馬雙雙，劉 瑩，陳中惠，黃 文，王 益

華中農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科技學(xué)院，武漢 430070

蓮子殼(Lotus seed epicarp)是睡蓮科植物蓮(Nelumbo nucifera，Gaertn.)種子的殼。蓮子殼在自然成熟過(guò)程中伴隨著由綠到褐、由軟到硬的變化，新鮮蓮子殼呈鮮綠色，質(zhì)地軟，老熟蓮子殼呈紅褐色，質(zhì)地堅(jiān)硬，老熟蓮子殼是湘蓮加工副產(chǎn)物，資源豐富，但未被充分利用。近年來(lái)，蓮子殼活性成分的研究逐漸引起學(xué)者的重視。已有文獻(xiàn)報(bào)道新鮮蓮子殼富含單寧、黃酮、原花青素等多酚類(lèi)化合物［1，2］;Chen 通過(guò)HPLC-DAD-ESI-MSn從新鮮蓮子殼中鑒定出17 種黃酮類(lèi)物質(zhì)［3］;新鮮蓮子殼提取物具有抑制脂肪細(xì)胞分裂［4］、抗黑色素瘤［2］、抗氧化［5］等功能。但是，新鮮蓮子殼不易獲得且不易存放，所以本研究以老熟蓮子殼為原料，通過(guò)靜態(tài)吸附與解吸實(shí)驗(yàn)篩選出適合蓮子殼多酚吸附分離的大孔樹(shù)脂，通過(guò)動(dòng)態(tài)吸附與解吸實(shí)驗(yàn)確定蓮子殼多酚純化的工藝參數(shù)，并研究光、溫度、pH、金屬離子對(duì)蓮子殼多酚穩(wěn)定性的影響，以期提高蓮子殼的利用率，為后期產(chǎn)品的開(kāi)發(fā)提供理論基礎(chǔ)。

1 材料與方法

1.1 材料、試劑與儀器

湘蓮蓮子殼(老熟)，收集于武漢市洪湖;AB-8，天津南開(kāi)化工廠;DM10、DM21、DM130，山東魯抗立科藥物化學(xué)有限公司;HPD-100、D101，滄州寶恩吸附材料科技有限公司;一水合沒(méi)食子酸、鎢酸鈉、鉬酸鈉、硫酸鋰、無(wú)水碳酸鈉、無(wú)水乙醇、檸檬酸、磷酸二氫鉀、溴水，國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;所有試劑均為分析純。

HH-S4 型數(shù)顯恒溫水浴鍋，金壇市醫(yī)療儀器廠;SHZ-D(Ⅲ)型循環(huán)水式真空泵，鞏義市予華儀器有限責(zé)任公司;BETA 2-8 LD plus 型凍干機(jī)，德國(guó)MARTIN CHRIST 公司;RE-2000A 型旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器，上海亞榮生化儀器廠;UV-1700 型紫外分光光度計(jì)，日本島津公司。

1.2 實(shí)驗(yàn)方法

1.2.1 蓮子殼多酚提取流程

蓮子殼→粉碎→過(guò)100 目篩→乙醇熱回流提取→抽濾→真空濃縮→真空冷凍干燥→蓮子殼多酚粗提物。

1.2.2 多酚含量的測(cè)定

以一水合沒(méi)食子酸為標(biāo)準(zhǔn)品，采用Folin-Ciocalteus 法［6］測(cè)定多酚含量，多酚含量用質(zhì)量濃度(mg/mL)表示。

1.2.3 大孔樹(shù)脂的預(yù)處理

大孔樹(shù)脂用95%的乙醇在室溫下密封浸泡24 h，蒸餾水沖洗至無(wú)白色渾濁，然后加入5%NaOH 溶液浸泡4 h，蒸餾水洗至中性，再用5%HCL 溶液浸泡4 h，蒸餾水洗至中性，三次酸堿處理后備用。

1.2.4 大孔樹(shù)脂的篩選

1.2.4.1 大孔樹(shù)脂靜態(tài)吸附曲線的繪制

準(zhǔn)確稱(chēng)取經(jīng)過(guò)預(yù)處理且用濾紙吸干表面水分的樹(shù)脂各5 g ± 0.01 g，分別置于100 mL 具塞錐形瓶中，加入相同濃度的蓮子殼多酚粗提液50 mL，避光密封，置于恒溫振蕩器中充分吸附8 h(25 ℃，120 rpm)，每隔1 h 從上清液中取樣，測(cè)定上清液中蓮子殼多酚的含量，計(jì)算吸附率，繪制不同樹(shù)脂的靜態(tài)吸附曲線［7］。

吸附率A(%)=［(C0-Ci)/C0］× 100%

式中:A 為吸附率，%;C0為粗提液中多酚的起始濃度，mg/mL;Ci為吸附第i 小時(shí)后粗提液中多酚的濃度，mg/mL。

1.2.4.2 大孔樹(shù)脂的靜態(tài)解吸曲線的繪制

將充分吸附的樹(shù)脂濾出，用濾紙吸干表面殘余樣液，分別置于100 mL 具塞錐形瓶中，加入50 mL 50%的乙醇溶液，避光密封，置于恒溫振蕩器中解吸3 h(25 ℃，120 rpm)，每隔0.5 h 從解吸液中取樣，測(cè)定解吸液中多酚的含量，計(jì)算解吸率，繪制不同樹(shù)脂的靜態(tài)解吸曲線。

解吸率D(%)=［Cj/(C0-Ce)］× 100%

式中:D 為洗脫率，%;Cj為解吸第j 小時(shí)解吸液中多酚濃度，mg/mL;C0為粗提液中多酚的起始濃度，mg/mL;Ce為吸附平衡時(shí)粗提液中多酚的濃度，mg/mL。

1.2.5 AB-8 樹(shù)脂對(duì)蓮子殼多酚的動(dòng)態(tài)吸附和解吸

1.2.5.1 AB-8 樹(shù)脂對(duì)蓮子殼多酚的動(dòng)態(tài)吸附

取經(jīng)過(guò)預(yù)處理的AB-8 樹(shù)脂40 mL，濕法裝住，不同濃度的蓮子殼多酚粗提液以不同流速上柱，分管收集流出液并檢測(cè)多酚含量，當(dāng)流出液中多酚濃度是上樣濃度的1/10 時(shí)，停止上樣，計(jì)算吸附量，考察上樣濃度、上樣速度對(duì)蓮子殼多酚吸附效果的影響。

動(dòng)態(tài)吸附量Q(mg/mL)=［(C0-C)×V］/W

式中:C0:蓮子殼多酚粗提液的起始濃度，mg/mL;C:流出液中多酚的濃度，mg/mL;V:流出液總體積，mL;W:樹(shù)脂體積，mL。

1.2.5.2 AB-8 樹(shù)脂對(duì)蓮子殼多酚的動(dòng)態(tài)解吸

以最適的樣液濃度、速度上樣，蒸餾水洗脫除去大分子雜質(zhì)后，分別用不同濃度的乙醇以不同速度進(jìn)行解吸，分管收集洗脫液，測(cè)定洗脫液中多酚含量，計(jì)算解吸率，考察乙醇濃度、洗脫速度、洗脫體積對(duì)蓮子殼多酚解吸效果的影響［8］。

動(dòng)態(tài)解吸率(%)=［(C×V)/(Q×W)］×100%

式中，C:洗脫液中蓮子殼多酚濃度，mg/mL;V:洗脫總體積，mL;Q:動(dòng)態(tài)吸附量，mg/mL;W:樹(shù)脂體積，mL。

1.2.6 蓮子殼多酚穩(wěn)定性的研究

利用最佳的純化工藝獲得的蓮子殼多酚解吸液，經(jīng)旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)、冷凍干燥后得蓮子殼多酚粉末。配制蓮子殼多酚樣液，考察光照、溫度、pH 和金屬離子對(duì)其穩(wěn)定性的影響［9］。光照、溫度和pH 對(duì)蓮子殼多酚穩(wěn)定性的影響通過(guò)處理前后多酚含量的變化來(lái)表示，金屬離子對(duì)蓮子殼多酚穩(wěn)定性的影響通過(guò)處理前后樣液在280 nm 處吸光值的變化來(lái)表示。

多酚保存率(%)=ρ1/ρ0×100%

式中，ρ0為處理前多酚濃度，μg/mL;ρ1為處理后多酚濃度，μg/mL。

吸光值的變化=ODi-OD0

式中，OD0為樣液初始時(shí)候的吸光值;ODi 為樣液放置第i 小時(shí)的吸光值。

2 結(jié)果與分析

2.1 大孔樹(shù)脂的篩選

2.1.1 不同樹(shù)脂的靜態(tài)吸附性能比較

大孔吸附樹(shù)脂是以吸附性和篩選性原理相結(jié)合的一種表面吸附劑。其吸附能力的大小與樹(shù)脂的極性、比表面積、孔徑、孔容、能否與被吸附物形成氫鍵等因素有關(guān)。本實(shí)驗(yàn)所選擇的DM10、AB-8、HPD-100、DM21、DM130、D101 樹(shù)脂的靜態(tài)吸附過(guò)程如圖1 所示。

圖1 不同樹(shù)脂的靜態(tài)吸附曲線Fig.1 Static adsorption curve of different resins

由圖1 可知，不同樹(shù)脂具有不同的靜態(tài)吸附特征，吸附速率均隨吸附時(shí)間的延長(zhǎng)逐漸減小。0～4 h，樹(shù)脂的靜態(tài)吸附率隨吸附時(shí)間的延長(zhǎng)而增大，4 h后，吸附趨于飽和。DM10、AB-8、HPD-100、DM21、DM130、D101 樹(shù)脂的靜態(tài)飽和吸附率分別為73.6%、71.7%、70.1%、67.4%、65.4%、56.1%。DM10、AB-8、HPD-100 的吸附效果較好，吸附率均達(dá)到70%。

2.1.2 大孔樹(shù)脂的靜態(tài)解吸性能比較

DM10、AB-8、HPD-100、DM21、DM130、D101 樹(shù)脂的靜態(tài)解吸過(guò)程如圖2 所示。

圖2 不同樹(shù)脂的靜態(tài)解吸曲線Fig.2 Static desorption curve of different resins

由圖2 可知，6 種樹(shù)脂的解吸率存在先增加后平衡的趨勢(shì)，在1.5 h 均能完全解吸。此時(shí)，AB-8、DM130、HPD-100、DM10、D101、DM21 樹(shù)脂的靜態(tài)解吸率依次為88.8%、86.5%、82.5%、82.3%、72.7%、65.3%。AB-8、DM130 解吸效果相對(duì)較好，DM21、D101 樹(shù)脂的解吸率明顯低于另外4 種樹(shù)脂，不適合于蓮子殼多酚的純化。

靜態(tài)吸附和解吸實(shí)驗(yàn)表明，雖然AB-8 樹(shù)脂的靜態(tài)吸附率略低于DM10，但其解吸率最大，綜合考慮樹(shù)脂的靜態(tài)吸附和解吸能力，得出AB-8 樹(shù)脂對(duì)蓮子殼多酚具有較強(qiáng)的選擇性，且易回收，最適合于蓮子殼多酚分離純化。

2.2 AB-8 樹(shù)脂的動(dòng)態(tài)吸附和解吸實(shí)驗(yàn)

2.2.1 上樣濃度對(duì)吸附量的影響

調(diào)節(jié)上樣速度0.5 mL/min，測(cè)定不同上樣濃度條件下AB-8 樹(shù)脂對(duì)蓮子殼多酚的吸附量，結(jié)果如圖3 所示。

圖3 上樣濃度對(duì)吸附量的影響Fig.3 Effect of concentration of LSEPPs on adsorption capacity

由圖3 可知，隨著上樣濃度的增加，AB-8 樹(shù)脂對(duì)蓮子殼多酚的吸附量呈現(xiàn)先增加后減少的趨勢(shì)。當(dāng)樣液濃度為1.5 mg/mL 時(shí)，AB-8 樹(shù)脂的吸附量?jī)H為6.1 mg/mL;當(dāng)樣液濃度提高到4.5 mg/mL 時(shí)，AB-8 樹(shù)脂的吸附量為10.47 mg/mL。這是因?yàn)楫?dāng)樣液濃度較低時(shí)，隨樣液濃度的增加，可吸附物質(zhì)的量增加，因此，AB-8 樹(shù)脂的吸附量逐漸增加。但是，隨著樣液濃度的繼續(xù)增大，與多酚競(jìng)爭(zhēng)吸附的雜質(zhì)量增加，在流速一定的條件下，蓮子殼多酚在AB-8樹(shù)脂內(nèi)部擴(kuò)散能力下降，從而導(dǎo)致樹(shù)脂吸附量有所下降。因此，上樣濃度選擇4.5 mg/mL。

2.2.2 上樣速度對(duì)吸附量的影響

調(diào)節(jié)上樣濃度4.5 mg/mL，測(cè)定不同上樣速度條件下AB-8 樹(shù)脂對(duì)蓮子殼多酚的吸附量，結(jié)果如圖4 所示。

圖4 上樣速度對(duì)吸附量的影響Fig.4 Effect of feeding rate on adsorption capacity

由圖4 可知，隨著上樣速度的增大，AB-8 樹(shù)脂對(duì)蓮子殼多酚的吸附量逐漸減少。當(dāng)上樣速度由0.25 mL/min 增大到2 mL/min 時(shí)，吸附量由12.57 mg/mL 降低到6.59 mg/mL。這是因?yàn)樯蠘铀俣仍龃蟮倪^(guò)程中，多酚類(lèi)物質(zhì)未來(lái)得及在樹(shù)脂上充分吸附便流出樹(shù)脂柱。雖然，較低的流速有利于充分吸附，但是，流速過(guò)低會(huì)延長(zhǎng)工作時(shí)間，降低工作效率。當(dāng)上樣速度為0.25 mL/min 時(shí)，吸附量為12.57 mg/mL，當(dāng)上樣速度為0.5 mL/min 時(shí)，吸附量為12.30 mg/mL。從提高生產(chǎn)效率角度考慮，選擇0.5 mg/mL 的速度進(jìn)行上樣吸附。

2.2.3 乙醇濃度對(duì)解吸效果的影響

調(diào)節(jié)上樣濃度4.5 mg/mL、上樣速度0.5 mL/min、洗脫速度2 mL/min、洗脫體積4 BV，測(cè)定不同乙醇濃度條件下AB-8 樹(shù)脂對(duì)蓮子殼多酚的解吸率，結(jié)果如圖5 所示。

圖5 乙醇濃度對(duì)解吸效果的影響Fig.5 Effect of concentration of ethanol on desorption rate

由圖5 可知，當(dāng)乙醇濃度小于50%時(shí)，蓮子殼多酚在AB-8 樹(shù)脂上的解吸率逐漸增大，繼續(xù)增大乙醇濃度，解吸率無(wú)明顯變化。因?yàn)椴煌瑵舛鹊囊掖季哂胁煌臉O性，具有不同的洗脫能力。因此，選擇50% 的乙醇做為洗脫劑，此條件下，解吸率為81.21%。

2.2.4 洗脫速度對(duì)解吸效果的影響

圖6 洗脫速度對(duì)解吸效果的影響Fig.6 Effect of elution speed on desorption rate

調(diào)節(jié)上樣濃度4.5 mg/mL、上樣速度0.5 mL/min、乙醇濃度50%、洗脫體積4BV，測(cè)定不同洗脫速度條件下AB-8 樹(shù)脂對(duì)蓮子殼多酚的解吸率，結(jié)果如圖6 所示。

由圖6 可知，AB-8 樹(shù)脂對(duì)蓮子殼多酚的解吸率與洗脫速度存在反比例關(guān)系。當(dāng)洗脫流速由0.5 mL/min 增大到4 mL/min 時(shí)，解吸率由82.23% 降為68.05%。因?yàn)橄疵摿魉僭龃?，洗脫劑未?lái)得及與吸附在樹(shù)脂上的多酚充分接觸，使其不能將多酚從吸附位點(diǎn)上完全置換出來(lái)。選擇合適的洗脫流速對(duì)于洗脫效果和工業(yè)生產(chǎn)效率的提高均有一定的影響。當(dāng)洗脫流速?gòu)?.5 mL/min 增大到2 mL/min時(shí)，解吸率變化不大，因此，選擇2 mL/min 的流速進(jìn)行洗脫。

2.2.5 洗脫體積對(duì)解吸效果的影響

調(diào)節(jié)上樣濃度4.5 mg/mL、上樣速度0.5 mL/min、乙醇濃度50%、洗脫速度2 mL/min，測(cè)定不同洗脫體積條件下AB-8 樹(shù)脂對(duì)蓮子殼多酚的解吸率，結(jié)果如圖7 所示。

圖7 洗脫體積對(duì)解吸效果的影響Fig.7 Effect of elution volume on desorption rate

由圖7 可知，1～4 BV，乙醇對(duì)蓮子殼多酚的洗脫能力存在劑量效應(yīng)關(guān)系，1 BV 時(shí)，解吸率僅有30.98%，4 BV 時(shí)，解吸趨于平衡，解吸率達(dá)到82.72%，繼續(xù)增大乙醇用量，解吸率無(wú)明顯增加。從節(jié)約成本考慮，選擇洗脫劑體積為4 BV。

2.3 蓮子殼多酚穩(wěn)定性的研究

2.3.1 光照對(duì)蓮子殼多酚穩(wěn)定性的影響

將蓮子殼多酚樣液分裝于透光性良好的具塞試管中，試管平均分成3 組，第1 組置于室外，進(jìn)行陽(yáng)光直射;第2 組置于室內(nèi)，避免陽(yáng)光直射;第三組置于黑暗處，避免與光源接觸。每隔1 d 分別測(cè)定3組試管中的多酚含量，連續(xù)測(cè)定8 d，結(jié)果如圖8 所示。

圖8 光照對(duì)蓮子殼多酚穩(wěn)定性的影響Fig.8 Effect of light on stability of LSEPPs

由圖8 可知，蓮子殼多酚對(duì)光較敏感。在避光、室內(nèi)光、室外陽(yáng)光直射條件下，隨著放置時(shí)間的延長(zhǎng)，多酚含量均呈下降趨勢(shì)且下降程度依次增大。同時(shí)，樣液顏色隨放置時(shí)間的延長(zhǎng)發(fā)生不同程度的變化，避光處理?xiàng)l件下無(wú)明顯變化，室內(nèi)光和室外陽(yáng)光直射條件下的樣液顏色逐漸變紅，且后者變紅更加明顯。第8 d 時(shí)，避光、室內(nèi)光、室外陽(yáng)光直射條件下的多酚保存率分別為91.00%、81.13%、62.67%。由此可見(jiàn)，蓮子殼多酚在生產(chǎn)和加工過(guò)程中應(yīng)減少與光源的接觸。

2.3.2 溫度對(duì)蓮子殼多酚穩(wěn)定性的影響

將蓮子殼多酚樣液分裝于透光性良好的具塞試管中，試管平均分成5 組，分別放到4、25、37、50、75、100 ℃恒溫水浴鍋中。每隔2 h 分別測(cè)定5 組試管中的多酚含量，連續(xù)測(cè)定10 h，結(jié)果如圖9(a)和9(b)所示。

圖9 (a) 溫度對(duì)蓮子殼多酚穩(wěn)定性的影響Fig.9 (a) Effect of temperature on stability of LSEPPs

圖9 (b) 不同溫度處理10 h 后蓮子殼多酚的保存率Fig.9 (b) Preserving rate of LSEPPs at different temperature after staying 10 h

由圖9(a)和9(b)可知，溫度對(duì)蓮子殼多酚的穩(wěn)定性具有顯著影響。在不同溫度條件下，隨著加熱時(shí)間的延長(zhǎng)，多酚含量均有不同程度的降低。保溫10 h 后，4、25、37、50、75、100 ℃條件下的多酚保存率依次為98.3%、96.4%、92.9%、83.6%、71.5%、50.2%。由此可見(jiàn)，隨著溫度的升高，多酚的熱降解速度增大;當(dāng)溫度超過(guò)50 ℃時(shí)，降解速度明顯加快，100 ℃條件下加熱10 h 后，保存率僅剩一半。因此，多酚熱穩(wěn)定性差，低溫更有利于其保存。

2.3.3 pH 對(duì)蓮子殼多酚穩(wěn)定性的影響

分別配制pH 為2、4、6、8、10 的緩沖溶液，加入等量的蓮子殼多酚粉末，充分溶解后置于37 ℃恒溫水浴鍋中，保溫2 h 后測(cè)定多酚含量，結(jié)果如圖10所示。

圖10 pH 對(duì)蓮子殼多酚穩(wěn)定性的影響Fig.10 Effect of pH on stability of LSEPPs

由圖10 可知，當(dāng)溶液pH 在2.0～6.0 范圍內(nèi)，多酚含量變化不大，且pH 為4.0 時(shí)多酚含量最高;當(dāng)溶液pH 呈堿性時(shí)，多酚含量顯著下降，堿性越強(qiáng)，多酚破壞程度越大。樣液顏色亦隨著pH 的增大而加深，pH 為10.0 時(shí)，樣液呈橘紅色。由此可見(jiàn)，蓮子殼多酚在弱酸性條件下比較穩(wěn)定，對(duì)于多酚及其產(chǎn)品的使用和加工應(yīng)在弱酸條件下進(jìn)行。

2.3.4 金屬離子對(duì)蓮子殼多酚穩(wěn)定性的影響

分別配制濃度為0.05 mg/mL 的K+、Ca2+、Na+、Mg2+、Cu2+、Fe2+、Fe3+、Zn2+、Al3+、Pb2+、Ba2+、Sn2+溶液，加入等量的蓮子殼多酚粉末，振蕩溶解后，置于37 ℃恒溫水浴鍋中，每隔1 h 測(cè)定不同離子樣液(上清液)在280 nm 處的吸光值，連續(xù)測(cè)定4 h，結(jié)果如圖11 所示。

圖11 金屬離子對(duì)蓮子殼多酚穩(wěn)定性的影響Fig.11 Effect of metal ions on stability of LSEPPs

由圖11 可知，隨著放置時(shí)間的延長(zhǎng)，含有不同金屬離子的多酚樣液的吸光值和顏色發(fā)生不同程度的變化。K+、Ca2+、Na+、Mg2+、Ba2+、Zn2+這6 種離子存在時(shí)，多酚樣液的吸光值和顏色與空白組無(wú)差異，因此，對(duì)多酚的穩(wěn)定性無(wú)影響。Sn2+對(duì)蓮子殼多酚的影響最為顯著，Sn2+加入后，溶液立即變渾濁，有黃色絮狀沉淀產(chǎn)生，且隨放置時(shí)間延長(zhǎng)沉淀量增加;Fe3+加入后，多酚樣液由淺黃色變成藍(lán)黑色，并出現(xiàn)少量墨綠色絮狀沉淀;Fe2+加入后，多酚溶液由淺黃色變?yōu)樗{(lán)黑色，無(wú)肉眼可見(jiàn)沉淀產(chǎn)生;Al3+加入后樣液黃色加深，同時(shí)出現(xiàn)少量淺黃色絮狀沉淀;Pb2+加入后，溶液變渾濁，并產(chǎn)生少量淺黃色絮狀沉淀;Cu2+加入后，樣液黃色加深，無(wú)沉淀產(chǎn)生。由此可見(jiàn)，F(xiàn)e2+、Fe3+、Al3+、Sn2+、Pb2+、Cu2+、Pb2+離子對(duì)蓮子殼多酚具有明顯的破壞作用，在多酚的制備、保存和使用中，應(yīng)盡量避免與這6 種離子接觸。

3 結(jié)論

通 過(guò) AB-8、HPD-100、D101、DM10、DM21、DM130 這6 種樹(shù)脂的靜態(tài)吸附和解吸動(dòng)力學(xué)實(shí)驗(yàn)確定AB-8 樹(shù)脂吸附量大且易解吸，是蓮子殼多酚分離純化的最佳樹(shù)脂。通過(guò)AB-8 樹(shù)脂的動(dòng)態(tài)吸附和解吸實(shí)驗(yàn)確定蓮子殼多酚純化的工藝參數(shù)為:上樣濃度4.5 mg/mL，上樣速度0.5 mL/min，洗脫劑乙醇濃度50%，洗脫流速2 mL/min，洗脫體積4BV，該條件下，蓮子殼多酚純度可達(dá)69.34%。此工藝條件既充分利用了柱材料又達(dá)到了理想的分離效果。穩(wěn)定性實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明:蓮子殼多酚在光照、高溫和堿性環(huán)境中易破壞，光照越強(qiáng)，溫度越高，堿性越強(qiáng)，破壞程度越大。不同金屬離子對(duì)蓮子殼多酚穩(wěn)定性影響不同，F(xiàn)e2+、Fe3+、Al3+、Sn2+、Cu2+、Pb2+這6 種離子對(duì)蓮子殼多酚具有顯著的破壞作用，K+、Ca2+、Na+、Mg2+、Zn2+、Ba2+這6 種離子無(wú)影響。因此，蓮子殼多酚的開(kāi)發(fā)利用應(yīng)在避光、低溫、弱酸環(huán)境中進(jìn)行，并應(yīng)避免與錫、鐵、鋁、銅等器皿的接觸，降低環(huán)境中鉛的含量。

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