陳聲波,劉子豪,杜 彬
(暨南大學(xué)醫(yī)學(xué)院病理教研室,廣東廣州510632)
膠質(zhì)瘤是中樞神經(jīng)系統(tǒng)最常見的惡性腫瘤,大多惡性程度高、侵襲性強(qiáng)。膠質(zhì)瘤干細(xì)胞(glioma stem cells,GSCs)抵抗治療已成為膠質(zhì)瘤久治不愈和復(fù)發(fā)的主要原因。近年來的研究提示,Notch 信號通路參與調(diào)控GSCs 形成、維持以及放化療耐受。本文旨在闡述Notch 信號通路及其在GSCs 的調(diào)控作用機(jī)制。
Notch 是一個高度保守的信號通路,在無脊椎動物和脊椎動物中廣泛存在。它調(diào)控著細(xì)胞增殖、細(xì)胞命運(yùn)、細(xì)胞分化和細(xì)胞死亡。哺乳動物表達(dá)4個跨膜Notch 受體:Notch-1,Notch-2,Notch-3 和Notch-4,5 個經(jīng)典的跨膜配體:Delta-like 1,Delta-like 3,Delta-like 4,Jagged1 和Jagged2,Notch 信號通路可通過經(jīng)典途徑和非經(jīng)典途徑激活[1-2]。
經(jīng)典途徑中,相鄰細(xì)胞間的Notch 受體和配體結(jié)合后,通過兩步的蛋白酶裂解反應(yīng)產(chǎn)生Notch 蛋白活化形式-胞內(nèi)段(Notch intracellular domain,NICD)。第1 次蛋白酶裂解反應(yīng)發(fā)生在Notch 受體胞外區(qū),由TACE(tumor necrosis factor-a-converting enzyme)介導(dǎo)。第2 次蛋白酶裂解由γ-secretase 介導(dǎo)產(chǎn)生NICD。NICD 進(jìn)入核內(nèi)與DNA 結(jié)合轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)因子CSL(CBF-1/RBP-jk,Su(H),Lag-1)結(jié)合,招募共同激活物(Co-Activation,Co-A)如MAML1-3,將轉(zhuǎn)錄復(fù)合物從抑制狀態(tài)轉(zhuǎn)變?yōu)榧せ顮顟B(tài),進(jìn)而激活Notch 靶基因HES/ESR/HEY 轉(zhuǎn)錄表達(dá),產(chǎn)生相應(yīng)的生物學(xué)效應(yīng)[1]。
非經(jīng)典途徑中,不需釋放NICD 或CBF-1 的作用,而通過JNK,Shh 和Wnt 下游效應(yīng)蛋白直接激活Hes-1/Hairy-1 的表達(dá)[2]。這種與其他通路相互作用的激活方式,從側(cè)面反映了Notch 信號通路極其復(fù)雜。
GSCs 是從腦膠質(zhì)瘤中分離出的一群具有神經(jīng)干細(xì)胞樣生物學(xué)特性的細(xì)胞,該群細(xì)胞在含生長因子的無血清培養(yǎng)基中形成神經(jīng)球,神經(jīng)球在血清培養(yǎng)基中分化為成熟的神經(jīng)細(xì)胞,在免疫缺陷的小鼠種植模型能夠形成實體瘤[3]。這些說明該群細(xì)胞具有自我更新、多分化潛能和體內(nèi)成瘤的特性。因其具有干細(xì)胞特性稱之為GSCs。Notch 信號通路參與神經(jīng)形成、神經(jīng)干細(xì)胞增殖和維持[4-5],而GSCs與神經(jīng)干細(xì)胞具有許多相同的特性,提示兩者存在著共同的調(diào)控通路-Notch 信號通路。另外,從膠質(zhì)瘤細(xì)胞系和膠質(zhì)母細(xì)胞瘤分離出的GSCs 均有不同程度的Notch 信號通路分子表達(dá)異常[8,19],說明Notch 信號通路在GSCs 中發(fā)揮著重要作用。結(jié)合近年研究,已確認(rèn)Notch 信號通路在GSCs 的形成、干性維持、放療和化療耐受中發(fā)揮重要作用,如圖1所示,以下將一一闡述。
圖1 Notch 信號通路參與GSCs 形成、維持、放化療耐受[1,15-16,21]Fig 1 Notch signaling is involved in GSCs' forming,maintaining and resisting to therapy
GSCs 來源有3 個:神經(jīng)干細(xì)胞,神經(jīng)祖細(xì)胞和神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞[6]。有研究提示,Notch 信號通路可能在神經(jīng)干細(xì)胞轉(zhuǎn)變?yōu)镚SCs 過程中起重要作用。對從轉(zhuǎn)基因鼠中分離的出高表達(dá)N2ICD(Notch2 激活后的活性胞內(nèi)段)的神經(jīng)干細(xì)胞進(jìn)行研究,與對照組的神經(jīng)干細(xì)胞相比,高表達(dá)N2ICD 的神經(jīng)干細(xì)胞具有更強(qiáng)的增殖和抗凋亡能力,并且更傾向于分化為星形膠質(zhì)細(xì)胞[7]。這種高表達(dá)N2ICD 的神經(jīng)干細(xì)胞獲得了GSCs 的特性,如更強(qiáng)的增殖和抗凋亡能力,提示Notch 信號通路中的N2ICD 參與神經(jīng)干細(xì)胞轉(zhuǎn)變?yōu)镚SCs。另外,穩(wěn)定轉(zhuǎn)染高表達(dá)NICD的SHG-44 細(xì)胞在含生長因子培養(yǎng)基的增殖能力和單克隆集落形成能力明顯高于對照組,提示Notch信號通路促進(jìn)膠質(zhì)瘤的GSCs 細(xì)胞形成或(和)維持[8]。在炎性反應(yīng)與膠質(zhì)瘤形成和進(jìn)展關(guān)系的研究中,IRF-IL6 炎性反應(yīng)信號可通過誘導(dǎo)GSCs 的形成和血管生成參與到膠質(zhì)瘤的形成和進(jìn)展,而GSCs的形成則是IRF-IL6 過量表達(dá)后,通過JAK-STAT 介導(dǎo)Jagged-Notch 信號通路激活,賦予膠質(zhì)瘤細(xì)胞“干性”的結(jié)果[9]。以上研究均表明Notch 信號通路參與到GSCs 的形成,但其具體分子機(jī)制有待進(jìn)一步闡明。
GSCs 的維持是通過促進(jìn)自我更新和增殖,抑制分化實現(xiàn)的。大量研究均表明,Notch 信號通路參與到GSCs 的維持。GSCs 存在Notch 信號通路的異常激活,用GSIs(γ-secretase inhibitors)阻斷Notch 通路后,GSCs 表達(dá)Hes1 和Hes5 下調(diào),增殖和自我更新能力均降低,并分化成中間神經(jīng)祖細(xì)胞和各種神經(jīng)細(xì)胞[10],其標(biāo)志分子CD133、BMI-1 和OLIG-2 也表達(dá)下降,且經(jīng)GSIs 處理后,GSCs 的致瘤性完全消失;另外GSI-18 能顯著延長原位膠質(zhì)瘤動物模型的存活時間[11]。這些研究都表明Notch 信號通路通過促進(jìn)增殖和自我更新以及抑制分化參與GSCs 的維持。
但Notch 信號通路參與GSCs 維持調(diào)控的具體機(jī)制至今仍不太清楚。有研究提示Notch-1 激活在GSCs 的維持和增殖中起到重要作用。Notch-1信號通路激活ERK,繼而通過Shh-Gli-Nanog 調(diào)控網(wǎng)絡(luò)促進(jìn)GSCs 的自我更新[12]。用小分子干擾RNA 阻斷GSCs 的Notch-1 表達(dá),GSCs 增殖能力明顯下降,體外移植瘤明顯減小,動物模型的存活時間明顯延長[13]。這些都說明Notch-1 信號通路的激活在GSCs 的維持中起促進(jìn)作用。除了Notch-1信號通路外,人腦微血管內(nèi)皮細(xì)胞在GSCs 的維持和生長中也發(fā)揮重要作用。在研究GSCs 與其周圍血管微環(huán)境的關(guān)系中,用GSIs 阻斷Notch 信號通路后,膠質(zhì)瘤周圍的血管內(nèi)皮缺失,GSCs 神經(jīng)球生長明顯受抑制,GSCs 數(shù)量減少和功能受損[14],提示腫瘤周圍血管內(nèi)皮在Notch 信號通路調(diào)節(jié)GSCs 自我更新中起重要作用,而其作用的發(fā)揮是通過提供Notch 配體,激活含有Notch 受體的GSCs,促進(jìn)腫瘤血管周圍微環(huán)境形成,進(jìn)而促進(jìn)GSCs 的自我更新和維持[15]。至于內(nèi)皮細(xì)胞表達(dá)Notch 配體的機(jī)制,可能與GSCs 分泌的VEGF 促進(jìn)內(nèi)皮表達(dá)Notch 配體有關(guān)[16]。
與膠質(zhì)瘤細(xì)胞相比,GSCs 更耐受化療和放療,這是膠質(zhì)瘤治療后復(fù)發(fā)的基礎(chǔ)。GSCs 主要通過增加表達(dá)藥物外排轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白,增強(qiáng)DNA 損傷修復(fù)反應(yīng),降低細(xì)胞凋亡信號的敏感性,增加生長因子表達(dá)和轉(zhuǎn)錄的調(diào)節(jié)活動來抵抗治療[17]。
Notch 信號通路參與到GSCs 抵抗化療過程。替莫唑胺(temozolomide,TMZ)是膠質(zhì)瘤化療常用藥,用TMZ 處理膠質(zhì)瘤細(xì)胞后,能顯著減少干細(xì)胞培養(yǎng)基中形成的膠質(zhì)瘤神經(jīng)球,然而,仍有一小部分細(xì)胞存活下來,存活下來的細(xì)胞可以看成是GSCs,它們不再對TMZ 敏感,增殖形成神經(jīng)球[18];此時的GSCs 上調(diào)表達(dá)NOTCH-1,NCOR-2 和GLI-1,表明Notch 和Shh 信號通路激活參與GSCs 抗化療[19]。在此基礎(chǔ)上,加用GSIs 或Shh 通路阻斷劑處理,能顯著減少TMZ 處理后再次形成的神經(jīng)球,提示阻斷Notch 信號通路能增加GSCs 對化療藥物的敏感性。至于Notch 通路是通過什么分子機(jī)制抵抗化療,至今仍不太清楚。有研究表明Dll-4 異常高表達(dá)通過促進(jìn)腫瘤營養(yǎng)血管的生成參與膠質(zhì)瘤抗VEGF 抑制劑治療[20]。還有研究表明,Notch信號通路激活后,通過上調(diào)上皮間質(zhì)樣轉(zhuǎn)化(epithelial-to-mesenchymal transition,EMT)標(biāo)志物slug、snail、twist 和ZEB1/2,下調(diào)E-cadherin,促進(jìn)EMT和腫瘤干細(xì)胞形成,進(jìn)而參與到腫瘤的復(fù)發(fā)和耐藥[21]。這些都提示Notch 信號通路參與GSCs 抗化療的機(jī)制十分復(fù)雜,需要投入更多的研究才能進(jìn)一步闡明。
同樣,Notch 信號通路也被證實在GSCs 抗放療中發(fā)揮作用。在對GSCs 放療與Notch 信號通路的相關(guān)研究中,用GSIs 能增加放療誘導(dǎo)的細(xì)胞死亡,通過減少GSCs 增加膠質(zhì)瘤對放療的敏感性。而放療誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡的增加則由GSIs 降低AKt 活動和Mcl-1 水平所致。另外,通過慢性病毒介導(dǎo)GSCs 表達(dá)N1ICD 或N2ICD 時,能有效抵抗放療;而敲除Notch1 或Notch2 時能增加GSCs 對放療的敏感性[22-23]。這些都說明Notch 信號通路參與到GSCs的抗放療過程,而針對Notch 信號通路的治療有望逆轉(zhuǎn)放療耐受的境況。
Notch 在GSCs 的形成、維持以及化療和抗放療耐受中發(fā)揮重要作用,但其具體的機(jī)制仍不清楚。針對Notch 通路的相關(guān)治療已取得了初步成功,然而,由于缺乏靶向,同時影響正常細(xì)胞,其不良反應(yīng)較大[24]。因此,深入研究GSCs 中該通路的調(diào)控作用機(jī)制對開發(fā)以該信號通路為靶向的治療藥物具有重大意義。
[1]Kopan R.Notch signaling[J].Cold Spring Harb Perspect Biol,2012,4:1-4.
[2]Sanalkumar R,Dhanesh SB,James J.Non-canonical activation of Notch signaling/target genes in vertebrates[J].Cellular and molecular life sciences,2010,67:2957-2968.
[3]Singh SK,Hawkins C,Clarke ID,et al.Identification of human brain tumour initiating cells[J].Nature,2004,432:396-401.
[4]Faigle R,Song H.Signaling mechanisms regulating adult neural stem cells and neurogenesis[J].Biochimica et Biophysica Acta,2013:2435-2448.
[5]Imayoshi I,Sakamoto M,Yamaguchi M,et al.Essential roles of Notch signaling in maintenance of neural stem cells in developing and adult brains[J].J Neurosc,2010,30:3489-3498.
[6]Zong H,Verhaak RGW,Canoll P.The cellular origin for malignant glioma and prospects for clinical advancements[J].Expert Rev Mol Diagn,2012,12:383-394.
[7]Tchorz JS,Tome M,Cloёtta D,et al.Constitutive Notch2 signaling in neural stem cells promotes tumorigenic features and astroglial lineage entry[J].Cell Death Disease,2012,3:1-9.
[8]Zhang XP,Zheng G,Zou L,et al.Notch activation promotes cell proliferation and the formation of neural stem cell-like colonies in human glioma cells[J].Mol Cell Biochem,2008,307:101-108.
[9]Jin X,Kim SH,Jeon HM,et al.Interferon regulatory factor 7 regulates glioma stem cells via interleukin-6 and Notch signaling[J].Brain,2012:1055-1069.
[10]Hu YY,Zheng MH,Cheng G,et al.Notch signaling contributes to the maintenance of both normal neural stem cells and patient-derived glioma stem cells[J].BMC Cancer,2011,11:1-13.
[11]Fan X,Khaki L,Zhu TS,et al.NOTCH Pathway Blockade Depletes CD133-Positive Glioblastoma Cells and Inhibits Growth of Tumor Neurospheres and Xenografts[J].Stem cells,2010,28:5-16.
[12]Turchi L,Debruyne DN,Almairac F,et al.Tumorigenic potential of miR-18A* in glioma initiating cells requires NOTCH-1 signaling[J].Stem Cells,2013,31:1252-1265.
[13]Wang J,Wang C,Meng Q,et al.siRNA targeting Notch-1 decreases glioma stem cell proliferation and tumor growth[J].Mol Biol Rep,2012,39:2497-503.
[14]Hovinga KE,Shimizu F,Wang R,et al.Inhibition of Notch signaling in glioblastoma targets cancer stem cells via an endothelial cell intermediate[J].Stem Cells,2010,28:1019-1029.
[15]Zhu TS,Costello MA,Talsma CE,et al.Endothelial cells create a stem cell niche in glioblastoma by providing NOTCH ligands that nurture self-renewal of cancer stemlike cells[J].Cancer Res,2011,71:6061-6072.
[16]Gürsel D B,Berry N,Boockvar JA.The contribution of Notch signaling to glioblastoma via activation of cancer stem cell self-renewal:the role of the endothelial network[J].Neurosurgery,2012,70:19-21.
[17]Schmalz PG,Shen MJ,Park JK.Treatment resistance mechanisms of malignant glioma tumor stem cells[J].Cancers,2011:621-635.
[18]Gilbert CA,Daou MC,Moser RP,et al.Gamma-secretase inhibitors enhance temozolo-mide treatment of human gliomas by inhibiting neurosphere repopulation and xenograft recurrence[J].Cancer Res,2010,70:6870-6879.
[19]Ulasov IV,Nandi S,Dey M,et al.Inhibition of Sonic hedgehog and Notch pathways enhances sensitivity of CD133(+ )glioma stem cells to temozolomidetherapy[J].Mol Med,2011,17:103-112.
[20]Li JL,Sainson RC,Oon CE,et al.DLL4-Notch signaling mediates tumor resistance to anti-VEGF therapy in vivo[J].Cancer Res,2011,71:6073-6083.
[21]Espinoza I,Miele L.Deadly crosstalk:Notch signaling at the intersection of EMT and cancer stem cells[J].Cancer Lett,2013,341:41-45.
[22]Lin J,Zhang XM,Yang JC,et al.γ-secretase inhibitor-I enhances radiosensitivity of glioblastoma cell lines by depleting CD133 + tumor cells[J].Arch Med Res,2010,41:519-529.
[23]Wang J,Wakeman TP,Lathia JD,et al.Notch promotes radioresistance of glioma stem cells[J].Stem Cells,2010,28:17-28.
[24]Takebe N,Nguyen D,Yang SX.Targeting Notch signaling pathway in cancer:Clinical development advances and challenges[J].Pharmacol Ther,2014,141:140-149.