朱 江,周立立,趙 亮,高燕軍,蔡 芫
細(xì)胞凋亡是一種以細(xì)胞DNA 早期降解為特征,具有特征性形態(tài)變化和生化改變的細(xì)胞主動(dòng)死亡過程,不同于細(xì)胞壞死過程[1]。在腦缺血性損傷發(fā)生發(fā)展過程中,損傷后遲發(fā)性神經(jīng)元死亡主要來源于凋亡途徑[2],凋亡神經(jīng)元的數(shù)量直接決定著神經(jīng)元壞死數(shù)量和缺血區(qū)域的面積,及時(shí)抑制凋亡是挽救凋亡前期神經(jīng)元的關(guān)鍵[3]。腦部缺血性疾病發(fā)生后,腦組織中自由基的過度產(chǎn)生是導(dǎo)致神經(jīng)元、血管內(nèi)皮細(xì)胞凋亡的主要因素。
依達(dá)拉奉(3-甲基-1-苯基-2-吡唑啉-5-酮,MCI-186)是一種有效的自由基清除劑。因其分子質(zhì)量小、脂溶性高,能阻斷氧化應(yīng)激,抑制脂質(zhì)過氧化[4],給藥后可抑制自由基的產(chǎn)生,從而減輕腦缺血引起的組織損傷,臨床上主要用于腦缺血疾病的治療[5,6]。
本實(shí)驗(yàn)將依達(dá)拉奉應(yīng)用于實(shí)驗(yàn)?zāi)P椭?,利用其清除自由基、抑制脂質(zhì)過氧化的藥理作用,探討自由基清除劑對大鼠延髓缺血神經(jīng)元、微血管的保護(hù)作用。
1.1 動(dòng)物與分組 SPF 級(jí)Wistar 成年健康雄性大鼠,220~260 g,購于河北醫(yī)科大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心。72 只大鼠隨機(jī)分為3 組:假手術(shù)組、實(shí)驗(yàn)組、缺血對照組。按時(shí)間點(diǎn)分為7 d、14 d 兩個(gè)亞組,每組6 只大鼠。
1.2 方法
1.2.1 延髓缺血模型制備 結(jié)扎右側(cè)頸總動(dòng)脈:10%水合氯醛腹腔注射麻醉(350 mg/kg),仰臥固定,頸部正中切口,鈍性分離胸鎖乳突肌,暴露分離出右側(cè)頸總動(dòng)脈并結(jié)扎切斷,檢查無活動(dòng)性出血后,用生理鹽水和青霉素(1×105U/L)沖洗后縫合傷口。電凝椎動(dòng)脈:大鼠俯臥固定,于后正中線第一頸椎水平處作縱形切口,沿中線分開肌層,暴露第一頸椎橫突孔,將高頻電刀的電凝刀頭插入橫突孔內(nèi)凝閉椎動(dòng)脈3~4 s,檢查無活動(dòng)性出血后,用生理鹽水和青霉素(1×105U/L)沖洗后縫合傷口。待清醒后,單籠保溫喂養(yǎng)。
1.2.2 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的干預(yù)方法 假手術(shù)組只暴露雙側(cè)椎動(dòng)脈及右側(cè)頸總動(dòng)脈,不做血管阻斷處理。實(shí)驗(yàn)組、缺血對照組均在阻斷雙側(cè)椎動(dòng)脈及右側(cè)頸總動(dòng)脈后立即開始治療。實(shí)驗(yàn)組每天腹腔注射依達(dá)拉奉兩次,時(shí)間間隔12 h,每次注射計(jì)量按3 mg/kg計(jì)算,到術(shù)后7 d 和14 d 兩個(gè)時(shí)間點(diǎn)分別處死,取延髓。缺血對照組每天腹腔注射生理鹽水兩次,時(shí)間間隔12 h,注射劑量為0.5 ml/次。到術(shù)后7 d 和14 d 兩個(gè)時(shí)間點(diǎn)分別處死,取延髓。
1.2.3 實(shí)驗(yàn)標(biāo)本制作 應(yīng)用10%水合氯醛(350 mg/kg),腹腔注射。仰臥位固定于鼠板上,快速剪開腹腔和胸腔的前壁,清晰的暴露出心臟,用連有輸液管的預(yù)先處理為鈍圓的針頭插入左心室內(nèi),快速輸入溫生理鹽水(37 ℃)100 ml,同時(shí)用眼科剪剪破右心耳,此時(shí)血液由右心耳處流出,待大鼠四肢末端變白,換上4%多聚甲醛(0.1 mol 磷酸鹽緩沖液配成pH 7.4)灌流固定。灌流結(jié)束后取出延髓,用冰生理鹽水沖洗,除去血液。石蠟包埋切片。
1.2.4 Tunel 法操作步驟(1)組織切片至于二甲苯Ⅰ、Ⅱ中各20 min,用無水乙醇洗2×3 min,95%乙醇、90%乙醇各洗一次,每次3 min,蒸餾水洗兩次;(2)將組織切片置于蛋白酶K(20 μg/ml,pH 7.4)溶液中,室溫孵育15 min;(3)0.01 mol/L PBS(pH 7.4)沖洗3 次;(4)擦干樣品周圍的水,滴加50 μl 的Tunel 反應(yīng)混合液溶液,在溫盒中37 ℃孵育60 min;(5)0.01 mol/L PBS(pH 7.4)沖洗3 次;(6)擦干樣品周圍的水份,加入50 μl 的轉(zhuǎn)化劑-POD,在溫盒中37 ℃孵育30 min;(7)0.01 mol/L PBS(pH 7.4)沖洗3 次;(8)加入50 μl 的DAB 底物溶液,室溫孵育10 min;(9)0.01 mol/L PBS(pH 7.4)沖洗3次;(10)依次分別用70%、95%、100%乙醇脫水,干燥;(11)二甲苯透明,中性樹膠封片。
1.2.5 尼氏染色主要步驟(1)組織貼片自然晾干;(2)無水乙醇+氯仿(1∶1)4 h;(3)100%乙醇(Ⅰ)3 min;(4)100%乙醇(Ⅱ)3 min;(5)95%乙醇3 min;(6)70% 乙醇3 min;(7)50% 乙醇3 min;(8)雙蒸水1 min;(9)1%甲苯胺藍(lán)染液,60 ℃恒溫箱內(nèi)染色50 min;(10)雙蒸水浸泡數(shù)遍;(11)50%乙醇1 min;(12)70%乙醇(含1%冰醋酸)數(shù)秒鐘,注意觀察切片分色情況;(13)95%乙醇(Ⅰ)1 min;(14)95%乙醇(Ⅱ)1 min;(15)100%乙醇(Ⅰ)1 min;(16)100%乙醇(Ⅱ)1 min;(17)二甲苯(Ⅰ)5 min;(18)二甲苯(Ⅱ)5 min;(19)中性樹膠封片。
1.2.6 神經(jīng)元計(jì)數(shù)及凋亡神經(jīng)元定量分析每只大鼠取3 張切片(片厚20 μm),每張切片在400 倍光鏡下隨機(jī)選取5 個(gè)視野,輸入醫(yī)學(xué)顯微圖像分析系統(tǒng)(MiVnt)進(jìn)行圖像處理。計(jì)數(shù)神經(jīng)元及凋亡神經(jīng)元,取其平均值為這只大鼠的神經(jīng)元及凋亡神經(jīng)元的細(xì)胞數(shù)。其中,凋亡神經(jīng)元在光鏡下呈現(xiàn)棕黃色[7]。
1.2.7 單寧酸-氯化鐵媒染法觀察微血管密度的變化 每只大鼠取3 張切片,采用Mivnt 圖像分析系統(tǒng)定量分析延髓微血管密度(microvesser density,MVD)。每張切片在100 倍光鏡下選5 個(gè)視野,計(jì)算MVD 值,取平均值作為該只大鼠延髓微血管的MVD 值。
1.2.8 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 用SPSS13.0 統(tǒng)計(jì)軟件包處理,數(shù)據(jù)用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,組間比較采用單因素方差分析,P<0.05 有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1 各組腦組織中神經(jīng)元數(shù)量的變化 通過對7 d、14 d 后實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的觀察,實(shí)驗(yàn)組及缺血對照組中神經(jīng)元的數(shù)量較假手術(shù)組明顯減少。實(shí)驗(yàn)組神經(jīng)元減少幅度在各時(shí)段均低于缺血對照組。同時(shí),實(shí)驗(yàn)組神經(jīng)元凋亡的幅度較缺血對照組的幅度低。與假手術(shù)組相比較有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(見表1、表2)。
2.2 各組腦組織中微血管密度(MVD)的變化通過對7 d、14 d 后實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的觀察,實(shí)驗(yàn)組及缺血對照組的微血管密度(MVD)值較假手術(shù)組均減少。但是,實(shí)驗(yàn)組MVD 數(shù)值減少的幅度低于缺血對照組。與假手術(shù)組相比較二者均有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(見表3)。
表1 各組大鼠腦組織中神經(jīng)元數(shù)量比較(±s)
表1 各組大鼠腦組織中神經(jīng)元數(shù)量比較(±s)
與假手術(shù)組比較* P<0.05,**P<0.01
表2 各組大鼠腦組織中神經(jīng)元凋亡數(shù)量比較(±s)
表2 各組大鼠腦組織中神經(jīng)元凋亡數(shù)量比較(±s)
與假手術(shù)組比較* P<0.05,**P<0.01
表3 各組大鼠腦組織中MVD 含量的比較(±s)
表3 各組大鼠腦組織中MVD 含量的比較(±s)
與假手術(shù)組比較* P<0.05,**P<0.01
細(xì)胞凋亡是真核細(xì)胞常見的死亡形式,是機(jī)體為維持自身穩(wěn)態(tài)而進(jìn)行的。凋亡細(xì)胞在細(xì)胞核和細(xì)胞質(zhì)結(jié)構(gòu)上常出現(xiàn)特征性改變,如DNA 斷裂、細(xì)胞核解體及凋亡小體形成等[8]。細(xì)胞凋亡的發(fā)生一方面與基因表達(dá)內(nèi)在性因素有關(guān),更重要的則與自由基、興奮性氨基酸等外在性因素有關(guān)[9],繼而引起遲發(fā)性神經(jīng)死亡[10]。
在延髓缺血后,出現(xiàn)神經(jīng)元數(shù)量及微血管密度的減少。在缺血條件下,神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞大量增生填充于壞死區(qū)域,從而進(jìn)一步影響到微循環(huán),引起局部微循環(huán)障礙。進(jìn)一步加重神經(jīng)元的缺血,繼而引起遲發(fā)性神經(jīng)元死亡,出現(xiàn)大量神經(jīng)元胞體凋亡。
通過本實(shí)驗(yàn)結(jié)果可見,實(shí)驗(yàn)組延髓組織的神經(jīng)元減少的數(shù)量、凋亡神經(jīng)元的數(shù)量均低于缺血對照組,提示依達(dá)拉奉可通過清除自由基抑制神經(jīng)元凋亡從而起到保護(hù)神經(jīng)元的作用。實(shí)驗(yàn)組中延髓組織內(nèi)微血管密度較缺血對照組高,說明依達(dá)拉奉在延髓缺血過程中通過清除自由基,減輕了微血管內(nèi)皮細(xì)胞損傷,進(jìn)一步維持神經(jīng)元單元內(nèi)部的穩(wěn)態(tài)結(jié)構(gòu)。
本實(shí)驗(yàn)結(jié)果提示,延髓缺血后由于自由基產(chǎn)生,改變了神經(jīng)元及微血管所處內(nèi)環(huán)境的穩(wěn)態(tài)結(jié)構(gòu),出現(xiàn)病灶局部微循環(huán)改變,出現(xiàn)遲發(fā)性神經(jīng)元死亡。依達(dá)拉奉通過清除自由基,抑制凋亡發(fā)生,減輕血管內(nèi)皮細(xì)胞損害,改善了微循環(huán)障礙,發(fā)揮了對神經(jīng)細(xì)胞的保護(hù)作用。
[1]陳力學(xué),姜利人,劉寶松,等.全腦缺血再灌注后神經(jīng)元凋亡的時(shí)相和分布特征[J].第三軍醫(yī)大學(xué)學(xué)報(bào),2006,3(28):531-534.
[2]蘭希發(fā),姚文秀,郭 陽.腦缺血再灌注后神經(jīng)細(xì)胞凋亡的機(jī)制[J].中國臨床康復(fù),2003,7(19):2726-2727.
[3]李小剛,朱 克,李 楠,等.谷氨酸對鈣離子內(nèi)流和凋亡的影響及谷氨酸受體拮抗劑保護(hù)作用的研究[J].中華老年心腦血管雜志,2001,3(2):122-125.
[4]Watanabe T,Tanaka M,Watanabe K,et al.Research and develepment of the free radical scavenger edaravone as a neuroprotectant[J].Yakugaku Zasshi,2004,124(3):99-111.
[5]Yoshida H,Yanai H,Namkiy S,et al.Neuro protective effects of edaravone a novel free radical scavenger in cerebrovascular injury[J].CNS Drug Rev,2006,12(1):9-20.
[6]Ding HY,Dong Q.The therapeutic effects of free radical scavenger edaravone on cerebral ischemia[J].Cerebrovasc Dis Foreign Med Sci,2004,12(7):491-493.
[7]Blondeau N,Laurizen I,Widman C,et al.A potent protective role of lysophospho lipids against global cerebral ischemia and glutamate excite toxicity in neuronal cultures[J].J Cereb Blood Flow Metab,2002,22(10):1205-1211.
[8]Chim KA,Drummond C,Coled J,et al.Effect of isoflurance on neuronal apoptosis in rats subjected to focal cerebral is chemia[J].Anesth Analg,2004,98(3):798-805.
[9]陳 津,張如松.細(xì)胞凋亡機(jī)制概述[J].中華中醫(yī)藥學(xué)刊,2011,29(4):886-889.
[10]尹昌林,熊建瓊,文 亮.Caspase-3 在缺血再灌注大鼠腦海馬神經(jīng)元凋亡中作用的實(shí)驗(yàn)研究[J].第三軍醫(yī)大學(xué)學(xué)報(bào),2004,26(4):1245-1247.