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        病毒性肝炎樹鼩動物模型研究與建模策略

        2014-02-06 06:27:54龐義全馮悅孫曉梅劉麗代解杰夏雪山
        中國實驗動物學報 2014年2期
        關(guān)鍵詞:動物模型肝炎肝細胞

        龐義全,馮悅,孫曉梅,劉麗,代解杰,夏雪山

        (1.昆明理工大學生命科學與技術(shù)學院,昆明 650500;2.中國醫(yī)學科學院醫(yī)學生物學研究所,昆明 650118)

        病毒性肝炎嚴重危害人類的健康,據(jù)世衛(wèi)組織最新數(shù)據(jù)顯示,全球約有20 億人感染肝炎病毒(包括病毒攜帶者和患者),每年約有80~100 萬人死于病毒性肝炎感染相關(guān)疾病。我國屬于肝炎的中度流行區(qū),每年有超過130 萬人感染病毒性肝炎,占傳染病總數(shù)的1/3。由于合適的動物模型的缺乏,諸如丙型肝炎等感染性高的病毒性肝炎類型,至今尚無有效的疫苗和可治愈策略[1]。人和黑猩猩是多種肝炎病毒的自然宿主,但黑猩猩數(shù)量稀少、價格昂貴以及倫理道德等原因,很難用于模型研究。研究者多用小鼠來研究肝炎病毒,并通過轉(zhuǎn)基因及肝細胞移植等手段提高小鼠對病毒的感染性,但由于小鼠與人類親緣關(guān)系差距較大,病毒感染后的病理變化機制也存在較大差異,即使病毒可有效感染,并未產(chǎn)生典型的肝炎癥狀[2]。最近研究顯示,樹鼩可以感染乙型、丙型等肝炎病毒,因而也就為其發(fā)展成為病毒性肝炎動物模型提供了可能[3]。本文就病毒性肝炎樹鼩模型研究情況及可能的建模策略作一綜述。

        1 病毒性肝炎

        病毒性肝炎是由肝炎病毒引起的肝臟疾病,肝炎病毒都以肝細胞作為宿主細胞,主要通過病毒感染和免疫病理變化侵害肝組織,臨床表現(xiàn)為急慢性肝炎、肝硬化、乃至肝癌。肝炎病毒主要有甲型、乙型、丙型、丁型、戊型等五種病毒,分別屬于不同病毒科,具有不同的生物學特性(表1)。

        表1 各型肝炎病毒及特點Tab.1 Different hepatitis viruses and their characteristics

        甲型肝炎病毒和戊型肝炎病毒屬于糞-口傳播的爆發(fā)型流行病毒,主要表現(xiàn)為急性感染,極少數(shù)會轉(zhuǎn)為慢性化。隨著醫(yī)療衛(wèi)生條件改善,甲型和戊型肝炎感染與發(fā)病率顯著下降。丁型肝炎病毒是一種缺陷病毒,只能在嗜肝性DNA 病毒輔助下才能復制。乙型肝炎病毒屬于嗜肝性DNA 病毒,主要通過血液、母嬰以及其他體液傳播,感染后容易產(chǎn)生慢性化。我國是乙型肝炎患病人數(shù)最多的國家,約有1.2 億人攜帶HbsAg[4]。丙型肝炎病毒屬于黃病毒科單股正鏈RNA 病毒,我國目前大約有4300 萬人感染丙型肝炎病毒,其傳播途徑與乙型肝炎病毒類似。至今,對乙型肝炎和丙型肝炎都尚無有效的治療方式,主要原因在于缺乏合適的動物模型來進行病毒致病機理研究和疫苗、藥物研發(fā)。

        2 病毒性肝炎模型研究近況

        除人之外,只有黑猩猩是多種肝炎病毒的自然宿主,感染后表現(xiàn)出與人類相似的疾病癥狀,是最為合適的肝炎病毒動物模型,但由于其屬于瀕危動物、價格昂貴及倫理道德原因,難以廣泛使用。甲型肝炎動物模型主要有鷹猴模型[5]、豚鼠模型[6]、白須狨猴模型[7]、普通狨猴模型[8]和食蟹猴動物模型[9]等。豚鼠模型已被用甲肝發(fā)病機制研究和疫苗的評價;白須狨猴模型也被用于甲型肝炎疫苗開發(fā);甲型肝炎病毒口服接種狨猴,在糞便中可檢測到HAV RNA,可用于疫苗保護性和抗病毒藥物試驗。丁型肝炎動物模型主要有土撥鼠模型[10]、人源化uPA/SCID 小鼠模型[11]和移植肝細胞小鼠模型[12]。土撥鼠動物模型可用于HDV 感染后發(fā)病機制研究及疫苗開發(fā);人源化uPA/SCID 小鼠模型已被用于抗病毒藥物的臨床前藥物評價;移植肝細胞小鼠模型更多用于感染發(fā)病機制研究。戊型肝炎動物模型主要為食蟹猴[13]、非洲綠猴[14]等非人靈長類動物,已用于發(fā)病機制研究和疫苗試驗;另外,SD 大鼠[15]、豬[16]、兔[17]、沙鼠[18]等也可用于戊型肝炎病毒感染方面的研究。

        乙型肝炎動物模型主要有鴨模型、土撥鼠模型和小鼠模型。由于鴨乙型肝炎病毒(DHBV)可感染鴨子,產(chǎn)生類肝炎癥狀,鴨模型可用于評價抗病毒藥物治療效果[19]。但由于鴨HBV 和人HBV 在結(jié)構(gòu)上差別較大,不能很好的再現(xiàn)人HBV 感染過程。土撥鼠肝炎病毒(WHV)基因結(jié)構(gòu)及致病特性等方面與HBV 類似,被該病毒感染的土撥鼠也被用于HBV 感染機制研究及疫苗開發(fā)[20]。HBV 小鼠模型主要為轉(zhuǎn)基因小鼠模型(包括全基因組轉(zhuǎn)染模型[21]、亞基因組轉(zhuǎn)染模型[22])、人鼠嵌合肝模型(NOD/SCID 小鼠模型[12]、uPA/SCID 小鼠模型[23]、MUP-uPA/SCID/Bg 小鼠模型[24])以及水動力法轉(zhuǎn)染小鼠模型[25]。轉(zhuǎn)基因小鼠模型可以用于抗原耐受機制及致病機理研究,但很難用于病毒侵入、傳播及抗病毒藥物的研究。人鼠嵌合肝模型可以用于HBV 感染及肝癌發(fā)生機制的研究,但由于小鼠免疫特性與人相差較大,很難用于病毒后的免疫致病機制研究。水動力法轉(zhuǎn)染模型則是通過水動力法將HBV DNA 快速注入到小鼠肝臟,使肝細胞感染HBV,并發(fā)現(xiàn)感染后癥狀,其一定程度上可用于HBV 復制周期研究及抗病毒藥物篩選。

        丙型肝炎動物模型主要有猴模型和小鼠模型。夏寧邵等[26]在獼猴體內(nèi)植入人肝細胞,使獼猴可被HCV 感染,但很難用于HCV 致病機制的研究。最近,Sourisseau 等[27]將豚尾猴干細胞分化成的肝細胞,發(fā)現(xiàn)此細胞可支持HCV 感染和復制,為動物模型建立開創(chuàng)了新的途徑。小鼠模型主要有轉(zhuǎn)基因小鼠模型和肝移植小鼠模型。轉(zhuǎn)基因小鼠是將HCV 結(jié)構(gòu)基因或者HCV 受體基因轉(zhuǎn)至小鼠體內(nèi),使小鼠具有對HCV 的易感性,可用于致病機理等方面的研究[28,29],但由于免疫特性的種間差異,很難用于致病過程的研究。肝細胞移植小鼠模型則是將人肝細胞移植到免疫缺陷的小鼠體內(nèi)(如Trimera 小鼠模型[30]、uPA/SCID 小鼠模型[31]、MUP-uPA/SCID/Bg小鼠模型[24]),可使HCV 病毒感染并支持其增殖,已用于HCV 感染與增殖特性研究及抗病毒藥物篩選。

        盡管靈長類及嚙齒類在病毒性肝炎疾病動物模型的研究與應用方面已取得較大進展,但靈長類繁育難度大、操作繁瑣、價格昂貴,而嚙齒類動物與人之間較大的種間遺傳差異,導致病毒的感染與致病特性也因此不同,急需尋找一種與人遺傳與生理差距小,且易于獲得的小動物模型。樹鼩(Tupaia)被分類為哺乳綱、攀鼩類的小型哺乳動物,廣泛分布于熱帶和亞熱帶地區(qū),在我國主要分布在云南、廣西、海南等地。樹鼩個體小,繁殖快,易于獲得,且生理機能和新陳代謝較嚙齒類更接近于人類,已用于多種人類疾病模型研究,尤其因其能被HBV 和HCV 等肝炎病毒感染而備受關(guān)注。

        3 樹鼩作為病毒性肝炎模型研究近況

        3.1 甲型、丁型、戊型肝炎病毒樹鼩動物模型

        Zhan 等[32]首次用樹鼩進行甲型肝炎動物模型研究,用甲型肝炎患者糞便過濾物通過飼喂感染樹鼩,在樹鼩體內(nèi)及排泄物中可檢測到甲型肝炎病毒。丁型肝炎病毒屬于缺陷型病毒,其復制需依賴于乙型肝炎病毒的輔助。Li 等[33]建立了丁型肝炎/乙型肝炎樹鼩感染模型,并發(fā)現(xiàn)樹鼩病理變化過程與黑猩猩感染類似,證實樹鼩可以作為丁型肝炎動物模型。蔣雷等[34]用戊型肝炎病毒(HEV)靜脈注射感染樹鼩,7 天后可檢測到血液中HEV RNA,并發(fā)現(xiàn)肝臟出現(xiàn)相關(guān)的病理變化,證實樹鼩有可能成為戊型肝炎動物模型。

        3.2 乙型肝炎病毒樹鼩動物模型

        早在1984 年,嚴瑞琪等[35]用人HBV 陽性血清分別經(jīng)靜脈和腹腔注射感染樹鼩,感染后檢測顯示,7/10 只樹鼩血清出現(xiàn)HBsAg 陽性,首次表明樹鼩可被HBV 感染。隨后,Walter 等[36]用HBV DNA 陽性血清感染樹鼩原代肝細胞及新生、成年樹鼩,原代肝細胞在感染后5~6 d 能檢測到HBsAg 和HBeAg;新生樹鼩在感染后2~4 周能檢測到HBsAg以及多種特異性抗體,并出現(xiàn)類似人的急性肝炎癥狀,但10 只成年樹鼩感染后僅表現(xiàn)為一過性感染。Wang 等[37]用HBV 陽性血清感染新生樹鼩,46 只新生樹鼩中有6 只建立了慢性感染,且出現(xiàn)類似乙型肝炎癥狀及相應的組織病理變化,說明樹鼩模型可用于進行乙型肝炎病程和致病機制研究。Ren等[38]用重組的Ad-HBV1.3 和AdGFP-HBV1.3 病毒感染樹鼩原代肝細胞,能檢測到HBsAg、HBeAg、HBV DNA 和HBV 包膜蛋白的表達。曾揚等[39]利用重組腺相關(guān)病毒為載體使HBV 全基因在樹鼩肝臟中表達,建立了HBV 急性感染樹鼩動物模型。最近,Ping 等[40]用HBV 陽性血清感染新生樹鼩發(fā)現(xiàn),樹鼩可以被HBV 感染,肝組織出現(xiàn)與乙型肝炎患者類似的病理變化。以上結(jié)果顯示,樹鼩可以被HBV感染,并且出現(xiàn)典型的感染癥狀與病理變化,有望成為理想的乙型肝炎動物模型。

        3.3 丙型肝炎樹鼩動物模型

        1998 年,劉志等[41]就用HCV RNA 陽性血清靜脈注射感染成年樹鼩,可以在被感染動物血清中間歇性檢測到HCV RNA,首次發(fā)現(xiàn)樹鼩可能對HCV易感。同時,Xie 等[42]用HCV 1b 型陽性血清感染23 只樹鼩,發(fā)現(xiàn)8 只樹鼩出現(xiàn)間歇性感染,而用1a、1b、3 型HCV 混合血清感染樹鼩,發(fā)現(xiàn)經(jīng)輻照樹鼩出現(xiàn)持續(xù)病毒血癥,進一步證實樹鼩可以被HCV 感染。Zhao 等[43]用丙型肝炎患者血清感染樹鼩原代肝細胞,收取上清進行傳代培養(yǎng),兩次傳代均能在培養(yǎng)上清中檢測到HCV RNA,并在其中發(fā)現(xiàn)HCV 病毒的準種變化,證實體外培養(yǎng)的樹鼩原代肝細胞也可以被HCV 感染并支持其復制。Xu 等[44]用1b、2c、3b 和6 型四種基因型混合的HCV 血清感染樹鼩,18 只樹鼩有16 只被感染,其中12 只建立了慢性感染。Amako 等[45]用培養(yǎng)HCV 病毒和臨床病毒株感染樹鼩,經(jīng)長達三年的連續(xù)觀察,發(fā)現(xiàn)樹鼩可以建立慢性感染,感染樹鼩會出現(xiàn)間歇性病毒血癥、肝脂肪變性、肝臟纖維化及肝細胞癌等組織病理學變化。盡管由于樹鼩來源不同及種系差別大、遺傳不穩(wěn)定等因素,導致樹鼩對HCV 感染率不穩(wěn)定,不同研究發(fā)現(xiàn)的感染與致病現(xiàn)象也不盡相同,但已有報道均可確定樹鼩可以被HCV 感染,并且出現(xiàn)慢性肝炎相關(guān)癥狀,有望成為合適的丙型肝炎動物模型[46]。

        4 肝炎病毒對樹鼩感染與致病的宿主影響因素

        病毒對宿主的感染及致病除受到病毒基因所決定的感染力與致病性等病毒因素外,還受到細胞內(nèi)小RNA、病毒感染細胞表面受體及其他宿主影響因素影響(見圖1)。

        4.1 細胞內(nèi)小RNA

        細胞內(nèi)小RNA(miRNA)是一類長約21 到23個核苷酸的非編碼單鏈RNA 分子,參與轉(zhuǎn)錄后基因表達調(diào)控。miRNA 通過與信使RNA 特異結(jié)合,從而抑制轉(zhuǎn)錄后基因表達,并且miRNA 在病毒感染中起到一定作用。在諸多的miRNA 中,與HCV 感染有關(guān)的主要有miR-122、miR-199a* 、miR-29 和miR-27a 等。miR-122 在HCV 感染中起到至關(guān)重要的作用,能夠促進HCV RNA 的復制[47];上調(diào)miR-199a* 、miR-29 或miR-27a 則可抑制HCV 在細胞中的復制[48-50]。而與HBV 有關(guān)的miRNA 主要有miR-122、miRs-372/373、miR-501、miR-141 和miR-155等。miR-122 在HBV 感染樹鼩肝細胞后發(fā)現(xiàn)表達量提高[51];miRs-372/373 通過靶向核因子I/B 促進HBV 的表達[52];miR-501 能夠促進HBV 的復制[53],相反miR-141 則能抑制HBV 的復制[54];miR-155 能夠提高機體的免疫,從而抑制HBV 的感染[55]。不同種類的miRNA 在肝炎病毒感染及復制過程中具有不同的作用。

        4.2 肝炎病毒受體分子

        肝炎病毒必須通過與宿主細胞表面受體分子結(jié)合,才能完成病毒對宿主細胞的感染。目前,乙型、丙型肝炎病毒受體研究已有了較大進展。

        HBV 受體研究從70 年代就已開始,早期認為多聚人血清白蛋白(PHSA)[56]、細胞因子修飾的血清蛋白(MSA)[57]、HBV 結(jié)合因子(HBV BF)[58]、p80 蛋白[59]、白介素-6(IL-6)[60]、多聚IgA 受體[61]以及人肝細胞附加素[62]都可能是HBV 受體。也發(fā)現(xiàn)多種細胞表面游離分子可與HBV 相結(jié)合,可能參與介導HBV 對肝細胞的感染,但這些分子對介導感染特性與分子機制仍不清楚。李文輝等[63]在HBV感染樹鼩原代肝細胞中發(fā)現(xiàn),牛黃膽酸鈉共轉(zhuǎn)移多肽(NTCP)可與HBV 前S1 蛋白域結(jié)合。把人或樹鼩NTCP 轉(zhuǎn)染HepG2 細胞,使其具有對HBV 易感,沉默肝細胞中的NTCP 則降低HBV 對肝細胞的感染,證實NTCP 是HBV 感染細胞的受體。牛黃膽酸鈉共轉(zhuǎn)移多肽(NTCP)是一種具有膽酸轉(zhuǎn)運功能的多肽類物質(zhì),主要負責肝臟內(nèi)的膽酸轉(zhuǎn)運,其作為乙型肝炎病毒細胞受體新功能確定,對動物模型的建立研究、靶向藥物的研發(fā)起到重要的推動作用。

        HCV 通過宿主細胞的多種表面蛋白分子介導感染肝細胞,已確定的受體主要包括四次跨膜素成員CD81[64]、B 族I 型清道夫受體SR-BI[65]、細胞緊密連接蛋白 claudin-1(CLDN1)[66]和 occludin(OCLN)[67],氨基葡聚糖(GAGs)、低密度脂蛋白受體(LDLr)、凝集素分子(DC-SIGN 和L-SIGN)等其他分子也有一定的感染輔助作用。CD81 是四次跨膜蛋白家族成員,其大胞外環(huán)是介導HCV 感染的關(guān)鍵區(qū)域。我們克隆了樹鼩CD81 分子基因,經(jīng)序列測定與分析發(fā)現(xiàn),樹鼩CD81 分子與人氨基酸序列同源性高達96%,與E2 結(jié)合的關(guān)鍵氨基酸位點樹鼩和人完全一致[43]。SR-BI 是另一種介導HCV 進入細胞的受體分子,樹鼩SR-BI 與人的氨基酸序列同源性為88%,Barth 等[68]將樹鼩SR-B1 基因轉(zhuǎn)入CHO 細胞中,證實樹鼩SR-B1 可與E2 蛋白結(jié)合,并介導病毒入胞。Claudin-1 作為介導HCV 入胞的受體分子,樹鼩claudin-1 和人的該分子氨基酸序列同源性達93%,Tong 等[69]發(fā)現(xiàn)樹鼩claudin-1 可提高細胞對HCVpp 的易感性。樹鼩occludin 分子和人的氨基酸序列同源性為88%,與HCV 結(jié)合關(guān)鍵區(qū)域的45 個氨基酸位點僅有4 個與人不同,將樹鼩occludin分子與人CD81、SR-BI、claudin-1 分子共轉(zhuǎn)染NIH3T3可高度介導HCVpp 對細胞的感染[69]。以上結(jié)果,從HCV 受體序列同源性和介導功能的角度,佐證了樹鼩對HCV 易感,可以成為HCV 動物模型。

        4.3 其他宿主影響因素

        腫瘤壞死因子-α 是一種系統(tǒng)性炎癥細胞因子,具有調(diào)節(jié)免疫細胞的功能。Xu 等[70]發(fā)現(xiàn)腫瘤壞死因子-α 的表達可抑制HBV 在肝細胞中的復制,不利于HBV 的感染。p53 基因可修復DNA 損傷,抑制細胞周期或誘導凋亡。Lee 等[71]發(fā)現(xiàn)p53 可抑制HBV 的復制,李強等[72]也發(fā)現(xiàn)HCV 的核心蛋白可與p53 相互作用。超氧化物歧化酶是一種能夠催化超氧化物轉(zhuǎn)化為過氧化氫,具有抗氧化作用,而谷胱甘肽S-轉(zhuǎn)移酶是谷胱甘肽結(jié)合反應的關(guān)鍵酶。Li等[73]發(fā)現(xiàn)銅鋅超氧化物歧化酶(SOD1)及谷胱甘肽S-轉(zhuǎn)移酶A1 基因(GSTA1)在肝炎患者中表達水平顯著下調(diào)。NF-κB 為一個轉(zhuǎn)錄因子蛋白家族,參與免疫反應的早期和炎癥反應分子的調(diào)控,Guitart等[74]發(fā)現(xiàn)HCV 感染原代肝細胞后可下調(diào)NF-κB基因的表達。

        圖1 調(diào)控病毒感染樹鼩Fig.1 Regulation of the viral infection in tree shrew

        5 病毒性肝炎樹鼩建立策略

        已有研究結(jié)果表明,樹鼩可以感染HBV 和HCV,但樹鼩對HBV 和HCV 病毒感染率低,不能達到穩(wěn)定感染。通過借鑒現(xiàn)有病毒感染率提高及基因操作、異種動物建模技術(shù),我們可以在樹鼩和病毒兩方面進行改造和優(yōu)化,來提高病毒對樹鼩的感染性,以實現(xiàn)最終建立病毒性肝炎樹鼩動物模型。

        5.1 樹鼩個體的改造與優(yōu)化

        肝炎病毒能自然感染人和黑猩猩,主要原因可能在于肝炎病毒對人和黑猩猩肝臟環(huán)境的適應性。我們可以通過異種移植的方式,將人肝細胞移植到動物體內(nèi),為病毒提高合適的感染與復制環(huán)境,以提高病毒的感染性。比如,Tesfaye 等[24]將人肝細胞移植到MUP-uPA/SCID/Bg 轉(zhuǎn)基因小鼠上,發(fā)現(xiàn)人肝細胞可在小鼠肝臟內(nèi)生長。這種肝細胞移植小鼠可以提高HBV 和HCV 的感染。Kosaka 等[75]發(fā)現(xiàn)TK-NOG 小鼠(基于胸腺激酶的小鼠)在注射鳥嘌呤后可支持人肝細胞的移植,并能對HBV 和HCV 易感,并可建立穩(wěn)定的感染,且能出現(xiàn)病毒血癥。而Ilan 等[30]則用無免疫系統(tǒng)的正常小鼠與SCID 小鼠骨髓細胞進行重構(gòu),再將感染了HCV 的人肝細胞移植到鼠肝內(nèi)建立HCV 三聚體小鼠,發(fā)現(xiàn)HCV 感染率高達80%,并且在肝細胞中可檢測到HCV 負鏈的存在。這些鼠類肝細胞移植模型可提高病毒的感染與復制,而我們可借鑒這些建模策略,比如可以構(gòu)建成MUP-uPA/SCID/Bg 轉(zhuǎn)基因樹鼩和TK-NOG 樹鼩,再將人肝細胞移植到經(jīng)過改造的樹鼩體內(nèi),有望提高病毒對樹鼩的感染性。或者直接將患有肝炎病毒的人肝細胞移植到免疫缺陷型的樹鼩體內(nèi),構(gòu)建成類似的三聚體樹鼩,提高病毒感染性。通過此方式將有希望建成HBV 和HCV 高感染的樹鼩動物模型。

        牛黃膽酸鈉共轉(zhuǎn)移多肽(NTCP)已被證實是HBV 的受體,CD81、SR-BI、CLDN1 和OCLN 則是HCV 進入細胞的受體,受體基因的高表達有助于相應病毒對宿主細胞的感染。比如Dorner 等[76]用基因工程技術(shù)在小鼠體內(nèi)表達人CD81 和OCLN,發(fā)現(xiàn)該小鼠對HCV 易感。我們也可以借助基因工程技術(shù)在樹鼩肝組織中高表達人HBV 和HCV 的相應受體分子,借助受體分子的表達來提高肝炎病毒對樹鼩的感染與致病性。

        細胞內(nèi)存在著病毒復制的正調(diào)節(jié)因子及負調(diào)節(jié)因子,正調(diào)節(jié)因子的存在可提高病毒在細胞內(nèi)的復制及釋放,比如miR-122 可提高HCV 的翻譯和復制[47]。而負調(diào)節(jié)因子則可能在動物體內(nèi)參與提高體內(nèi)的抗病毒反應,使病毒蛋白失活導致對細胞感染性下降,比如HCV 在PKR 缺失的鼠胚胎成纖維病毒細胞的復制遠遠大于在正常成纖維細胞中[77]。因此,我們可以借助基因工程手段,提高細胞中與病毒感染及復制有關(guān)的正調(diào)節(jié)因子的表達、降低或沉默負調(diào)節(jié)因子的表達,來提高病毒對樹鼩的感染與致病性。

        5.2 病毒的改造與優(yōu)化

        篩選獲得對異種動物的適應性病毒株,有助于提高病毒的感染、致病性和疾病模型的建立。已有研究已利用細胞傳代篩選、病毒基因改造等技術(shù)篩選出適應性HCV 病毒株,提高了病毒對小鼠與狨猴的感染性。比如Bitzegeio 等[78]用高表達鼠CD81的Lunet N 細胞連續(xù)傳代HCV 病毒,篩選到可利用鼠CD81 感染細胞的HCV 病毒適應株,并證實由于囊膜蛋白與P7 蛋白的部分氨基酸發(fā)生了變異,使病毒獲得對異種細胞感染能力。我們可借鑒此方法,用樹鼩CD81 在Lunet N 細胞中表達,篩選出適應樹鼩CD81 的HCV 病毒株,并用適應性病毒株在樹鼩原代肝細胞經(jīng)連續(xù)傳代培養(yǎng),進一步優(yōu)化病毒,有望提高肝炎病毒對樹鼩的感染性和致病性。

        Li 等[79]采用基因工程技術(shù)將HCV 的核心和包膜蛋白或者是完整的膜蛋白替換為GBV-B 對應基因片段,構(gòu)建了HCV/GBV-B 嵌合病毒,使嵌合病毒具備了對GBV-B 自然宿主狨猴的感染性。因此,我們也可以利用與肝炎病毒同類并且可以自然感染樹鼩的病毒,構(gòu)建嵌合病毒,提高肝炎病毒對樹鼩的感染性。

        病毒在樹鼩體內(nèi)不能穩(wěn)定感染的主要原因可能還在于病毒不能適應樹鼩肝細胞的環(huán)境,導致病毒在細胞中復制較低,不能產(chǎn)生穩(wěn)定的感染性病毒。我們可以開發(fā)出體內(nèi)選擇系統(tǒng),來提高病毒的復制能力。有研究報道,在病毒基因組中嵌入FAH 選擇標記基因,與FAH 缺失小鼠可產(chǎn)生互補的選擇性,通過選擇壓力,促使病毒基因組在FAH 缺失小鼠肝細胞內(nèi)復制,提高病毒的感染性[80]。我們也可將樹鼩肝細胞中FAH 基因敲出,利用病毒與細胞的互補選擇性提高病毒在樹鼩肝細胞中的復制,來提高病毒對樹鼩肝細胞的感染性。

        6 展望

        疾病動物模型對于研究病原體感染與致病機制,以及藥物與疫苗的研發(fā)均具有重要意義。理想的動物模型應能使病毒易于建立感染,產(chǎn)生與人類感染相應肝炎病毒相同、至少相似的疾病過程與癥狀。從分子水平來看,樹鼩的HBV 和HCV 受體與人同源性高,尤其是關(guān)鍵結(jié)合位點高度一致,并可介導病毒的感染,為樹鼩發(fā)展成為合適的動物模型提供了良好的佐證。目前為止,雖然樹鼩對于HBV、HCV 感染率仍較低,難以建立慢性感染,但隨著分子生物學、免疫學、病毒學、基因工程技術(shù)及細胞培養(yǎng)技術(shù)的發(fā)展,樹鼩有望發(fā)展成為合適病毒性肝炎動物模型,為這些疾病感染與致病機制研究、藥物與疫苗研發(fā)提供技術(shù)支撐。

        [1]陳欣如,侯巖巖,燕順生.肝炎病毒動物模型的研究進展[J].地方病通報,2005,20(1):70-73.

        [2]Chayama K,Hayes CN,Hiraga N,et al.Animal model for study of human hepatitis viruses[J].J Gastroenterol Hepatol,2011,26(1):13-18.

        [3]陳瑾,代解杰,孫曉梅.樹鼩肝炎動物模型的研究進展[J].中國比較醫(yī)學雜志,2008,18(2):59-62.

        [4]Cui Y,Jia J.Update on epidemiology of hepatitis B and C in China[J].J Gastroenterol Hepatol,2013,28(S1):7-10.

        [5]Asher LV,Binn LN,Mensing TL,et al.Pathogenesis of hepatitis A in orally inoculated owl monkeys(Aotustrivirgatus)[J].J Med Virol,1995,47(3):260-268.

        [6]Hornei B,K?mmerer R,Moubayed P,et al.Experimental hepatitis A virus infection in guinea pigs[J].J Med Virol,2001,64(4):402-409.

        [7]Purcell RH,Wong DC,Shapiro M.Relative infectivity of hepatitis A virus by the oral and intravenous routes in 2 species of nonhuman primates[J].J Infect Dis,2002,185(11):1668-1671.

        [8]Pinto MA,Marchevsky RS,Baptista ML,et al.Experimental hepatitis A virus(HAV)infection in Callithrixjacchus:Early detection of HAV antigen and viral fate[J].Exp Toxicol Pathol,2002,53(6):413-420.

        [9]Amado LA,Marchevsky RS,De Paula VS,et al.Experimental hepatitis A virus(HAV)infection in cynomolgus monkeys(Macaca fascicularis):evidence of active extrahepatic site of HAV replication[J].Int J Exp Pathol,2010,91(1):87-97.

        [10]Freitas N,Salisse J,Cunha C,et al.Hepatitis delta virus infects the cells of hepadnavirus-induced hepatocellular carcinoma in woodchucks[J].Hepatology,2012,56(1):76-85.

        [11]Lütgehetmann M,Mancke LV,Volz T,et al.Humanized chimeric uPA mouse model for the study of hepatitis B and D virus interactions and preclinical drug evaluation[J].Hepatology,2012,55(3):685-694.

        [12]Ohashi K,Marion PL,Nakai H,et al.Sustained survival of human hepatocytes in mice:a model for in vivo infection with human hepatitis B and hepatitis delta viruses[J].Nature Med,2000,6(3):327-331.

        [13]de Carvalho LG,Marchevsky RS,dos Santos DR,et al.Infection by Brazilian and Dutch swine hepatitis E virus strains induces haematological changes in Macaca fascicularis[J].BMC Infect Dis,2013,13(1):495-511.

        [14]Bossart KN,Geisbert TW,F(xiàn)eldmann H,et al.A neutralizing human monoclonal antibody protects African green monkeys from hendra virus challenge[J].Sci Transl Med,2011,3(105):105-103.

        [15]Zhu Y,Yu X,Zhang Y,et al.Infectivity of a genotype 4 hepatitis E virus cDNA clone by intrahepatic inoculation of laboratory rats[J].Vet Microbiol,2013,166(3):405-411.

        [16]Williams TP,Kasorndorkbua C,Halbur PG,et al.Evidence of extrahepatic sites of replication of the hepatitis E virus in a swine model[J].J Clin Microbiol,2001,39(9):3040-3046.

        [17]Cheng X,Wang S,Dai X,et al.Rabbit as a novel animal model for hepatitis E virus infection and vaccine evaluation[J].PloS one,2012,7(12):e51616.

        [18]Li W,Sun Q,She R,et al.Experimental infection of Mongolian gerbils by a genotype 4 strain of swine hepatitis E virus[J].J Med Virol,2009,81(9):1591-1596.

        [19]Le Guerhier F,Thermet A,Guerret S,et al.Antiviral effect of adefovir in combination with a DNA vaccine in the duck hepatitis B virus infection model[J].J Hepatol,2003,38(3):328-334.

        [20]Cote PJ,Korba BE,Miller RH,et al.Effects of age and viral determinants on chronicity as an outcome of experimental woodchuck hepatitis virus infection[J].Hepatology,2000,31(1):190-200.

        [21]孔祥平,吳慶洲,羅顯榮,等.復制型HBV 轉(zhuǎn)基因小鼠遺傳穩(wěn)定性研究[J].中國生物工程雜志,2008,28(5):17-21.

        [22]屠亞軍,琦祖和.人乙型肝炎病毒x 基因轉(zhuǎn)基因小鼠模型的建立[J].中國醫(yī)學科學院學報,2000,22(3):263-265.

        [23]Dandri M,Petersen J.Chimeric mouse model of hepatitis B virus infection[J].J Hepatol,2012,56(2):493-495.

        [24]Tesfaye A,Stift J,Maric D,et al.Chimeric mouse model for the infection of hepatitis B and C viruses[J].PloS one,2013,8(10):e77298.

        [25]Huang LR,Wu HL,Chen PJ,et al.An immunocompetent mouse model for the tolerance of human chronic hepatitis B virus infection[J].Proc Natl Acad Sci,2006,103(47):17862-17867.

        [26]夏寧邵,畢勝利.中國株丙型肝炎病毒實驗感染3 種獼猴的初步結(jié)果[J].中國科學:B 輯,1995,25(7):732-739.

        [27]Sourisseau M,Goldman O,He W,et al.Hepatic cells derived from induced pluripotent stem cells of pigtail macaques support hepatitis c virus infection[J].Gastroenterology,2013,145(5):966-969.

        [28]任進余,成國祥,孔曉飛,等.丙型肝炎病毒結(jié)構(gòu)基因轉(zhuǎn)基因小鼠模型的建立[J].中華肝臟病雜志,2005,7(13):501-504.

        [29]Dorner M,Horwitz JA,Robbins JB,et al.A genetically humanized mouse model for hepatitis C virus infection[J].Nature,2011,474(7350):208-211.

        [30]Ilan E,Arazi J,Nussbaum O,et al.The hepatitis C virus(HCV)-Trimera mouse:a model for evaluation of agents against HCV[J].J Infect Dis,2002,185(2):153-161.

        [31]Mercer DF,Schiller DE,Elliott JF,et al.Hepatitis C virus replication in mice with chimeric human livers[J].Nature Med,2001,7(8):927-933.

        [32]詹美云,劉崇柏,李成明,等.甲型肝炎病毒感染樹助的初步研究[J].中國醫(yī)學科學院學報,1981,3(3):148-152.

        [33]李奇芬,丁明權(quán),王洪,等.丁型肝炎對成年樹鼩的感染[J].中華醫(yī)學雜志,1995,75(10):611-617.

        [34]蔣雷,尹革芬,舒相華,等.戊型肝炎病毒樹鼩感染模型的初步研究[J].云南農(nóng)業(yè)大學學報,2013,20(2):186-190.

        [35]嚴瑞琪,蘇建家,陳志英,等.人乙型肝炎病毒實驗感染成年樹鼩的初步研究[J].廣西醫(yī)科大學學報,1984,1:002.

        [36]Walter E,Keist R,Nieder?st B,et al.Hepatitis B virus infection of tupaia hepatocytes in vitro and in vivo[J].Hepatology,1996,24(1):1-5.

        [37]Wang Q,Schwarzenberger P,Yang F,et al.Experimental chronic hepatitis B infection of neonatal tree shrews(Tupaia belangeri chinensis):A model to study molecular causes for susceptibility and disease progression to chronic hepatitis in humans[J].J Virol,2012,9(1):170-179.

        [38]Ren S,Nassal M.Hepatitis B virus(HBV)virion and covalently closed circular DNA formation in primary tupaia hepatocytes and human hepatoma cell lines upon HBV genome transduction with replication-defective adenovirus vectors[J].J Virol,2001,75(3):1104-1116.

        [39]曾揚,吳小紅,胡靚雅,等.重組8 型腺相關(guān)病毒介導HBV急性感染樹鼩模型建立[J].中國實驗動物學報,2013,21(3):36-41.

        [40]Ruan P,Yang C,Su J,et al.Histopathological changes in the liver of tree shrew(Tupaia belangeri chinensis)persistently infected with hepatitis B virus[J].Virol J,2013,10(1):333-340.

        [41]劉志,毛青.丙型肝炎病毒感染成年樹鼩的實驗研究[J].第三軍醫(yī)大學學報,1998,20(6):472-475.

        [42]Xie ZC,Riezu-Boj JI,Lasarte JJ,et al.Transmission of hepatitis C virus infection to tree shrews[J].Virology,1998,244(2):513-520.

        [43]Zhao X,Tang Z Y,Klumpp B,et al.Primary hepatocytes of Tupaia belangeri as a potential model for hepatitis C virus infection[J].J Clin Invest,2002,109(2):221-232.

        [44]Xu X,Chen H,Cao X,et al.Efficient infection of tree shrew(Tupaia belangeri)with hepatitis C virus grown in cell culture or from patient plasma[J].J Gen Virol,2007,88(9):2504-2512.

        [45]Amako Y,Tsukiyama-Kohara K,Katsume A,et al.Pathogenesis of hepatitis C virus infection in Tupaia belangeri[J].J Virol,2010,84(1):303-311.

        [46]李堯,代解杰,孫曉梅,等.樹鼩作為丙型肝炎動物模型的HCV 受體研究進展[J].動物學研究,2011,32(1):97-103.

        [47]Jopling CL,Yi M,Lancaster AM,et al.Modulation of hepatitis C virus RNA abundance by a liver-specific MicroRNA[J].Science,2005,309(5740):1577-1581.

        [48]Murakami Y,Aly HH,Tajima A,et al.Regulation of the hepatitis C virus genome replication by miR-199a[J].J Hepatol,2009,50(3):453-460.

        [49]Bandyopadhyay S,F(xiàn)riedman RC,Marquez RT,et al.Hepatitis C virus infection and hepatic stellate cell activation down regulate miR-29:miR-29 over expression reduces hepatitis C viral abundance in culture[J].J Infect Dis,2011,203(12):1753-1762.

        [50]Shirasaki T,Honda M,Shimakami T,et al.MicroRNA-27a regulates lipid metabolism and inhibits hepatitis C virus replication in human hepatoma cells[J].J Virol,2013,87(9):5270-5286.

        [51]Xu G,Gao Z,He W,et al.MicroRNA expression in hepatitis B virus infected primary tree shrew hepatocytes and the independence of intracellular miR-122 level for de novo HBV infection in culture[J].Virology,2014,448:247-254.

        [52]Guo H,Liu H,Mitchelson K,et al.MicroRNAs-372/373 promote the expression of hepatitis B virus through the targeting of nuclear factor I/B[J].Hepatology,2011,54(3):808-819.

        [53]Jin J,Tang S,Xia L,et al.MicroRNA-501 promotes HBV replication by targeting HBXIP[J].Biochem Biophys Res Commun,2013,430(4):1228-1233.

        [54]Hu W,Wang X,Ding X,et al.MicroRNA-141 represses HBV replication by targeting PPARA[J].PloS one,2012,7(3):e34165.

        [55]Su C,Hou Z,Zhang C,et al.Ectopic expression of microRNA-155 enhances innate antiviral immunity against HBV infection in human hepatomacells[J].Virol J,2011,8(1):354-365.

        [56]Imai M,Yanase Y,Nojiri T,et al.A receptor for polymerized human and chimpanzee albumins on hepatitis B virus particles cooccurring with HBeAg[J].Gastroenterology,1979,76(2):242-247.

        [57]Pontisso P,Petit MA,Bankowski MJ,et al.Human liver plasma membranes contain receptors for the hepatitis B virus pre-S1 region and,via polymerized human serum albumin,for the pre-S2 region[J].J Virol,1989,63(5):1981-1988.

        [58]Budkowska A,Quan C,Groh F,et al.Hepatitis B virus(HBV)binding factor in human serum:candidate for a soluble form of hepatocyte HBV receptor[J].J Virol,1993,67(7):4316-4322.

        [59]Ryu CJ,Cho DY,Gripon P,et al.An 80-kilodalton protein that binds to the pre-S1 domain of hepatitis B virus[J].J Virol,2000,74(1):110-116.

        [60]Neurath AR,Strick N,Sproul P.Search for hepatitis B virus cell receptors reveals binding sites for interleukin 6 on the virus envelope protein[J].J Exp Med,1992,175(2):461-469.

        [61]Pontisso P,Ruvoletto MG,Tiribelli C,et al.The preS1 domain of hepatitis B virus and IgA cross-react in their binding to the hepatocyte surface[J].J Gen Virol,1992,73(Pt 8):2041-2045.

        [62]Breiner KM,Schaller H.Cellular receptor traffic is essential for productive duck hepatitis B virus infection[J].J Virol,2000,74(5):2203-2209.

        [63]Yan H,Zhong G,Xu G,et al.Sodium taurocholate cotransporting polypeptide is a functional receptor for human hepatitis B and D virus[J].eLife,2012,1:e00049.

        [64]Pileri P,Uematsu Y,Campagnoli S,et al.Binding of hepatitis C virus to CD81[J].Science,1998,282(5390):938-941.

        [65]Scarselli E,Ansuini H,Cerino R,et al.The human scavenger receptor class B type I is a novel candidate receptor for the hepatitis C virus[J].EMBO J,2002,21(19):5017-5025.

        [66]Evans MJ,von Hahn T,Tscherne DM,et al.Claudin-1 is a hepatitis C virus co-receptor required for a late step in entry[J].Nature,2007,446(7137):801-805.

        [67]Ploss A,Evans MJ,Gaysinskaya VA,et al.Human occludin is a hepatitis C virus entry factor required for infection of mouse cells[J].Nature,2009,457(7231):882-886.

        [68]Barth H,Cerino R,Arcuri M,et al.Scavenger receptor class B type I and hepatitis C virus infection of primary tupaia hepatocytes[J].J Virol,2005,79(9):5774-5785.

        [69]Tong Y,Zhu Y,Xia X,et al.Tupaia CD81,SR-BI,claudin-1,and occludin support hepatitis C virus infection[J].J Virol,2011,85(6):2793-2802.

        [70]Xu Y,K?ck J,Lu Y,et al.Suppression of hepatitis B virus replication in Tupaia hepatocytes by tumor necrosis factor alpha of Tupaia belangeri[J].Comp Immunol,Microbiol Infect Dis,2011,34(4):361-368.

        [71]Lee H,Kim HT,Yun Y.Liver-specific enhancer II is the target for the p53-mediated inhibition of hepatitis B viral gene expression[J].J Biol Chem,1998,273(31):19786-19791.

        [72]李強,成軍,程明亮,等.腫瘤抑制基因p53 與肝炎病毒調(diào)節(jié)的研究[J].胃腸病學和肝病學雜志,2003,3:012.

        [73]Li Y,Wan D,Wei W,et al.Candidate genes responsible for human hepatocellular carcinoma identified from differentially expressed genes in hepatocarcinogenesis of the tree shrew(Tupaia belangeri chinesis)[J].Hepatol Res,2008,38(1):85-95.

        [74]Guitart A,Riezu-Boj JI,Elizalde E,et al.Hepatitis C virus infection of primary tupaia hepatocytes leads to selection of quasispecies variants,induction of interferon-stimulated genes and NFκB nuclear translocation[J].J Gen Virol,2005,86(11):3065-3074.

        [75]Kosaka K,Hiraga N,Imamura M,et al.A novel TK-NOG based humanized mouse model for the study of HBV and HCV infections[J].Biochem Biophys Res Commun,2013,441(1):230-235.

        [76]Dorner M,Horwitz JA,Donovan BM,et al.Completion of the entire hepatitis C virus life cycle in genetically humanized mice[J].Nature,2013,501(7466):237-241.

        [77]Chang JH,Kato N,Muroyama R,et al.Double-stranded RNAactivated protein kinase inhibits hepatitis C virus replication but may be not essential in interferon treatment[J].Liver Int,2010,30(2):311-318.

        [78]Bitzegeio J,Bankwitz D,Hueging K,et al.Adaptation of hepatitis C virus to mouse CD81 permits infection of mouse cells in the absence of human entry factors[J].PLoS Pathog,2010,6(7):e1000978.

        [79]Li T,Zhu S,Shuai L,et al.Infection of common marmosets with hepatitis C virus/GB virus-B chimeras[J].Hepatology,2013.10.1002/hep.26750.

        [80]Grompe M,Al-Dhalimy M,F(xiàn)inegold M,et al.Loss of fumarylacetoacetate hydrolase is responsible for the neonatal hepatic dysfunction phenotype of lethal albino mice[J].Genes Devlopment,1993,7(12a):2298-2307.

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