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        聚羥基脂肪酸酯合成酶的改造和代謝途徑構(gòu)建的研究進(jìn)展

        2013-12-21 07:52:58黃媛媛宋水山
        生物學(xué)雜志 2013年3期
        關(guān)鍵詞:利用

        李 浩, 黃媛媛, 李 曼, 宋水山

        (1. 河北工業(yè)大學(xué)化工學(xué)院,天津300130; 2. 河北省科學(xué)院生物研究所,石家莊050051;3. 河北省主要農(nóng)作物病害微生物控制工程技術(shù)研究中心,石家莊050081)

        聚羥基脂肪酸酯(Polyhydroxyalkanoates,PHA)是微生物在非平衡生長(zhǎng)(如碳源過(guò)剩,氮氧、磷、鐵等營(yíng)養(yǎng)缺乏)條件下在胞內(nèi)積累的碳源和能源儲(chǔ)存物質(zhì),具有生物降解性和生物相容性,是替代化學(xué)常規(guī)塑料的理想材料,也在生物醫(yī)學(xué)方面極具應(yīng)用前景[1]。PHA是一類(lèi)由3-羥基脂肪酸組成的線性聚酯,根據(jù)組成PHA單體的碳鏈長(zhǎng)度可以把PHA分為兩大類(lèi):短鏈PHA和中長(zhǎng)鏈PHA。短鏈PHA單體主要由3~5個(gè)碳原子組成,其材料性質(zhì)與化學(xué)塑料聚丙烯較為接近。中長(zhǎng)鏈PHA的單體主要由6~14個(gè)碳原子組成,其材料性質(zhì)與橡膠、彈性纖維較為接近。最近研究發(fā)現(xiàn),如果在聚-3-羥基丁酸[P(3HB)]的骨架中插入少量的中長(zhǎng)鏈的單體,可以合成像聚乙烯那樣的低密度材料[2-8]。

        PHA生物合成過(guò)程主要涉及兩個(gè)反應(yīng)步驟:一是利用各種代謝分子合成單體羥?;o酶A (3-hydroxyacyl-CoAs,HA-CoAs);二是PHA聚合酶使HA-CoAs聚合生成PHA。聚-3-羥基脂肪酸酯因具有生物可降解性、光學(xué)活性、抗紫外輻射、生物相容性等許多優(yōu)點(diǎn)而被研究最為廣泛。但P(3HB)易脆,柔軟度差,后期加工性能差。為了促進(jìn)PHA的商業(yè)化,滿足不同應(yīng)用領(lǐng)域?qū)Σ牧闲阅艿囊螅枰铣删哂胁煌阅艿腜HA。PHA聚合酶的活性、底物特異性以及微生物代謝途徑?jīng)Q定著PHA的單體組成,進(jìn)而影響著PHA的理化特性和材料性能。本文將概述PHA合成酶分子改造和PHA合成代謝工程方面的研究進(jìn)展,并討論含稀有單體PHA的合成。

        1. PHA合成酶的分類(lèi)及改造

        根據(jù)PHA合成酶的亞基構(gòu)成和底物特異性的差異,PHA合成酶大致可以分為I、 II、 III和IV等4類(lèi)。I、II類(lèi)PHA合成酶只有一個(gè)PhaC亞基。I類(lèi)PHA合成酶可以利用短鏈HA-CoAs為底物,而II類(lèi)的PHA聚合酶可以利用短鏈HA-CoAs,也可以利用長(zhǎng)鏈HA-CoAs為底物[9,10]。III類(lèi)PHA合成酶由PhaC和PhaE兩個(gè)亞基組成,其亞基末端序列與I類(lèi)、II類(lèi)的PHA合成酶具有一定的同源性,例如PhaC亞基與I類(lèi)、II類(lèi)相比存在20%~30%的同源性。III類(lèi)PHA合成酶對(duì)短鏈的HA-CoAs具有很高的特異性,但是在一些假單胞菌中它也可以聚合中長(zhǎng)鏈的HA-CoAs合成PHA[11]。IV類(lèi)PHA合成酶由PhaC和PhaR兩個(gè)亞基組成,主要存在于芽孢桿菌中[12,13]。如圖1所示,不同類(lèi)型的PHA合成酶利用不同種類(lèi)的HA-CoAs作為底物聚合生成含有不同單體的PHA。

        不同類(lèi)型的PHA合成酶具有不同的底物特異性。一般來(lái)說(shuō),PHA合成酶對(duì)短鏈HA-CoAs的選擇性強(qiáng),而對(duì)長(zhǎng)鏈HA-CoAs的選擇性較差。如要生物合成含有中長(zhǎng)鏈脂肪酸單體和短鏈脂肪酸單體的共聚物,尚需要發(fā)掘新的天然PHA合成酶或?qū)μ烊籔HA合成酶進(jìn)行定向分子改造。

        圖1 不同種類(lèi)的PHA合成酶的亞基組成及其底物特異性

        Matsusaki等首先發(fā)現(xiàn)來(lái)自于假單胞菌Pseudomonassp. 61-3中的PHA合成酶可以利用聚合短鏈的單體也可以聚合中長(zhǎng)鏈的單體,在以葡萄糖酸鈉為唯一碳源培養(yǎng)時(shí),合成由C4、C6、C8、C10和C12的3HA單體組成的PHA。其合成酶基因phaC1和phaC2的氨基酸序列與P.oleovorans和P.aeruginosa的PHA合成酶基因有較高的同源性,并且Pseudomonassp. 61-3的合成酶基因phaC1和phaC2之間的同源性也達(dá)到了53.2%[14]。Amara等人發(fā)現(xiàn)Aeromonascaviae中的PHA合成酶也可以高效聚合3HB-CoA和3HHx-CoA兩種單體,產(chǎn)生P(3HB-co-3HHx)。A.caviae的PHA合成酶的基因與Acinetobactersp和R.eutropha的PHA合成酶的同源性較高,分別為45.1%和42.7%[15]。Kesaven等人發(fā)現(xiàn)的Chromobacteriumsp. USM2的PHA合成酶可以同時(shí)聚合3HB、3HHx和3HV,并且它的酶活是同屬的其他菌酶活的8倍左右。把USM2的合成酶基因插入到大腸桿菌中,以葡萄糖為碳源培養(yǎng)24 h后,P(3HB)的累積量可達(dá)細(xì)胞干重的(76±2)%[16]。Chung等人研究發(fā)現(xiàn)P.entomophilaL48積累的PHA中由4種單體組成,其中3HD占38.6mol%、3HO占44.5mol%[17]。

        在對(duì)PHA合成酶的分子改造方面,Matsumoto等人在Pseudomonassp. 61-3 PHA合成酶中發(fā)現(xiàn)了4個(gè)關(guān)鍵的氨基酸位點(diǎn)(Glu130、Ser325、Ser477、Gln481),它們可以使聚合酶在特異性聚合3HB-CoA同時(shí)也不影響對(duì)中長(zhǎng)鏈3HA-CoA單體的聚合活性。這4個(gè)氨基酸位點(diǎn)的突變,明顯提高了P(3HB)的合成,與野生型相比,大約提高了340~400倍。更重要的是當(dāng)這些氨基酸位點(diǎn)發(fā)生改變時(shí),可以使大多數(shù)Pseudomonas中的II類(lèi)PHA合成酶聚合3HB-CoA[18]。利用Pseudomonas中II類(lèi)的PHA合成酶或者突變過(guò)的酶已成功的合成出了P(3HB-co-3HA)的共聚物,其中3HB單體的含量超過(guò)95 mol%。

        Amara等人對(duì)A.punctata的PHA合成酶進(jìn)行隨機(jī)突變,從200000個(gè)突變體中篩選PHA合成酶活性提高的突變體,其中發(fā)現(xiàn)兩個(gè)單突變體F518I和V214G可以提高合成酶的胞外活性至原來(lái)的2~5倍,但是PHA的積累量只提高7%~20%[19,20]。暗示PHA合成酶的胞外活性與PHA的積累量可能沒(méi)有必然的聯(lián)系。同時(shí)也發(fā)現(xiàn)在這些突變體中,所合成的PHA的分子量也有所增加,但是聚合物中單體3HB和3HHx的摩爾分?jǐn)?shù)沒(méi)有明顯的改變。同樣在A.caviae中另外兩個(gè)PHA合成酶突變體N149S和D171G中,合成酶的胞外活性提高了21%~56%, PHA的積累量與野生型相比提高了6.5倍,并且聚合物中3HHx所占的摩爾分?jǐn)?shù)也提高了10%~18%。在對(duì)A.caviae的進(jìn)一步研究中,利用N149S和D171G兩個(gè)位點(diǎn)的雙突變體NSDG研究時(shí)發(fā)現(xiàn),在以辛酸鈉為碳源時(shí),產(chǎn)生的PHA聚合物中3HO單體占0.4mol%,而3HHx占18.1mol%[21,22]。以果糖為碳源時(shí)可以使合成的P(3HB)的平均分子量達(dá)到3.68×106Dr。

        Xue等人對(duì)Pseudomonasstutzeri1317的PHA合成酶的密碼子及mRNA的結(jié)構(gòu)進(jìn)行了優(yōu)化,利用添加的發(fā)卡結(jié)構(gòu)增加了mRNA的穩(wěn)定性[23]。優(yōu)化后的合成酶基因?qū)氪竽c桿菌,發(fā)現(xiàn)與未優(yōu)化的合成酶相比,優(yōu)化后的重組大腸桿菌中PHB的積累量提高了16倍。當(dāng)以十二烷酸鹽為碳源時(shí),可以合成由3HB和中長(zhǎng)鏈單體3HA單體組成的共聚物P(3HB-co-3HA),并且比原來(lái)的積累量提高了4倍。

        2 PHA合成的代謝工程

        4HB的引入可以顯著改善P(3HB)的材料性能,因此,P(3HB-co-4HB)的生物合成受到了廣泛關(guān)注[24]。Hein等人把R.eutropha的PHA合成酶基因和C.kluyveri的CoA轉(zhuǎn)移酶基因插入到大腸桿菌中,此重組后的大腸桿菌在含有葡萄糖和4HB的培養(yǎng)基中培養(yǎng),可以合成得到P(4HB)的均聚物。但在培養(yǎng)基中只加入4HB時(shí),合成的PHA為P(72mol%3HB-co-28mol%4HB)。說(shuō)明存在未知的代謝途徑可以把4HB轉(zhuǎn)化為3HB,而葡萄糖的存在可能抑制了這種轉(zhuǎn)化。

        如果想直接利用葡萄糖為碳源合成4HB-CoA,就需要其他酶的參與。Valentin等人研究發(fā)現(xiàn)三種重要的酶:琥珀酸半醛脫氫酶、4-羥基丁酸脫氫酶和CoA轉(zhuǎn)移酶,通過(guò)它們的作用可以從葡萄糖中合成4HB-CoA,如圖2所示。在重組的大腸桿菌里利用上述的方法成功合成了P(3HB-4HB),但是因?yàn)閱误w4HB只占2.8mol%,所以還不足以影響整個(gè)材料的性質(zhì)。Li后來(lái)在此方法的基礎(chǔ)上進(jìn)行了改良,阻止琥珀酸半醛轉(zhuǎn)化為琥珀酸鹽,可以把PHA中4HB單體的比例提高到11mol%。如果在培養(yǎng)基中補(bǔ)充α-酮戊二酸或者檸檬酸,可以使PHA中4HB的比例提高到20%[25]。宋水山等構(gòu)建的重組質(zhì)粒,可以利用TCA中間代謝產(chǎn)物合成出4HB單體,利用此質(zhì)粒轉(zhuǎn)化的大腸桿菌可以合成純的P(4HB)[26]。

        Valentin等人在合成含有3HP的PHA中也是采用了類(lèi)似合成P(3HB-4HP)的方法。他們?cè)诖竽c桿菌里導(dǎo)入了R.eutropha的PHA合成酶和Salmonella enterica serovar Typhimurium的丙酰-CoA合成酶(PrpE)兩個(gè)基因。當(dāng)此重組的大腸桿菌在含有3HP的培養(yǎng)基中培養(yǎng)時(shí),就可以合成共聚物P(3HB-3HP)[27]。

        Fukui等人在R.eutropha中也建立一種可以合成P(3HP-3HP)的代謝途徑。攜帶丙二酰-CoA還原酶和3HP-CoA合成酶基因的重組R.eutropha可以利用一些結(jié)構(gòu)無(wú)關(guān)的碳源如果糖或是脂肪酸來(lái)合成P(3HP-3HP),其中單體3HP所占的比例為2.1mol%[28]。最新研究出的合成含有3HP的PHA的代謝途徑是把C.butyricum的甘油脫氫酶、S.enterica的丙醛脫氫酶和R.eutropha的PHA合成酶基因整合到大腸桿菌中,重組后的大腸桿菌以甘油為碳源培養(yǎng),可以生成P(3HP),占總的聚合物質(zhì)量的11.98%[29]。

        圖2 在重組的E.coli中PHA合成的代謝途徑

        為了能在生產(chǎn)P(3HB-3HA)的過(guò)程使用一些結(jié)構(gòu)不相關(guān)的碳源如:糖類(lèi)、脂肪酸或油類(lèi)物質(zhì),有必要開(kāi)發(fā)出新的代謝途徑,既能大量合成中長(zhǎng)鏈的3HA-CoAs單體,又能合成特定單體比例的聚合物。以前的研究結(jié)果表示大部分的 P(3HB-3HA)中,除了P(3HB-3HHx)都很難準(zhǔn)確地控制聚合物單體間的比例。不過(guò)在最新研究中,Gao等人通過(guò)新構(gòu)建的代謝途徑,利用重組的惡臭假單胞菌(P.putida)可以生產(chǎn)出中長(zhǎng)鏈單體的均聚PHA,而利用這種新構(gòu)建的代謝途徑,有可能控制合成的P(3HB-3HA)中單體的比例[30-32]。最近對(duì)P.putidaKT2442的研究發(fā)現(xiàn),可以生產(chǎn)出一系列中長(zhǎng)鏈單體聚合而成的PHA均聚物。Wang等人構(gòu)建的重組E.coliXL1-Blue中,把P.resinovorans的PhaC1基因及其它一系列基因?qū)肫渲?,?dāng)在含有乳酸的培養(yǎng)基中培養(yǎng)時(shí)可以產(chǎn)生PLA的均聚物,若以癸酸或者正十二烷酸為碳源培養(yǎng)時(shí),則可以分別合成聚3-羥基癸酸和聚(3-羥基癸酸-84mol%3-羥基十二烷酸)。

        Yang等人為了聚合3HV單體,在大腸桿菌中插入了丙酰輔酶A轉(zhuǎn)移酶(pct)以及R.eutropha的PHA合成酶等基因。其中丙酰輔酶A轉(zhuǎn)移酶可以高效的合成丙酰輔酶A進(jìn)而合成出3HV單體。合成此重組后的大腸桿菌可以合成出P(HB-co-HV),并且3HV單體占總聚合物質(zhì)量的80%以上[33]。

        3 生物合成含有2-羥基酸的PHA

        Tsuji等人研究發(fā)現(xiàn),PHA中的2-羥基丁酸(2HB)單體可以形成立體絡(luò)合結(jié)構(gòu),可以顯著提高PHA的熱學(xué)性能和材料性能[34]。目前在自然界中,還沒(méi)有發(fā)現(xiàn)可以合成含有2-羥基脂肪酸(2-HA)單體PHA的細(xì)菌。因此需要研究出可以合成含有2-羥基脂肪酸單體PHA的代謝途徑和PHA合成酶。

        Han等人在對(duì)I、II、III和IV類(lèi)的PHA合成酶進(jìn)行大量的篩選后發(fā)現(xiàn),R.eutrophaH16的PHA合成酶可以合成含有2HB單體的PHA共聚物,并且聚合過(guò)程要以3HB-CoA為起點(diǎn),得到聚合物為P(3HB-9mol% 2HB)。但在目前的研究中,還不能合成出均聚物P(2HB)。

        Matsumoto等人構(gòu)建的重組大腸桿菌LS5218,導(dǎo)入了Pseudomonassp 61-3 PHA合成酶的突變基因、M.elsdenii的Pct基因和P.aeruginosa的烯酰-CoA水合酶基因。當(dāng)LS5218在含有乙醇酸鹽和十二烷酸鹽的培養(yǎng)基中培養(yǎng),合成出含有2-HA和中長(zhǎng)鏈3-HA組成的共聚物,平均分子量可以達(dá)到34000 Dr。

        最近Park等人新構(gòu)建的重組大腸桿菌導(dǎo)入了基因PhaC1Ps6-19和PctCp,其可以利用結(jié)構(gòu)不相關(guān)的碳源合成含有2HB單體的PHA。隨著培養(yǎng)基中2HB和3HB的濃度變化,合成的PHA中2HB的單體的摩爾百分?jǐn)?shù)在10mol%到60mol%之間變化。當(dāng)加入的2HB濃度為2 g/L,3HB濃度為0.5 g/L時(shí),合成的PHA中2HB單體的摩爾百分比達(dá)到最高61mol%,占PHA重量的26.7%。

        另一個(gè)重組的大腸桿菌XLdh導(dǎo)入了PhaC1Ps6-19、PctCp、CimA、LeuBCD和PanE基因,使它可以利用培養(yǎng)基中的3HB,合成含有單體2HB、3HB和少量乳酸單體的PHA。如果在此大腸桿菌中導(dǎo)入R.eutropha的β-酮硫酶和乙酰乙?;?CoA還原酶,就可以利用葡萄糖作為單一的碳源合成P(2HB-3HB-LA),此時(shí)共聚物中2HB的摩爾百分比減少到了3mol%,可能是因?yàn)橐阴?CoA在合成2HB-CoA、3HB-CoA和lactyl-CoA3個(gè)單體中,主要用于合成PHA中的3HB-CoA,生成的聚(47 mol% 2HB-50 mol% 3HB-3mol% LA)的平均分子量、聚合度和玻璃化溫度分別是20000、1.69和9.7 ℃[35]。

        4 展望

        盡管目前還不知道PHA合成酶的精確結(jié)構(gòu),但突變體分析已經(jīng)發(fā)現(xiàn)影響PHA合成酶活性和底物特異性的關(guān)鍵氨基酸位點(diǎn),通過(guò)PHA合成酶的分子改造可以進(jìn)一步提高生物PHA合成酶活性的效率及增加合成PHA的種類(lèi)。利用基因工程技術(shù)可以構(gòu)建合成多種單體及不同比例的代謝途徑,進(jìn)而合成滿足不同實(shí)際需求的PHA,促進(jìn)PHA的商業(yè)化進(jìn)程。目前對(duì)PHA合成的研究,也很重視如何從低廉的碳源中更高效經(jīng)濟(jì)的獲得PHA。目前很多研究結(jié)果展示,許多自然界中的微生物可以從淀粉,廢棄的脂肪酸甚至工業(yè)中的廢水中合成PHA。這樣既能變廢為寶又能對(duì)環(huán)境產(chǎn)生積極的影響。此外,在細(xì)菌中有很多的調(diào)控系統(tǒng)對(duì)PHA的合成具有明顯的影響,如群體感應(yīng)系統(tǒng)、雙因子調(diào)控系統(tǒng)和轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)因子等。如果能清楚地了解這些機(jī)制,就能使我們做出更好的應(yīng)對(duì)機(jī)制,提高PHA的合成效率。

        [1]Song S H,Hein S,Steinbüchel A. Production of poly(4-hydroxybutyric acid) by fed-batch cultures of recombinant strains ofEscherichiacoli[J]. Biotechnol Lett,1999,21(3): 193-197.

        [2]Matsumoto K,Aoki E,Takase K,et al. In vivo and in vitro characterization of Ser477X mutations in polyhydroxyalkanoate (PHA) synthase 1 fromPseudomonassp. 61 3: effects of beneficial mutations on enzymatic activity,substrate specificity,and molecular weight of PHA [J]. Biomacromolecules,2006,7: 2436-2442.

        [3]Matsumoto K,Nakae S,Taguchi K,et al. Biosynthesis of poly(3-hydroxybutyrate-co-3-hydroxyalkanoates) copolymer from sugars by recombinantRalstoniaeutrophaharboring thephaC1Psand thephaGPsgenes ofPseudomonassp. 61 3 [J]. Biomacromolecules,2001,2: 934-949.

        [4]Matsumoto K,Takase K,Aoki E,et al. Synergistic effects of Glu130Asp substitution in the type II polyhydroxyalkanoate (PHA) synthase: enhancement of PHA production and alteration of polymer molecular weight [J]. Biomacromolecules,2005,6: 99-104.

        [5]Matsumoto K,Ishiyama A,Sakai K,et al. Biosynthesis of glycolate-based polyesters containing medium-chain-length 3-hydroxyalkanoates in recombinantEscherichiacoliexpressing engineered polyhydroxyalkanoate synthase [J]. Biotechnol,2011,156: 214-217.

        [6]Park S J,Lee S Y. Biosynthesis of poly(3-hydroxybutyrate-co-3-hydroxyalkanoates) by metabolically engineeredEscherichiacolistrains[J]. Appl Biochem Biotechnol,2004,114:335-346.

        [7]Takase K,Matsumoto K,Taguchi S,et al. Alteration of substrate chain-length specificity of type II synthase for polyhydroxyalkanoate biosynthesis by in vitro evolution: in vivo and in vitro enzyme assays [J]. Biomacromolecules,2004,5: 480-485.

        [8]Takase K,Taguchi S,Doi Y. Enhanced synthesis of poly(3-hydroxybutyrate) in recombinantEscherichiacoliby means of error-prone PCR mutagenesis,saturation mutagenesis,and in vitro recombination of the type II polyhydroxyalkanoate synthase gene [J]. Biochem,2003,133: 139-145.

        [9]Matsusaki H,Manji S,Taguchi K,et al. Cloning and molecular analysis of the Poly(3-hydroxybutyrate) and Poly(3-hydroxybutyrate-co-3-hydroxyalkanoate) biosynthesis genes inPseudomonassp. strain 61 3 [J]. Bacteriol,1998,180: 6459-6467.

        [10]Song A J. Cloning of newPseudomonassp. MBEL 6 19 polyhydroxyalkanoate synthase genes and their use in the development of recombinant microorganisms[D]. M S Dissertation,KAIST,2004.

        [11]Liebergesell M,Rahalkar S,Steinb chel A. Analysis of theThiocapsapfennigiipolyhydroxyalkanoate synthase: subcloning,molecular characterization and generation of hybrid synthases with the corresponding Chromatium vinosum enzyme [J]. Appl Microbiol Biotechnol,2000,54: 186-194.

        [12]McCool G J,Cannon M C.PhaCandPhaRare required for polyhydroxyalkanoic acid synthase activity inBacillusmegaterium[J]. Bacteriol,2001,183: 4235-4243.

        [13]Satoh Y,Minamoto N,Tajima K,et al. Polyhydroxyalkanoate synthase fromBacillussp. INT005 is composed ofPhaCandPhaR[J]. Biosci Bioeng,2002,94: 343 350.

        [14]Matsusaki H,Manji S,Taguchi K,et al. Cloning andmolecular analysis of the Poly(3-hydroxybutyrate) and Poly(3-hydroxybutyrate-co-3-hydroxyalkanoate) biosynthesis genes inPseudomonassp. strain 61 3 [J]. Bacteriol,1998,180: 6459-6467.

        [15]Fukui T,Doi Y. Cloning and analysis of the Poly(3-hydroxybutyrate-co-3-hydroxyhexanoate) biosynthesis genes ofAeromonascaviae[J]. Bacteriol,1997,179: 4821-4830.

        [16]Kesaven B,Jo-Ann C,Fumi S. Characterization of the highly active polyhydroxyalkanoate synthase ofChromobacteriumsp. Strain USM2 [J]. Applied and Environmental Microbiology,2011,5: 2926-2933.

        [17]Chung A L,Jin H L,Huang L J,et al. Biosynthesis and characterization of poly(3-hydroxydodecanoate) by β-oxidation inhibited mutant ofPseudomonasentomophilaL48 [J]. Biomacromolecules,2011,12(10): 3559-3566.

        [18]Yang T H,Jung Y K,Kang H O,et al. Tailor-made type IIPseudomonasPHA synthases and their use for the biosynthesis of polylactic acid and its copolymer in recombinantEscherichiacoli[J]. Appl Microbiol Biotechnol,2011,90:603-614.

        [19]Amara A A,Steinuchel A,Rehm B H A. In vivo evolution of theAeromonaspunctatapolyhydroxyalkanoate (PHA) synthase: isolation and characterization of modified PHA synthases with enhanced activity [J]. Appl Microbiol Biotechnol,2002,59: 477-482.

        [20]Kichise T,Taguchi S,Doi Y. Enhanced accumulation and changed monomer composition in polyhydroxyalkanoate (PHA) copolyester by in vitro evolution ofAeromonascaviaePHA synthase [J]. Appl Environ Microbiol,2002,68: 2411-2419.

        [21]Tsuge T,Watanabe S,Sato S,et al. Variation in copolymer composition and molecularweight of polyhydroxyalkanoate generated by saturation mutagenesis ofAeromonascaviaePHA synthase [J]. Macromol Biosci,2007a,7: 846-854.

        [22]Tsuge T,Watanabe S,Shimada D,et al. Combination of N149S and D171G mutations inAeromonascaviaepolyhydroxyalkanoate synthase and impact on polyhydroxyalkanoate biosynthesis [J]. FEMS Microbiol Lett,2007b,277: 217-222.

        [23]Gao X,Yuan X X,Shi Z Y,et al. Production of copolyesters of 3-hydroxybutyrate and medium-chain-length 3-hydroxyalkanoates by E. coli containing an optimized PHA synthase gene [J]. Microb Cell Fact,2012,14;11:130.

        [24]宋水山. 利用重組大腸桿菌產(chǎn)聚-4-羥基丁酸的研究[J]. 微生物學(xué)通報(bào),2002,29(1): 10-14.

        [25]Li Z J,Shi Z Y,Jian J,et al. Production of poly(3-hydroxybutyrate-co-4-hydroxybutyrate) from unrelated carbon sources by metabolically engineeredEscherichiacoli[J]. Metab Eng,2010,12: 352-359.

        [26]宋水山,馬 宏,高振賢,等.以葡萄糖為唯一碳源合成聚-4-羥基丁酸的重組大腸桿菌的構(gòu)建[J]. 微生物學(xué)報(bào),2005,45(3): 382-386.

        [27]Valentin H E,Mitsky T A,Mahadeo D A,et al. Application of a propionyl coenzyme A synthetase for poly(3-hydroxypropionate-co-3-hydroxybutyrate) accumulation in recombinantEscherichiacoli[J]. Appl Environ Microbiol,2000,66: 5253-5258.

        [28]Fukui T,Suzuki M,Tsuge T,et al. Microbial synthesis of poly((R)-3-hydroxybutyrate-co-3-hydroxypropionate) from unrelated carbon sources by engineeredCupriavidusnecator[J]. Biomacromolecules,2009,10:700-706.

        [29]Andreessen B,Lange A B,Robenek H,et al. Conversion of glycerol to poly(3-hydroxypropionate) in recombinantEscherichiacoli[J]. Appl Environ Microbiol,2010,76: 622-626.

        [30]Li S Y,Dong C L,Wang S Y,et al. Microbial production of polyhydroxyalkanoate block copolymer by recombinantPseudomonasputida[J]. Appl Microbiol Biotechnol,2011,90: 659 669.

        [31]Liu Q,Luo G,Zhou X R,et al. Biosynthesis of poly(3-hydroxydecanoate) and 3-hydroxydodecanoate dominating polyhydroxyalkanoates by beta-oxidation pathway inhibitedPseudomonasputida[J]. Metab Eng,2011,13: 11-17.

        [32]Wang H H,Zhou X R,Liu Q,et al. Biosynthesis of polyhydroxyalkanoate homopolymers byPseudomonasputida[J]. Appl Microbiol Biotechnol,2011,89: 1497 1507.

        [33] Yang Y H,Brigham C J,Song E,et al. Biosynthesis of poly(3-hydroxybutyrate-co-3-hydroxyvalerate) containing a predominant amount of 3-hydroxyvalerate by engineeredEscherichiacoliexpressing propionate-CoA transferase [J]. Biochemical Engineering Journal,2012,113(4): 815-823.

        [34]Tsuji H,Okumura A. Stereocomplex formation between enantiomeric substituted poly (lactide)s: blends of poly[(S)-2-hydroxybutyrate] and poly[(R)-2-hydroxybutyrate] [J]. Macromolecules,2009,42: 7263-7266.

        [35]Park S J,Lee T W,Lim S C,et al. Biosynthesis of polyhydroxyalkanoates containing 2-hydroxybutyrate from unrelated carbon source by metabolically engineeredEscherichiacoli[J]. Appl Microbiol Biotechnol,2012,93: 273-283.

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