA: An illegitimate elongation model [J]. Genetics, 1990, 124(1): 157—163

        [30] Saccone C, Pesole G, Sbisa E. The main regulatory region of mammalian mitochondrial DNA: structure-function model and evolutionary pattern [J]. Journal of Molecular Evolution, 1991, 33(1): 83—91

        [31] Southern S O, Southern P J, Dizon A E. Molecular characterization of a clone dolphin mitochondrial genome [J]. Journal of Molecular Evolution, 1988, 28(1—2): 32—42

        [32] Randi E, Lucchini V. Organization and evolution of the mitochondrial DNA control region in the avian genus alectoris [J]. Journal of Molecular Evolution, 1998, 47(4): 449—462

        [33] Hoelzel A R, Hancock J M, Dover G A. Generation of VNTRs and heteroplasmy by sequence turnover in the mitochondrial control region of two elephant seal species [J]. Journal of Molecular Evolution, 1993, 37(2): 190—197

        [34] Wilkinson G S, Chapman A M. Length and sequence variation in evening bat d-loop mtDNA [J]. Genetics, 1991, 128(3): 607—617

        [35] Hayashi J I, Tagashira I, Yoshida M C. Absence of extensive recombination between inter and intra-species mitochondrial DNA in mammalian cells [J]. Experimental Cell Research, 1985, 160(2): 387—395

        [36] Broughton R E, Dowling T E. Evolutionary dynamics of tandem repeats in the mitochondrial DNA control region of the minnow Cyprinella spiloptera [J]. Molecular Biology and Evolution, 1997, 14(12): 1187—1196

        [37] Levinson G, Gutman G A. Slipped-strand mispairing: A major mechanism for DNA sequence evolution [J]. Molecular Biology and Evolution, 1987, 4(3): 203—221

        [38] Stepien C A, Dillon A K, Chandler M D. Evolutionary relationships, phylogeography, and genetic identity of the ruffe Gymnocephalus in the North American Great Lakes and Eurasia from mtDNA control region sequences [J]. Journal of Great Lakes Research, 1998, 24: 361—378

        [39] Broughton R E, Dowling T E. Evolutionary dynamics of tandem repeats in the mitochondrial DNA control region of the minnow Cyprinella spiloptera [J]. Molecular Biology and Evolution, 1997, 14(12): 1187—1196

        [40] Cesaroni D, Venazetti F, Allegrucci G, et al. Mitochondrial DNA length variation and heteroplasmy in natural populations of the European sea bass, Dicentrarchus labrax [J]. Molecular Biology and Evolution, 1997, 14(5): 560—568

        [41] Miracle A L, Campton D E. Tandem repeat sequence variation and length heteroplasmy in the mitochondrial DNA D-loop of the threatened Gulf of Mexico sturgeon, Acipenser oxyrhynchus desotoi [J]. Journal of Heredity, 1995, 86(1): 22—27

        MITOCHONDRIAL DNA CONTROL REGION STRUCTURE AND LENGTH POLYMORPHISM ANALYSIS OF SETIPINNA TENUIFILIS

        CAI Shan-Shan1, XU Sheng-Yong1, SONG Na1, GAO Tian-Xiang1and ZHANG Zhao-Hui2
        (1. Institute of Evolution & Marine Biodiversity, Ocean University of China, Qingdao 266003, China; 2. The First Institute of Oceanography, State Oceanic Administration, Qingdao 266061, China)

        黃鯽; 控制區(qū); 結(jié)構(gòu); 串聯(lián)重復(fù)序列; 長度多態(tài)性

        Setipinna tenuifilis; control region; Structure; Tandem repeat sequence; Length polymorphism

        Q346+.5

        A

        1000-3207(2014)05-0980-07

        2014-04-09;

        2014-06-13

        國家海洋公益性行業(yè)科研專項(xiàng)經(jīng)費(fèi)項(xiàng)目(201305030, 201405010); 中央高?;究蒲袠I(yè)務(wù)費(fèi)專項(xiàng)資金項(xiàng)目(201262022)資助

        蔡珊珊(1990—), 女, 山東濰坊人, 碩士研究生, 主要從事漁業(yè)生態(tài)學(xué)研究。E-mail: cssrsjzdw110@163.com

        張朝暉(1970—), 男, 副研究員; E-mail: zhang@fio.org.cn

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