謝啟應(yīng),鐘巧青,謝秀梅,楊天倫,陳美芳
血管緊張素Ⅱ通過上調(diào)白細(xì)胞介素-8受體表達(dá)增加單核細(xì)胞黏附*
謝啟應(yīng),鐘巧青△,謝秀梅,楊天倫,陳美芳
目的:探討血管緊張素II (Ang II)對(duì)單核細(xì)胞黏附的影響及機(jī)制研究。
方法: Ang II (10-6M) 培養(yǎng)人單核細(xì)胞株4 h或24 h,并加入氯沙坦 (1, 3, 10 μM)或抗氧化劑吡咯烷二硫代氨基甲酸鹽(PDTC,10 μM),檢測單核細(xì)胞內(nèi)活性氧 (ROS)水平、單核內(nèi)皮細(xì)胞黏附、上清液中白細(xì)胞介素-8 (IL-8)、腫瘤壞死因子α (TNF-α)水平、單核細(xì)胞的白細(xì)胞介素-8受體(CXCR2 )mRNA表達(dá)以及核轉(zhuǎn)錄因子κB (NF-κB)和活化蛋白(AP-1) 的活性。
結(jié)果: Ang II (10-6M)孵育單核細(xì)胞后顯著增加細(xì)胞內(nèi)ROS水平、上清液中白細(xì)胞介素-8和腫瘤壞死因子α水平,單核細(xì)胞內(nèi)核轉(zhuǎn)錄因子κB和AP-1的活性以及上調(diào)CXCR2 mRNA表達(dá),促進(jìn)單核細(xì)胞黏附到內(nèi)皮細(xì)胞。預(yù)先給予氯沙坦呈濃度依賴性的抑制Ang II誘導(dǎo)的上述反應(yīng),抗氧化劑PDTC同樣抑制Ang II誘導(dǎo)的氧化應(yīng)激和單核細(xì)胞黏附。
結(jié)論:Ang II通過上調(diào)CXCR2表達(dá),增加單核細(xì)胞黏附,活化單核細(xì)胞促進(jìn)動(dòng)脈粥樣硬化的發(fā)生,這一過程涉及ROS-NF-κB/AP-1通路。
血管緊張素II;單核細(xì)胞;白細(xì)胞介素-8;趨化因子受體
(Chinese Circulation Journal, 2014, 29: 367.)
單核細(xì)胞黏附到受損的內(nèi)皮細(xì)胞繼而進(jìn)入血管內(nèi)膜下組織是動(dòng)脈粥樣硬化早期發(fā)病的關(guān)鍵環(huán)節(jié)。研究顯示白細(xì)胞介素-8(IL-8)屬于趨化因子(chemokine)CXC家族,其對(duì)單核細(xì)胞穩(wěn)定地黏附到內(nèi)皮細(xì)胞起到重要作用。有研究報(bào)道不穩(wěn)定性心絞痛患者的白細(xì)胞介素-8水平明顯升高[1];敲除白細(xì)胞介素-8的受體(CXCR2)后,斑塊病變和單核巨噬細(xì)胞的聚集均明顯減輕[2]。血管緊張素II(Ang II)是一種重要的致炎因子,它可誘導(dǎo)單核細(xì)胞增殖、游走,并促使單核細(xì)胞向巨噬細(xì)胞轉(zhuǎn)化。早期研究報(bào)道Ang II可上調(diào)CXC趨化因子表達(dá),而使用CXCR2拮抗劑SB-517785-M幾乎可完全逆轉(zhuǎn)這一效應(yīng)[3]。然而有關(guān)Ang II對(duì)單核細(xì)胞趨化因子的影響的相關(guān)研究報(bào)道少見,本實(shí)驗(yàn)擬觀察Ang II對(duì)單核細(xì)胞黏附的影響及可能的分子機(jī)制。
材料:人單核細(xì)胞株(THP-1,ATCC)購自湘雅醫(yī)學(xué)院細(xì)胞培養(yǎng)中心。人臍靜脈血內(nèi)皮細(xì)胞株(HUVEC-12,ATCC,CRL-2480)購自北京協(xié)和醫(yī)學(xué)院腫瘤研究所。Ang II、胰酶、抗氧化劑吡咯烷二硫代氨基甲酸鹽(PDTC)購自Sigma公司(圣路易斯,美國);氯沙坦由美國默沙東公司饋贈(zèng);RPMI 1640培養(yǎng)基、DMEM系Gibco產(chǎn)品(加利福尼亞,美國);小牛血清購自杭州四季青;腫瘤壞死因子α(TNF-α)、白細(xì)胞介素8試劑盒購自上海森雄生物有限公司;RT試劑盒購自Fermentas(安大略省柏林頓,加拿大);引物由上海生工技術(shù)有限公司合成。[γ-32P] ATP由北京福瑞生物工程公司提供;活性氧檢測試劑盒、BCA蛋白濃度測定試劑盒購自江蘇碧云天生物技術(shù)研究所,總RNA抽提試劑TRIzol、核轉(zhuǎn)錄因子κB (NF-κB)和活化蛋白(AP-1)探針,凝膠遷移系統(tǒng)購自Promega公司(麥迪遜,美國)。
人單核細(xì)胞的培養(yǎng)和處理:取THP-1細(xì)胞株,解凍復(fù)蘇后加入含15%小牛血清的RPMI 1640培養(yǎng)基制成細(xì)胞懸液,接種于培養(yǎng)瓶中置于5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)(37℃)。1%血清處理24 h后將細(xì)胞密度調(diào)整為1×106個(gè)/ml接種于6孔培養(yǎng)板中,進(jìn)行不同處理??瞻讓?duì)照組:用含1%小牛血清的培養(yǎng)液繼續(xù)孵育4 h或24 h;Ang II組:用含10-6M的Ang II的培養(yǎng)液孵育細(xì)胞4 h或24 h;氯沙坦(1, 3, 10 μM)組:1, 3, 10 μM的氯沙坦孵育1 h后加入10-6M的Ang II繼續(xù)培養(yǎng)4 h或24 h;PDTC組:加入終濃度為10 μM的PDTC孵育1.5 h后加入10-6M的Ang II繼續(xù)培養(yǎng)4 h或24 h。
細(xì)胞內(nèi)活性氧水平檢測[4]:將THP-1細(xì)胞接種于24孔板(104個(gè)/m l),孵育24~48 h待細(xì)胞融合經(jīng)1%血清處理后加入不同干預(yù)因素,然后進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。在相應(yīng)的時(shí)間點(diǎn),棄去培養(yǎng)液,室溫下D-Hank’s液漂洗3次,加入10 μM H2DCF-DA熒光探針,37℃避光孵育20 min,D-Hank’s漂洗3次后加入1 m l 無血清的培養(yǎng)液,30 min后用熒光分光光度計(jì)測定熒光強(qiáng)度,激發(fā)波長為488 nm,發(fā)射波長為535 nm。
細(xì)胞黏附實(shí)驗(yàn) 將THP-1細(xì)胞進(jìn)行處理后加入6孔板未處理的人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞(HUVEC)中(每孔1 ml),37℃振蕩孵育30 min,用Hanks平衡液小心沖洗掉未粘附的單核細(xì)胞。用3%的多聚甲醛每孔200 μl固定,然后在倒置高倍顯微鏡下每孔隨機(jī)選擇6個(gè)視野(hpf)計(jì)數(shù)黏附的單核細(xì)胞數(shù)目。
白細(xì)胞介素-8、腫瘤壞死因子α含量的測定:嚴(yán)格按照試劑盒的要求[5],采用酶聯(lián)免疫吸附法(ELISA)測定白細(xì)胞介素-8、腫瘤壞死因子α,在含有抗體包被的96孔板,分別加入標(biāo)準(zhǔn)品和樣品各100 μl,37℃孵育 2 h,洗板 5 次,每孔加入 100 μl酶標(biāo)二抗,37℃溫育1 h,洗板5次,加入底物100 μl,37℃閉光孵育15 min,每孔加入終止液1滴,用酶標(biāo)儀在490 nm處測定吸光值,計(jì)算出白細(xì)胞介素-8的濃度?;蛴妹笜?biāo)儀在450 nm處測定吸光值,計(jì)算出腫瘤壞死因子α的濃度。
CXCR2 mRNA表達(dá):采用Trizol法提取總RNA,取2 μg總RNA進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄后取2 μl行多聚酶鏈反應(yīng)(PCR)反應(yīng)。CXCR2上游引物:5’-CGGAATTCAA ATGGAAGATTTTAACATGGAG-3’。下游引物:5’-CC GCTCGAGTTAGAGAGTAGTGGAAGTGTG-3’,擴(kuò)增片段長度為417 bp。PCR反應(yīng)體系20 μl,反應(yīng)條件為94°C變性60 s,58°C退火60 s,72°C延伸60 s,38個(gè)循環(huán)。β-肌動(dòng)蛋白(β-actin)上游引物:5’-CTGTCCCTGTATGCCTCTG-3’,下游引物:5’-ATGTCACGCACGATTTCC-3’,擴(kuò)增片段長度為218 bp。PCR反應(yīng)體系20 μl,反應(yīng)條件為94℃變性45 s,58℃退火45 s,72℃延伸60 s,28個(gè)循環(huán)。得到的多聚酶鏈反應(yīng)產(chǎn)物2%的瓊脂糖電泳并用成像系統(tǒng)掃描攝片。
電泳遷移率改變檢測法(EMSA)分析核轉(zhuǎn)錄因子κB、AP-1活性 嚴(yán)格按照Promega公司提供的試劑盒說明書進(jìn)行操作[6]。提取核蛋白用BCA法[7]檢測提取液中核蛋白濃度。核轉(zhuǎn)錄因子κB同序寡核苷酸探針序列為3’-TCA ACT CCC CTG AAA GGG TCC G-5’;5’-AGT TGA GGG GAC TTT CCC AGG C-3’。AP-1探針序列為5'-CGC TTG ATG AGT CAG CCG GAA-3',3'- AAC TAC TCA GTC GGC CTT TGC-5'。采用T4寡核苷酸激酶法以[γ-32P] ATP (10 μCi/μl)進(jìn)行末端同位素標(biāo)記,游離探針用G-25層析法除去。蛋白 -DNA 結(jié)合反應(yīng)在總?cè)萘?10 μl含有 8~10 μg核抽提物,4% glycerol,1 mM MgCl2,0.5 mM依地酸,0.5 mM DTT,50 mM NaCl,10 mM Tris-HCl pH 7.5 和 1 μg poly(di-dc)的液體中于室溫下反應(yīng)10 min。然后加入50 000~200 000 cpm標(biāo)記探針入反應(yīng)液中室溫下繼續(xù)孵育20 m in。在4%非變性聚丙烯酰胺電泳30 m in左右(電壓350 V,電泳緩沖液為0.5×TBE) 后干膠,置-70 ℃放射自顯影24 h。
統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 用one-way ANOVA進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)處理,所有數(shù)據(jù)均以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示,雙側(cè)P<0.05認(rèn)為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
表1 血管緊張素II對(duì)單核細(xì)胞黏附的影響(n =4,±s)
表1 血管緊張素II對(duì)單核細(xì)胞黏附的影響(n =4,±s)
注:與空白對(duì)照組相比*P<0.01;與血管緊張素Ⅱ組比△P<0.01
組別 黏附的單核細(xì)胞數(shù) (高倍鏡)空白對(duì)照組 139 ± 20血管緊張素Ⅱ組 449 ± 38*氯沙坦組1 μM 238 ± 20△3 μM 201 ± 15△10 μM 192 ± 15△吡咯烷二硫代氨基甲酸鹽組 242 ± 23△
Ang II培養(yǎng)單核細(xì)胞24 h ,Ang II組與空白對(duì)照組比,顯著增加黏附到內(nèi)皮細(xì)胞上的單核細(xì)胞數(shù)(P<0.01),與 Ang II組比較氯沙坦(1,3,10 μM)組、PDTC組可明顯減少黏附到內(nèi)皮細(xì)胞上的單核細(xì)胞數(shù)(P<0.01),差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
Ang II刺激單核細(xì)胞4 h, Ang II組可上調(diào)CXCR2 mRNA表達(dá)(P<0.01),氯沙坦(1,3,10 μM)組和PDTC組均可下調(diào)Ang II 誘導(dǎo)的CXCR2 mRNA表達(dá)(P<0.01)。圖1
Ang II培養(yǎng)單核細(xì)胞24 h ,Ang II組上清液中白細(xì)胞介素-8和腫瘤壞死因子α的含量與空白對(duì)照組比顯著升高,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01);氯沙坦(1, 3, 10 μM)組和PDTC組白細(xì)胞介素-8(圖2A)、腫瘤壞死因子α(圖2B)水平與Ang II組比含量降低,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05, P<0.01)。
Ang II培養(yǎng)單核細(xì)胞4 h,Ang II組較空白對(duì)照組顯著增加細(xì)胞內(nèi)ROS生成,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)。氯沙坦(1, 3, 10 μM)組和PDTC組ROS水平與Ang II組比顯著降低(P<0.01),差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(圖2C)。
圖2 血管緊張素Ⅱ?qū)ι锨逡褐邪准?xì)胞介素-8(2A)、腫瘤壞死因子(2B)及細(xì)胞內(nèi)活性氧(2C)生成的影響(n=6)
電泳遷移率改變檢測法(EMSA)結(jié)果所示,陰性對(duì)照組(沒有加任何核蛋白)沒有任何信號(hào)條帶顯影。與對(duì)照組相比,Ang II培養(yǎng)單核細(xì)胞4 h明顯增加核轉(zhuǎn)錄因子κB(圖3A)和AP-1(圖3B)的活性。氯沙坦(1, 3, 10 μM)組、PDTC組核轉(zhuǎn)錄因子κB和AP-1活性較Ang II組明顯降低。
圖3 電泳遷移率改變檢測法分析血管緊張素Ⅱ?qū)魏思?xì)胞核轉(zhuǎn)錄因子κB(圖3A)和活化蛋白(圖3B)活性的影響(n=3)
大量研究顯示Ang II通過誘導(dǎo)氧化應(yīng)激,促進(jìn)炎癥介質(zhì)和趨化因子的釋放,促進(jìn)單核細(xì)胞活化,參與動(dòng)脈粥樣硬化的發(fā)生和發(fā)展。有研究報(bào)道,Ang II能增加還原型煙酰胺腺嘌呤二核苷酸磷酸(NADPH)氧化酶活性或表達(dá)促進(jìn)ROS形成,增加斑塊的不穩(wěn)定性,促進(jìn)動(dòng)脈粥樣硬化的進(jìn)展[8]。國內(nèi)有研究報(bào)道Ang II可呈時(shí)間和濃度依賴性的增加內(nèi)皮細(xì)胞超氧陰離子的生成,纈沙坦可阻斷Ang II的這一作用[9],說明氧化應(yīng)激在Ang II誘導(dǎo)的炎癥反應(yīng)過程中起著非常重要的作用。
單核細(xì)胞遷移黏附到血管內(nèi)皮的過程中趨化因子起了至關(guān)重要的作用。研究顯示,白細(xì)胞介素-8可趨化新鮮分離的外周血單核細(xì)胞,促進(jìn)單核細(xì)胞在流動(dòng)的條件下穩(wěn)定地黏附于血管內(nèi)皮。CXCR2受體屬于G蛋白偶聯(lián)受體,與白細(xì)胞介素-8結(jié)合可幫助單核細(xì)胞穩(wěn)定黏附到內(nèi)皮細(xì)胞。研究報(bào)道,冠心病患者外周血CXCR2表達(dá)上調(diào)[10];在動(dòng)脈粥樣硬化進(jìn)展期的粥樣斑塊巨噬細(xì)胞富集區(qū)CXCR2明顯表達(dá),敲除CXCR2受體后,斑塊病變和單核巨噬細(xì)胞的聚集均明顯減輕[2]。在佛波醇誘導(dǎo)的人單核細(xì)胞株細(xì)胞,氯沙坦可抑制Ang II誘導(dǎo)的細(xì)胞外基質(zhì)金屬蛋白酶誘導(dǎo)因子表達(dá)上調(diào)[11]。在體研究報(bào)道,大鼠腹腔注射Ang II可顯著增加CXC趨化因子的水平,上調(diào)CXCR2的mRNA表達(dá),增加中性粒細(xì)胞和單核細(xì)胞募集,而給予CXCR2阻斷劑SB517785-M可抑制這一過程[12]。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示Ang II能顯著增加單核細(xì)胞內(nèi)ROS生成,增加下游炎癥因子白細(xì)胞介素-8、腫瘤壞死因子α,上調(diào)趨化因子受體CXCR2誘導(dǎo)單核細(xì)胞黏附,預(yù)先給予氯沙坦或PDTC可阻斷Ang II的作用,提示Ang II通過其受體誘導(dǎo)的氧化應(yīng)激介導(dǎo)了單核細(xì)胞黏附,這一過程與激活I(lǐng)L-8/CXCR2系統(tǒng)有關(guān)。
到目前為止,Ang II誘導(dǎo)趨化因子和炎癥因子表達(dá)的信號(hào)傳導(dǎo)途徑尚不明確。然而,有越來越多的證據(jù)支持核轉(zhuǎn)錄因子κB和AP-1可能協(xié)同參與這一過程。研究報(bào)道各種炎癥刺激包括Ang II、脂多糖、促炎細(xì)胞因子、氧自由基、病毒等都能活化AP-1;Ang II通過活化核轉(zhuǎn)錄因子κB通路,從而誘導(dǎo)大量炎癥基因如白細(xì)胞介素-8、腫瘤壞死因子α、腫瘤壞死因子β的轉(zhuǎn)錄[13]。Schmeisser等[14]報(bào)道Ang II增加單核細(xì)胞白細(xì)胞介素-8的表達(dá),氯沙坦可通過降低核轉(zhuǎn)錄因子κB活性阻斷Ang II 的作用。本研究發(fā)現(xiàn)Ang II通過誘導(dǎo)氧化應(yīng)激,激活核轉(zhuǎn)錄因子κB和AP-1,誘導(dǎo)單核細(xì)胞黏附,而氯沙坦或抗氧化劑PDTC可抑制這一過程,提示Ang II通過激活ROS-NF-κB/AP-1信號(hào)通路上調(diào)白細(xì)胞介素8/CXCR2表達(dá),誘導(dǎo)單核細(xì)胞黏附。氯沙坦通過其抗氧化和抗炎癥特性抑制Ang II所致的單核細(xì)胞活化,這也可能是氯沙坦新的抗動(dòng)脈粥樣硬化的新機(jī)制之一,值得進(jìn)一步深入探討。
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(編輯:常文靜)
Angiotensin Ⅱ Increasing the Monocyte Adhesion Via Up-regulating IL-8 Receptor CXCR2 Expression
XIE Qi-ying, ZHONG Qiao-qing, XIE Xiu-mei, YANG Tian-lun, CHEN Mei-fang.
Department of Geriatric Medicine, Xiangya Hospital, Central South University, Changsha (410008), Hunan, China
CHEN Mei-fang, Email: meifang121@sohu.com
Objective: To explore the effect of angiotensin II (Ang II) increasing the monocyte adhesion w ith the possible molecular mechanism.
Methods: The experimental human monocytoid cells (THP-1) were cultured in 4 groups, each group contained 1×106cells. ① Blank control group, the cells were cultured for 4h or 24 h. ② Ang II treated group, the cells were cultured w ith Ang II (10-6M) for 4h or 24 h. ③Losartan treated group, the cells were cultured w ith losartan (1, 3, 10)μM for 1 hour and followed-by Ang II (10-6M) for 4h or 24 h. ④ PDTC group, cells were cultured w ith the anti oxidative agent PDTC 10 μM for 1.5 h and followed by Ang II (10-6M) for 4h or 24 h. The intracellular reactive oxygen species(ROS), the levels of interleukin-8 (IL-8), tumor necrosis factor (TNF-α) in the medium and the adhesion of monocyte to endothelial cells were exam ined. The expression of CXCR2 mRNA, nuclear factor kappaB (NF-κB) activity and activated protein (AP-1) were determ ined and compared among different groups.
Results: Compared w ith Blank control group, the Ang II treated group had signifi cantly elevated intracellular ROS,IL-8 and TNF-α, more monocyte adhesion to endothelial cells, higher expression of CXCR2 mRNA, increased activity of NF-κB and AP-1. The above Ang II induced up-regulations were inhibited by losartan in a dose-dependent manner. PDTC may also inhibit the Ang II induced oxidative stress and monocyte adhesion.
Conclusion: Ang II activates monocyte for developing atherosclerosis via up-regulating IL-8 receptor CXCR2 expression, which m ight be involved in ROS-NF-κB/AP-1 pathway.
Angiotensin II; Monocyte; Interleukin-8; Chemokine receptor
省科技廳課題(編號(hào):2008FJ4183);湖南省衛(wèi)生廳課題(編號(hào):B2010-013)
410008 湖南省長沙市,中南大學(xué)湘雅醫(yī)院 老干科(謝啟應(yīng)、謝秀梅、楊天倫、陳美芳);4230003 湖南省,郴州市第一人民醫(yī)院心內(nèi)科(鐘巧青)
謝啟應(yīng) 副教授 博士 主要從事心臟電生理研究 Email: eagledoctor@163.com△鐘巧青為并列第一作者 通訊作者:陳美芳Email: meifang121@sohu.com
R54
A
1000-3614(2014)05-0367-05
10.3969/j.issn.1000-3614.2014.05.013
2013-09-13)