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        普魯蘭酶的分離純化及部分酶學(xué)性質(zhì)

        2014-03-04 02:02:41周念波
        食品工程 2014年1期

        周念波

        (武漢生物工程學(xué)院生物工程系,湖北武漢430415)

        普魯蘭酶的分離純化及部分酶學(xué)性質(zhì)

        周念波*

        (武漢生物工程學(xué)院生物工程系,湖北武漢430415)

        對鹽球菌(Halococcus sp.)Z1、解淀粉芽孢桿菌(Bacillus amyloliquefaciens)和枯草芽孢桿菌(Bacillus subtilis)所產(chǎn)的普魯蘭酶粗酶液的耐熱耐酸性進行了比較研究,并采用(NH4)2SO4鹽析、透析、DEAE-Sephadex A25陰離子交換、Sephadex G-100凝膠過濾對Halococcus sp.Z1所產(chǎn)普魯蘭酶進行分離純化,并測定了其部分酶學(xué)性質(zhì)。結(jié)果表明Halococcus sp.Z1所產(chǎn)普魯蘭酶在低于65℃和pH4.0~7.5范圍內(nèi)有很好的穩(wěn)定性,最適反應(yīng)溫度為60℃,最適反應(yīng)pH為5.0~5.4,相對分子質(zhì)量為8.17×104,Km值為0.24 mg/mL。

        普魯蘭酶;純化;性質(zhì)

        普魯蘭酶(Pullulanase,EC 3.2.1.41)是能夠?qū)R恍缘刈饔糜谄蒸斕m糖、支鏈淀粉、糖原及相應(yīng)低聚糖中的α-1,6-糖苷鍵,從而切下整個側(cè)枝的一種脫支酶,已廣泛應(yīng)用于以淀粉為原料的各種工業(yè)生產(chǎn)中。

        文獻(xiàn)報道過的普魯蘭酶有多種,在應(yīng)用方面近年來主要以開發(fā)耐熱耐酸普魯蘭酶為主。本試驗以實驗室篩選所得的鹽球菌(Halococcus sp.)Z1、解淀粉芽孢桿菌(Bacillus amyloliquefaciens)和枯草芽孢桿菌(Bacillus subtilis)的發(fā)酵粗酶液為研究對象,探討其在熱穩(wěn)定性和酸堿穩(wěn)定性方面的性質(zhì),對其中符合耐熱耐酸特性的普魯蘭酶,進一步進行分離純化和其他方面酶學(xué)性質(zhì)的研究。

        1 材料與方法

        1.1 試劑

        普魯蘭糖,純度99%,上海普奧生物科技有限公司;DEAE-Sephadex A25,上海楷洋生物技術(shù)有限公司;Sephadex G-100,南京都萊生物技術(shù)有限公司;低分子量標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì),相對分子量1.44×104~9.74×104,大連寶生物工程有限公司。

        1.2 菌種及培養(yǎng)基

        鹽球菌(Halococcus sp.)Z1、解淀粉芽孢桿菌(Bacillusamyloliquefaciens)和枯草芽孢桿菌(Bacillus subtilis),武漢生物工程學(xué)院酶工程實驗室自篩。

        產(chǎn)酶發(fā)酵培養(yǎng)基:每100 g培養(yǎng)基中添加糯米淀粉2.5 g,蛋白胨1 g,(NH4)2SO40.25 g,MgSO4· 7H2O 0.05 g,F(xiàn)eSO40.001 g,KH2PO40.1 g,pH5.0。

        搖瓶產(chǎn)酶條件:35℃,160 r/min,搖瓶培養(yǎng)48 h。

        1.3 方法

        1.3.1 粗酶液制備

        搖瓶培養(yǎng)后,收集發(fā)酵液,5 000 r/min低溫離心后取上清液,制得粗酶液。

        1.3.2 蛋白質(zhì)濃度測定

        蛋白質(zhì)濃度測定采用Folin-酚試劑法(Lowry法)。

        1.3.3 酶活測定

        酶活測定參照參考文獻(xiàn)[7]。

        1.3.4 硫酸銨分級沉淀

        向粗酶液中緩慢加入(NH4)2SO4至25%飽和度,4℃靜置過夜后7 500 r/min冷凍離心,棄去沉淀。在清液中繼續(xù)加入(NH4)2SO4,使其飽和度達(dá)到75%,4℃靜置過夜后7 500 r/min冷凍離心,將沉淀溶于0.02 mol/L pH7.0的磷酸鹽緩沖液,置于透析袋中,用0.02 mol/L pH7.0的磷酸鹽緩沖液透析24 h。

        1.3.5 DEAE-SephadexA25離子交換層析

        將透析后的酶液上樣至已平衡好的層析柱(2 cm×15 cm),用0.02 mol/L pH7.0的磷酸鹽緩沖液(內(nèi)含0.0 mol/L~0.5 mol/L的NaCl)進行梯度洗脫,控制流速為0.5 mL/min,每管5.0 mL收集,測定酶活,合并酶活較高的部分,用PEG20000進行濃縮。

        1.3.6 SephadexG-100凝膠過濾層析

        上步濃縮后的酶液上樣至已用0.02 mol/L pH7.0的磷酸鹽緩沖液平衡的層析柱(1.5 cm×50 cm),用相同緩沖液進行洗脫,控制流速為0.2 mL/min,每3.0 mL收集一管,測定各管酶活,合并酶活較高的部分,用PEG20000進行濃縮。

        1.3.7 SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳

        采用不連續(xù)垂直平板電泳系統(tǒng),對純化后的普魯蘭酶進行SDS-PAGE純度分析。濃縮膠和分離膠質(zhì)量濃度分別為3%和15%,考馬斯亮藍(lán)R-250染色。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 溫度對普魯蘭酶活性及穩(wěn)定性的影響

        分別于不同溫度下測定普魯蘭酶活力,以活力最高者為100%對照,試驗溫度對3種菌株所產(chǎn)普魯蘭酶活力的影響,結(jié)果見圖1。由圖1可知,菌株Halococcus sp.Z1所產(chǎn)酶在低于60℃范圍內(nèi),酶活隨溫度升高而升高,當(dāng)溫度超過60℃后,酶活逐漸下降;菌株Bacillus amyloliquefaciens所產(chǎn)酶在60℃~70℃范圍內(nèi)酶活較高,65℃時酶活最高;菌株Bacillus subtilis所產(chǎn)酶在50℃時酶活最高。因此菌株Halococcus sp.Z1、Bacillus amyloliquefaciens和Bacillus subtilis所產(chǎn)普魯蘭酶的最適作用溫度分別為60℃、65℃和50℃。

        圖1 溫度對普魯蘭酶活力的影響

        將普魯蘭酶液分別在不同溫度下保溫60 min后,再按1.3.3的方法測定殘余酶活,以活力最高者為100%對照,試驗溫度對3種菌株所產(chǎn)普魯蘭酶穩(wěn)定性的影響,結(jié)果見圖2。由圖2可知,菌株Halococcus sp.Z1所產(chǎn)普魯蘭酶在低于65℃時穩(wěn)定性較好,殘余活力在76%以上,溫度高于65℃后,酶活開始迅速下降;菌株Bacillus amyloliquefaciens所產(chǎn)酶熱穩(wěn)定性范圍為低于70℃,殘余活力在80%以上;而菌株Bacillus subtilis所產(chǎn)酶的熱穩(wěn)定性較前兩者稍差,殘余活力在80%以上的溫度范圍為低于55℃。

        圖2 溫度對普魯蘭酶穩(wěn)定性的影響

        2.2 pH對普魯蘭酶活性及穩(wěn)定性的影響

        分別于不同的pH值下測定普魯蘭酶活力,以活力最高者為100%對照,試驗pH對3種菌株所產(chǎn)普魯蘭酶活力的影響,結(jié)果見圖3。由圖3可知,pH對3種菌株所產(chǎn)酶的活性均有較大的影響。菌株Halococcus sp.Z1所產(chǎn)普魯蘭酶在pH5.0~5.4范圍內(nèi)對底物普魯蘭糖分解能力最強,酶活性最高;菌株Bacillus amyloliquefaciens所產(chǎn)酶在pH7.0~8.0范圍內(nèi)對底物的分解能力最強,而菌株Bacillus subtilis在pH5.4時酶活性最高。因此,菌株Halococcus sp.Z1、Bacillus amyloliquefaciens和Bacillus subtilis所產(chǎn)普魯蘭酶的最適作用pH分別為5.0~5.4、7.0~8.0和5.4。

        圖3 pH對普魯蘭酶活力的影響

        將普魯蘭酶液在不同pH值緩沖液中于室溫保持24 h后,再按1.3.3的方法測定殘余酶活,以活力最高者為100%對照,試驗pH對3種菌株所產(chǎn)普魯蘭酶穩(wěn)定性的影響,結(jié)果見圖4。由圖4可知,菌株Halococcus sp.Z1所產(chǎn)普魯蘭酶在pH4.0~7.5范圍內(nèi)表現(xiàn)出較高的穩(wěn)定性,殘余酶活力在88%以上,超出此pH范圍后酶的穩(wěn)定性下降;菌株Bacillus amyloliquefaciens所產(chǎn)酶在pH6.0~8.0范圍內(nèi)穩(wěn)定性較高,殘余活力在90%以上;而菌株Bacillus subtilis所產(chǎn)酶的較高穩(wěn)定性表現(xiàn)在pH4.4~7.5范圍內(nèi),殘余酶活力在86%以上。

        圖4 pH對普魯蘭酶穩(wěn)定性的影響

        2.3 耐熱耐酸普魯蘭酶的確定

        菌株Halococcus sp.Z1、Bacillus amyloliquefaciens和Bacillus subtilis所產(chǎn)普魯蘭酶的最適作用溫度、最適作用pH及熱穩(wěn)定性和酸堿穩(wěn)定性范圍見表1。

        表1 3種菌株所產(chǎn)普魯蘭酶的最適作用溫度、pH及穩(wěn)定性范圍

        從表1可以看出,菌株Halococcus sp.Z1和Bacillus amyloliquefaciens所產(chǎn)普魯蘭酶具有較高的最適作用溫度和熱穩(wěn)定性,符合耐熱的特性;菌株Halococcus sp.Z1和Bacillus subtilis所產(chǎn)普魯蘭酶的最適作用pH在pH5.0~5.4和pH5.4,酸堿穩(wěn)定性分別在pH4.0~7.5和pH4.4~7.5范圍內(nèi),具有耐酸的特性。綜合考慮,菌株Halococcus sp.Z1所產(chǎn)普魯蘭酶既具有耐熱又具有耐酸的特性,因此以菌株Halococcus sp.Z1所產(chǎn)普魯蘭酶作為后續(xù)試驗樣品。

        2.4 普魯蘭酶的純化

        普魯蘭酶經(jīng)鹽析、透析、離子交換和凝膠過濾后,結(jié)果見表2。經(jīng)純化后,普魯蘭酶的純化倍數(shù)為10.78倍,酶活力回收率為26.91%。DEAESephadex A25離子交換層析和Sephadex G-100凝膠過濾層析的洗脫曲線分別見圖5和圖6。

        2.5 普魯蘭酶純度鑒定和分子量測定

        將純化后的普魯蘭酶及標(biāo)準(zhǔn)分子量蛋白進行SDS-PAGE,電泳結(jié)果見圖7。純化后的普魯蘭酶經(jīng)SDS-PAGE后只有一條蛋白質(zhì)譜帶,說明該酶達(dá)到了均一的程度。測得該普魯蘭酶的相對分子質(zhì)量約為81 700。

        表2 普魯蘭酶的純化結(jié)果

        圖5 普魯蘭酶的DEAE-Sephadex A25柱洗脫曲線

        圖6 普魯蘭酶的Sephadex G-100柱洗脫曲線

        圖7 普魯蘭酶的SDS-PAGE圖

        2.6 動力學(xué)參數(shù)

        將普魯蘭酶與不同質(zhì)量濃度的普魯蘭糖溶液保溫反應(yīng),測定反應(yīng)速度,以反應(yīng)速度的倒數(shù)為縱坐標(biāo)(1/V),普魯蘭糖質(zhì)量濃度的倒數(shù)(1/[S])為橫坐標(biāo)作Lineweaver-Burk圖,結(jié)果如圖8所示,從而得出普魯蘭酶米氏常數(shù)Km為0.24 mg/mL,Vm值為10.11 μmol/(min·mL)。

        圖8 普魯蘭酶Lineweaver-Burk圖

        3 結(jié)論

        對實驗室篩選得到的具有較高酶活的菌株Halococcus sp.Z1、Bacillus amyloliquefaciens和Bacillus subtilis的酶學(xué)性質(zhì)進行了簡單的初探,研究表明Halococcus sp.Z1所產(chǎn)普魯蘭酶最適反應(yīng)溫度為60℃,在低于65℃范圍內(nèi)較穩(wěn)定,最適反應(yīng)pH為5.0~5.4,在pH4.0~7.5范圍內(nèi)較穩(wěn)定。相對菌株Bacillus amyloliquefaciens和Bacillus subtilis所產(chǎn)酶而言,菌株Halococcus sp.Z1所產(chǎn)普魯蘭酶具有耐熱耐酸性質(zhì),較適合于工業(yè)生產(chǎn)應(yīng)用。

        對菌株Halococcus sp.Z1所產(chǎn)普魯蘭酶進行了分離純化,測得其相對分子質(zhì)量為81 700,Km值為0.24 mg/mL。

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        Purification and properties ofpullulanase

        ZHOUNian-bo*
        (Department ofbioengineering,Wuhan bioengineeringinstitute,Hubei Wuhan430415,China)

        Heat-resistance and acid-resistance of pullulanase from Halococcus sp.Z1,Bacillus amyloliquefaciens and Bacillus subtilis was studied.The pullulanase from Halococcus sp.Z1 was purified by ammonium sulfate fractionation, dialysis,DEAE-SephadexA25 ion-exchange chromatographyand sephadexG-100 gel filtration,and partial enzymatic properties was examined.It is stable below65℃and within the pH range from4.0~7.5.Its optical temperature is 60℃and optical pH is 5.0~5.4.The purified pullulanase was demonstrated bySDS-PAGE tobe a homogeneous protein.The molecularweightofpullulanaseis8.17×104,andtheMichaelisconstantis0.24 mg/mL.

        pullulanase;purification;property

        TS201.2+5

        A

        1673-6044(2014)01-0037-04

        10.3969/j.issn.1673-6044.2014.01.012

        *周念波,男,1979年出生,2011年畢業(yè)于湖北大學(xué)生化與分子生物學(xué)專業(yè),碩士,工程師。

        2013-12-06

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