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        神經(jīng)源性肌萎縮病理動物模型的制備

        2014-03-06 07:09:07遼寧省基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)研究所110101車光昇郭源秩宋光熠
        遼寧醫(yī)學(xué)雜志 2014年5期
        關(guān)鍵詞:肌萎縮動物模型源性

        遼寧省基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)研究所(110101)車光昇 郭源秩 宋光熠

        神經(jīng)源性肌萎縮常見的原因為廢用、營養(yǎng)障礙、缺血和中毒。脊髓前角病變、神經(jīng)根、神經(jīng)叢、周圍神經(jīng)的病變等均可引起神經(jīng)興奮沖動的傳導(dǎo)障礙,從而使部分肌纖維廢用,產(chǎn)生廢用性肌萎縮。常見的疾病有:脊椎椎骨骨質(zhì)增生、椎間盤病變、脊神經(jīng)腫瘤、蛛網(wǎng)膜炎、神經(jīng)炎、神經(jīng)叢病變、脊神經(jīng)腫瘤、神經(jīng)損傷、脊髓空洞癥、運動神經(jīng)元性疾病、格林-巴利綜合征、腦部病變和脊髓病變等。本文試用大鼠坐骨神經(jīng)雙重結(jié)扎的方法復(fù)制神經(jīng)源性肌萎縮動物模型。

        1 材料與方法

        1.1 動物 SPF級SD大鼠(體重190~210)g(遼寧長生生物技術(shù)有限公司)。實驗動物許可證為遼寧省科學(xué)技術(shù)廳簽發(fā),許可證號:SCXK(遼)2010~0001。

        1.2 方法 SD大鼠20只,隨機(jī)分為對照組和實驗組,每組10只,雌雄各半。實驗組腹腔注射3%戊巴比妥鈉35mg/kg,麻醉后剪開左側(cè)臀部皮膚,縱向分離臀部肌肉,暴露并分離坐骨神經(jīng),雙重結(jié)扎坐骨神經(jīng),間距1cm,縫合皮膚。對照組為假手術(shù)組,未做結(jié)扎余操作同前。飼養(yǎng)4周后處死,剝離大鼠雙后肢皮膚,從膝關(guān)節(jié)和踝關(guān)節(jié)處剪下后小腿稱重,計算左腿萎縮百分比【(右側(cè)重量-左側(cè)重量)÷右側(cè)重量×100%】,取小腿肌肉做病理檢查。

        2 結(jié)果

        實驗組左側(cè)后肢小腿大體觀察明顯發(fā)生萎縮,左腿萎縮百分比為(48.7±8.2)%。光鏡下肌纖維直徑及橫截面積明顯縮小。對照組左右后肢小腿無明顯差異。

        3 討論

        復(fù)制肌萎縮的動物模型的方法有常用模型,有尾部懸吊、肢體固定、去神經(jīng)和去肌肉或肌腱、局部藥物注射[1-4],上述方法各有優(yōu)缺點。肌肉萎縮的發(fā)生機(jī)理有神經(jīng)營養(yǎng)障礙學(xué)說、神經(jīng)沖動減退學(xué)說、氧化應(yīng)激學(xué)說。此外,肌肉代謝的紊亂、肌肉張力與緊張性的降低以及細(xì)胞凋亡等在廢用性肌肉萎縮的發(fā)生中可能都具有一定的作用,因此推測,肌肉萎縮的發(fā)生實質(zhì)上是由多源性因素引起的[5]。我們采用雙重結(jié)扎坐骨神經(jīng)復(fù)制神經(jīng)源性肌萎縮動物模型,其具有操作的可控性,符合多數(shù)神經(jīng)源性肌萎縮為慢性、漸進(jìn)性的病理過程。

        檢測指標(biāo)除光鏡和電鏡的病理改變還可檢測以下相關(guān)指標(biāo):1)過氧化指標(biāo):如丙二醛(MDA)、超氧化物歧化酶(SOD)、過氧化氫酶(CAT)、谷胱甘肽過氧化物酶(GSH-px)、羥自由基(HFR)等。2)細(xì)胞凋亡指標(biāo):如腫瘤壞死因子-α(TNF-α)、半胱天冬酶-3(Caspase-3)等。3)神經(jīng)營養(yǎng)指標(biāo):胰島素樣生長因子-I(IGF-I)、生長激素(GH)、神經(jīng)生長因子(NGF)、神經(jīng)營養(yǎng)素3(NT-3)等。4)神經(jīng)沖動傳導(dǎo)指標(biāo):乙酰膽堿(ACH)、乙酰膽堿酯酶(AchE)、Ca2+-ATP酶(Ca2+-ATPase)等。

        目前肌萎縮主要的防治措施為功能鍛煉、適宜的電刺激、藥物,如具有促進(jìn)合成代謝作用的激素類藥物生長素(GH)、胰島素樣生長因子I(IGFI);具有抑制氧化應(yīng)激反應(yīng)作用的抗氧化劑維生素E;Ca2+通道阻斷劑(如nifedipin);糖皮質(zhì)激素抑制劑。但治療效果并不十分明顯。

        [1]Morey-Holton ER,Globus RK.Hindlimb unloading of growing rats:a model for predicting skeletal changes during space flight[J].Bone,1998,22(5):83

        [2]Weinreb M,Rodan GA,Thompson DD.Depression of osteoblastic activity in immobilized limbs of suckling rats[J].J Bone Miner Res,1991,6(7):725

        [3]Rantakokko J,Uusitalo H,J?ms?T,et al.Expression profiles of mRNAs for osteoblast and osteoclast proteins as indicators of bone loss in mouse immobilization osteopenia model[J].J Bone Miner Res,1999,14(11):1934

        [4]Ma Yong-cheng,Hao Yong-qiang.Design and establishment of a rat model of experimental local muscular atrophy[J].Journal of Clinical Rehabilitative Tissue Engineering Research,2010,14(7):1223

        [5]邢國剛,樊小力,宋新愛.廢用性肌肉萎縮的研究[J].國外醫(yī)學(xué)物理醫(yī)學(xué)與康復(fù)學(xué)分冊,2000,20(4):145

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