呂 磊,胡建鵬,王 鍵, 徐 偉,譚 輝, 張紅梅,王麗娜, 何 玲
近年來,神經(jīng)干細胞(neural stem cells,NSCs)在缺血性腦卒中中的修復作用已引起廣泛關(guān)注[1]。隨著近年分子生物學技術(shù)的發(fā)展和對干細胞研究的深入,使干細胞增殖分化信號途徑與調(diào)控迅速成為揭示干細胞增殖分化分子機制的前沿課題。近年來研究表明Notch信號通路通過“旁側(cè)抑制”機制對NSCs自我更新、增殖和分化進行調(diào)節(jié)[2]。益氣活血法和補腎生髓法是中醫(yī)臨床上治療缺血性腦卒中常用方法。以往我們的研究已證實益氣活血方能促進和調(diào)節(jié)局灶性腦缺血后內(nèi)源性神經(jīng)干細胞的增殖分化,補腎生髓法及其代表復方具有促進腦缺血后突觸重塑和神經(jīng)細胞軸突的再生作用[3-5]。本實驗采用線栓法大腦中動脈制作局灶性腦缺血再灌注大鼠模型,觀察益氣活血方和補腎生髓方對模型大鼠缺血側(cè)額頂葉皮質(zhì)或海馬CA1區(qū)Notch3和Frizzled2 mRNA及蛋白表達的影響,探討其對腦缺血損傷后內(nèi)源性NSCs增殖分化的影響及其作用機制。
1.1 動物 健康SD大鼠32只,南京醫(yī)科大學實驗動物中心提供,許可證號為SCXK(蘇)2002-0031,雌雄各半,月齡4個月,體重(280~320)g。
1.2 試劑及儀器 Notch通路PCR芯片購自SABiosciences,Notch3和Frizzled2單克隆抗體、EnVision兩步法試劑盒、DAB顯色試劑盒購自北京中衫金橋公司。ND-1000型微量紫外可見分光光度計為Thermo產(chǎn)品,ABI PRISM 7700 system為美國應用生物系統(tǒng)公司產(chǎn)品,VANOX顯微鏡為Olympus產(chǎn)品,JD-801形態(tài)學顯微圖像分析系統(tǒng)為南京捷達科技發(fā)展有限公司產(chǎn)品。
1.3 藥物 益氣活血方(腦絡欣通):黃芪30 g,三七10 g,川芎10 g,紅花6 g。補腎生髓方:龜板膠10 g,鹿角膠10 g,金毛狗脊10 g,杜仲10 g。由安徽中醫(yī)藥大學中藥制劑室制備,分別相當于原生藥6.0 kg/L 和2.4 kg/L。
2.1 動物分組與給藥 隨機分為假手術(shù)(sham)組、缺血再灌注(ischemia reperfusion,IR)組、益氣活血方(Yiqi-Huoxue prescription,IR+Y)組和補腎生髓方(Bushen-Shengsui prescription,IR+B)組,每組11只。益氣活血方和補腎生髓方取中等劑量(分別為8.54 g/kg和10.25 g/kg)。復制局灶性腦缺血前30 min給藥1次,以后每天灌胃2次。Sham組和IR組按同樣方法予以等量的生理鹽水灌胃,均持續(xù)1周。
2.2 腦缺血再灌注模型復制與神經(jīng)功能障礙評分
采用改良的Longa法[6]制備大鼠大腦中動脈線栓塞模型及進行神經(jīng)功能缺損體征評分。在腦缺血2 h再灌注時進行評分,2~3分者入選,假手術(shù)組僅進行動脈分離。
2.3 取材 分別于腦缺血2 h、再灌注1周后,10%水合氯醛(3.6 mL/kg,ip)麻醉大鼠,每組取3只大鼠,迅速開顱取腦,在冰凍生理鹽水中,取缺血側(cè)額頂葉皮質(zhì),-80℃冰箱備用,用于實時熒光定量PCR檢測。每組取8只大鼠,打開胸腔,于右心耳部剪一小口,從左心室插入導管至主動脈,向內(nèi)快速注入37℃肝素化生理鹽水200 mL,至右心耳流出液變清亮,然后注入4%多聚甲醛磷酸鹽緩沖液250 mL,灌流固定30 min后斷頭取腦,除去小腦和腦干,取大腦,放入相同的固定液中固定1周,脫水、透明、浸蠟,石蠟包埋,從視交叉后2~3 mm左右在有海馬區(qū)域做連續(xù)冠狀切片,切片厚度5 μm,用于免疫組化染色。
2.4 Notch3和Frizzled2 mRNA和蛋白表達的檢測2.4.1 Notch信號通路基因芯片PCR Assay 嚴格按照操作規(guī)程進行,主要包括:腦組織額頂葉皮質(zhì)RNA抽提,DNase I消化RNA樣品(去除其中可能含有的基因組DNA),RNA純化,紫外吸收測定法檢測RNA質(zhì)量(濃度、純度),cDNA合成,實時熒光定量PCR檢測Notch3和Frizzled2 mRNA表達水平。
2.4.2 免疫組化染色 采用EnVision兩步法進行免疫組化染色,DAB顯色液顯色,Notch3和Frizzled2抗體稀釋濃度為1∶100,陰性對照采用正常山羊血清替代I抗進行,蘇木素輕度復染。
數(shù)據(jù)經(jīng)SPSS 11.0軟件處理,Notch信號通路基因芯片PCR Assay檢測結(jié)果采用2-ΔΔCt法計算組間mRNA的表達差異,以上調(diào)或下調(diào)倍數(shù) >1.5或<-1.5為差異有統(tǒng)計學意義;免疫組化染色結(jié)果的處理采用南京捷達JD-801圖像分析系統(tǒng),在相同視野下對Notch3和Frizzled2免疫反應陽性細胞積分吸光度(integral absorbance,IA)進行分析,數(shù)據(jù)用均數(shù)±標準差(mean±SD)表示,組間均數(shù)比較采用單因素方差分析,以P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
Notch信號通路基因芯片PCR Assay檢測結(jié)果顯示,與sham組比較,IR組Frizzled2 mRNA表達顯著增高(P<0.05),Notch3 mRNA 表達無顯著差異(P>0.05);與IR組比較,益氣活血方組Frizzled2 mRNA表達無顯著差異(P>0.05),Notch3 mRNA表達顯著增高(P<0.05);與IR組比較,補腎生髓方組Frizzled2 mRNA表達顯著降低(P<0.05),Notch3 mRNA無顯著差異(P>0.05);與益氣活血方組比較,補腎生髓方組Frizzled2 mRNA表達顯著降低(P<0.05),Notch3 mRNA無顯著差異(P>0.05),見表1。
陰性對照組未見Notch3和Frizzled2蛋白表達;sham組動脈分離側(cè)海馬CA1區(qū)可見Notch3和Frizzled2蛋白明顯表達。IR組Notch3蛋白表達明顯增強,主要表達于神經(jīng)細胞胞核,其IA值顯著高于sham組(P<0.05);兩中藥復方組海馬 CA1區(qū)Notch3蛋白表達增加,其IA值均顯著高于IR組(P<0.05),補腎生髓方組IA值顯著高于益氣活血方組(P<0.05)。IR組Frizzled2蛋白表達明顯增強,主要表達于神經(jīng)細胞胞核和胞漿,其IA值顯著高于sham組(P<0.05);兩中藥復方組海馬CA1區(qū)Frizzled2蛋白表達降低,其IA值均顯著低于IR組(P<0.05),但2 組之間無顯著差異(P >0.05),見圖 1、2和表2。
表1 各組大鼠額葉皮質(zhì)Notch3和Frizzled2 mRNA表達的變化Table 1.Changes of Notch3 and Frizzled2 mRNA expression in the cortex of frontal and parietal lobes of the rats in different groups(n=3)
Figure 1.The expression of Notch3 protein at 1 week in CA1 area of the hippocampus detected by EnVision two-step method(DAB,×400).A:negative control group;B:sham group;C:IR group;D:IR+Y group;E:IR+B group.Positive staining is brown.圖1 EnVision兩步法檢測海馬CA1區(qū)Notch3蛋白的表達
Figure 2.The expression of Frizzled2 protein at 1 week in CA1 area of the hippocampus detected by EnVision two-step method(DAB,×400).A:negative control group;B:sham group;C:IR group;D:IR+Y group;E:IR+B group.Positive staining is brown.圖2 EnVision兩步法檢測海馬CA1區(qū)Frizzled2蛋白的表達
表2 各組海馬CA1區(qū)Notch3和Frizzled2蛋白表達的積分吸光度值Table 2.Integral absorbance(IA)values of Notch3 and Frizzled2 positive cells in CA1 area of the hippocampus after local cerebral ischemia for 2 h followed by 1 week of reperfusion in different groups(mean±SD.n=8)
腦血管疾病是中老年人的常見病,以高發(fā)病率、高復發(fā)率、高致殘率、高死亡率為特點,已成為當前疾病三大死亡原因之一。本病以腦卒中為主,尤以缺血性腦卒中最為多見,且近年來呈上升趨勢,占卒中80%。卒中后智力障礙與肢體致殘是一嚴重的社會問題和醫(yī)學難題。研究促進大腦功能重組和神經(jīng)再生及其調(diào)節(jié)機制,促進機體功能恢復,對于減少殘疾發(fā)生將是十分有意義的。
中醫(yī)藥在促進中風恢復期神經(jīng)功能恢復、重建方面積累了一定的實踐經(jīng)驗,取得了一些療效,但由于作用機制不明確,使得用藥缺乏規(guī)律性。益氣活血法、補腎生髓法是臨床治療缺血性腦中風常用治法。近年來研究證實,成年動物以及人的神經(jīng)系統(tǒng)中都有NSCs的存在,但絕大部分在體內(nèi)處于靜止狀態(tài),在損傷等病理條件下可以被激活并增殖、遷移及分化,可能使損傷造成的形態(tài)及功能上的缺失得以恢復。缺血后內(nèi)源性NSCs的激活在腦缺血修復和功能重建中發(fā)揮了積極的作用,為實現(xiàn)腦損傷后的自身修復帶來了希望。Notch信號轉(zhuǎn)導通路作為胚胎發(fā)育過程中十分重要的信號途徑,其相關(guān)分子的表達、運輸和降解等過程受到諸多因素的調(diào)節(jié),除了配體-受體水平的調(diào)節(jié)之外,尚受到多種蛋白質(zhì)的調(diào)節(jié)[7]。Notch信號家族包括Notch受體、配體及其相應的細胞內(nèi)信號分子,Notch受體激活后誘導的信號轉(zhuǎn)導系統(tǒng)在調(diào)節(jié)NSCs的增殖分化中起到重要作用。體內(nèi)研究表明,激活的 Notch受體能夠促進NSCs向星形膠質(zhì)細胞分化,抑制其向神經(jīng)元和少突膠質(zhì)細胞分化[8]。近年來,隨著干細胞分化方面研究的逐步深入,逐漸認識到 Notch信號通路并非孤立存在的,而是處于一個復雜精細的信號網(wǎng)絡之中,與Wnt信號通路在分子水平上存在聯(lián)系,并且二者之間也存在串聯(lián)和互相調(diào)控,其中Frizzled2為兩者共同調(diào)控因子[9]。
本實驗研究發(fā)現(xiàn)局灶性腦缺血再灌注大鼠海馬Notch3和Frizzled2 mRNA及蛋白表達增加,說明局灶性腦缺血再灌注存在Notch信號通路變化。有研究表明,腦缺血后可以引起海馬CA1區(qū)神經(jīng)干細胞增殖,同時伴隨著Notch信號通路被激活,抑制Notch信號途徑可以增加神經(jīng)元的數(shù)目[10]。益氣活血方和補腎生髓方防治組多能增強Notch3 mRNA及蛋白表達,降低Frizzled2 mRNA及蛋白表達。但2中藥復方也存在差異,在降低Frizzled2 mRNA表達和增強Notch3蛋白表達方面,補腎生髓方比益氣活血方明顯。以往我們的研究已證實益氣活血方能促進大鼠局灶性腦缺血后內(nèi)源性神經(jīng)干細胞的增殖分化,補腎生髓方具有促進腦缺血后突觸重塑和神經(jīng)細胞軸突的再生作用[3,5],因此認為2種中藥復方能通過促進Notch信號通路Notch3 mRNA及蛋白表達,抑制Frizzled2 mRNA及蛋白表達,進而影響局灶性腦缺血后NSCs增殖分化及神經(jīng)可塑性,促進腦損傷康復,但Notch信號轉(zhuǎn)導途徑的激活對NSCs增殖與分化及神經(jīng)可塑性結(jié)果的影響尚有待于進一步研究。
[1] Lie DC,Colamarino SA,Song HJ,et al.Wnt signalling regulates adult hippocampal neurogenesis[J].Nature,2005,437(7063):1370-1375.
[2] Woo SM,Kim J,Han HW,et al.Notch signaling is required for maintaining stem cell features of neuroprogenitor cells derived from human embryonic stem cells[J].BMC Neurosci,2009,10:97.
[3] 江愛娟,胡建鵬,王 鍵,等.兩種中藥復方對局灶性腦缺血再灌注大鼠Nestin、NSE和GFAP表達的影響[J].北京中醫(yī)藥大學學報,2009,32(10):679-682.
[4] 胡建鵬,周 會,王 鍵,等.益氣活血方和補腎生髓方對局灶性腦缺血再灌注大鼠缺血半暗帶Notch-1和Jagged1表達的影響[J].中國病理生理雜志,2010,26(3):483-486.
[5] 江愛娟,胡建鵬,王 鍵,等.益氣活血方和補腎生髓方對大鼠腦缺血恢復期GAP-43和SYP表達的影響[J].中國中醫(yī)藥科技,2008,15(6):418-420.
[6] Longa EZ,Weinstein PR,Carlson S,et al.Reversible middle cerebral artery occlusion without craniectomy in rats[J].Stroke,1989,20(1):84-91.
[7] Baron M,Aslam H,F(xiàn)lasza M,et al.Multiple levels of Notch signal regulation[J].Mol Membr Biol,2002,19(1):27-38.
[8] Tanigaki K,Nogaki F,Takahashi J,et al.Notch1 and Notch3 instructively restrict bFGF-responsive multipotent neural progenitor cells to an astroglial fate[J].Neuron,2001,29(1):45-55.
[9] 郭超偉,宋 凱,李 萍.Notch和 Wnt信號通路在血管形成中的協(xié)同調(diào)控作用[J].中國生物化學與分子生物學報,2010,26(6):523-530.
[10]Tatsumi K,Okuda H,Makinodan M,et al.Transient activation of Notch signaling in the injuried adult brain[J].J Chem Neuroanat,2010,39(1):15-19.