張 鈺,李亞會,屠唯一,陳 晨,高菊芳
(上海師范大學(xué)生命與環(huán)境科學(xué)學(xué)院,上海200234)
ERF(ethylene responsive factor)是植物所特有的一類轉(zhuǎn)錄因子.ERF家族成員在結(jié)構(gòu)上有共同的特點:每個成員都含有一個大約由60個氨基酸組成的非常保守的DNA結(jié)合域,含有ERF結(jié)合域的轉(zhuǎn)錄因子在植物中廣泛存在,并且參與植物的生長發(fā)育及生理生化反應(yīng)的信號轉(zhuǎn)導(dǎo)[1].植物防衛(wèi)信號傳遞途徑方面的研究表明:針對不同的病原物的誘導(dǎo)防衛(wèi)反應(yīng)相應(yīng)地受到不同的信號傳遞途徑的調(diào)控.水楊酸(salicylic acid,SA)、乙烯(ethylene,ET)和茉莉酸(jasmonic acid,JA)在防衛(wèi)信號傳遞途徑中起著重要的作用[2].大量證據(jù)表明:依賴于SA、ET或JA的信號傳遞途徑之間存在著一定的交叉作用(cross—talk).絕大部分情況下,依賴于ET的信號傳遞途徑與依賴于JA的信號傳遞途徑間存在著協(xié)同促進的作用.外源ET和JA都能夠迅速誘導(dǎo)AtERF1表達,兩者之間存在協(xié)同促進作用[3].而且,AtERF1的超表達能夠恢復(fù)ein2和ein l突變體的防衛(wèi)反應(yīng)能力.通過AtERF1轉(zhuǎn)基因擬南芥的轉(zhuǎn)錄組分析和野生型擬南芥在ET和JA處理下的轉(zhuǎn)錄組分析,說明AtERF1在體內(nèi)能夠調(diào)控那些應(yīng)答ET和JA的基因的表達.總的試驗結(jié)果表明:AtERF1是ET和JA信號途徑中的下游成分,而且在2個防衛(wèi)反應(yīng)基因調(diào)控信號途徑交織點處起著重要的作用.AtERF1基因的超表達,增強了擬南芥對灰霉(Botrytis cinerea)、核盤菌(Sclerotinia sclerotiorum)、Erysiphe orontii的抗性[4].但是AtERF1蛋白究竟調(diào)控哪些目的基因行使功能,目前尚不十分清楚.
原核表達系統(tǒng)的優(yōu)點在于能夠在較短時間內(nèi)獲得基因表達產(chǎn)物,而且所需的成本相對比較低廉.在本研究中,利用密碼子優(yōu)化法人工合成了滿足大腸桿菌密碼子嗜好的編碼AtERF1蛋白的DNA序列[5],并以此為基礎(chǔ)構(gòu)建了原核表達載體AtERF1-pET29b,將其轉(zhuǎn)入大腸桿菌BL21(DE 3),經(jīng)IPTG誘導(dǎo)后在原核細胞中成功表達了AtERF1蛋白,該蛋白以可溶蛋白的形式存在.利用SDS-PAGE法純化了AtERF1蛋白,并作為抗原免疫家兔,制備出了效價高,特異性強的多克隆抗體,這些工作為進一步用生化手段研究該轉(zhuǎn)錄因子的DNA結(jié)合位點和下游基因奠定了基礎(chǔ).
1.1.1 質(zhì)粒與菌株
原核表達載體pET-29b(Novagen產(chǎn)品)由陶黎明教授贈送,大腸桿菌感受態(tài)菌株DH5α及BL21(DE3)由上海師范大學(xué)植物功能基因?qū)嶒炇姨峁?/p>
1.1.2 生物學(xué)試劑
T4 DNA連接酶、限制性內(nèi)切酶Nde I、Xho I和Dream Tag DNA聚合酶購自Fermenant公司;硝酸纖維素膜、dNTPs、PCR產(chǎn)物回收試劑盒、Tris、SDS、TEMED及IPTG等常用分子生物學(xué)試劑購自北京鼎國生物技術(shù)有限公司;辣根過氧化物酶(HRP)標記的羊抗兔IgG、ECL化學(xué)發(fā)光檢測試劑盒、PVDF膜購自艾比瑪特生物醫(yī)藥(上海)有限公司;引物由Invitrogen公司合成.
1.2.1 原核表達載體AtERF1-pET-29b的構(gòu)建
AtERF1蛋白由268個氨基酸殘基組成,根據(jù)其氨基酸序列,利用密碼子優(yōu)化軟件設(shè)計出一條滿足大腸桿菌密碼子嗜好的堿基序列,并引入Nde I和Xho I兩個限制性酶切位點.經(jīng)優(yōu)化處理的編碼AtERF1基因序列由Invitrogen公司全基因合成后克隆至pMD-18T載體上,上述重組質(zhì)粒AtERF1-pMD-18T用NdeI,Xho I于37℃ 消化5 h,經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳,回收的AtERF1片段與同樣用NdeI,Xho I酶切的pET-29b載體進行連接,轉(zhuǎn)化入感受態(tài)E.coli DH5α中,涂布于含卡那霉素(50mg/L)的LB固體培養(yǎng)基上.挑取單菌落培養(yǎng)后抽提質(zhì)粒,進行PCR和雙酶切鑒定.酶切正確的質(zhì)粒轉(zhuǎn)化BL21表達菌感受態(tài),涂布于含卡那霉素(50mg/L)的LB固體培養(yǎng)基上.挑取單菌落培養(yǎng)后進行PCR鑒定,含目的基因片段的BL21表達菌-70℃保存?zhèn)溆茫b定引物為:
1.2.2 目的蛋白的誘導(dǎo)表達及可溶性分析
將含目的基因片段的BL21表達菌復(fù)蘇培養(yǎng),至OD600為0.5~1.0,取1 mL菌液放入離心管中(未經(jīng)IPTG誘導(dǎo)).將含剩余菌液的試管轉(zhuǎn)移至20℃ 振蕩培養(yǎng),當(dāng)培養(yǎng)液溫度降至20℃時,加入IPTG,至終濃度為0.5 mmol/L進行蛋白誘導(dǎo),在1、2、3、4、5 h分別收集1 mL菌液.未誘導(dǎo)和誘導(dǎo)不同時間的菌液4℃高速離心1 min,收集細菌沉淀.每管細菌沉淀加入100μL超聲緩沖液(20 mmol/L Tris,pH 8.0,0.5 mmol/L NaCl)重懸,超聲1~2 min破碎細胞.吸取50μL全細胞勻漿于新的離心管,與50μL 2×SDS上樣液混合后置于100℃煮沸5min,吸取10μL樣品用12% 聚丙烯酰胺凝膠電泳檢測目的蛋白的表達情況;剩余的勻漿15000 r/min離心10 min,上清與沉淀分別與等量SDS上樣液混合后置于100℃煮沸5 min,吸取10μL電泳檢測目的蛋白的溶解狀況.PAGE膠用考馬斯亮蘭染色液染20 min后,再用脫色液脫色干凈.
1.2.3 多克隆抗體制備及效價鑒定
抗原準備:將IPTG誘導(dǎo)過夜的細菌裂解液上清進行SDS-PAGE電泳,轉(zhuǎn)移至硝酸纖維素(NC)膜上.每只兔約需200μg抗原,依據(jù)標準分子量參照估計AtERF1蛋白條帶的含量,轉(zhuǎn)移足夠數(shù)量的NC膜.將蛋白轉(zhuǎn)移完畢的NC膜浸在麗春紅溶液中1~2 min,顯示出AtERF1蛋白條帶,立即用雙蒸水洗去麗春紅,至清晰顯示出AtERF1蛋白條帶.小心剪下AtERF1蛋白條帶處NC膜,盡量避免非目的蛋白的污染.將剪下的NC膜放置在加有滅菌PBS的1.5 mL離心管中,用滅菌PBS洗去麗春紅,至無色.用眼科剪將NC膜剪成非常細小的碎片,加入0.5 mL滅菌PBS,用組織勻漿器研磨,-70℃凍存?zhèn)溆茫?/p>
免疫方案:取1 mL碾碎的包含抗原的NC膜對成年健康家兔進行背部多點皮下注射,10 d后用相同的碾碎的樣品注射家兔.相同的實驗再重復(fù)兩次,每次間隔10 d.最后一次注射一周后,耳緣靜脈取血測定抗體效價.效價滿意后在麻醉狀態(tài)下對被免疫的兔子進行頸動脈取血,血液放37℃ 溫育1 h,然后放4℃ 過夜,析出的血清加疊氮鈉,分裝后-20℃保存.
效價測定:用免疫雙擴散法測定抗體效價.用生理鹽水配制1%瓊脂,倒平皿凝固后打梅花型孔,在中央孔中加入100μL IPTG誘導(dǎo)過夜的細菌裂解液上清作為抗原,周圍5孔分別加入100μL 1∶2、1∶4、1∶8、1∶16和1∶32稀釋的兔抗血清.置濕盒37℃過夜,觀察沉淀線出現(xiàn)的情況.
1.2.4 Western blot檢測抗體的特異性
將表達的AtERF1蛋白進行SDS-PAGE電泳后,經(jīng)電轉(zhuǎn)儀轉(zhuǎn)移到PVDF膜上.將膜用含5%脫脂奶粉的TBST溶液封閉1.5 h,清洗后加入按1∶200稀釋于TBST中的兔多克隆抗體,在搖床放置1 h,以TBST清洗一抗1 h,每15 min換一次清洗液.再加稀釋于TBST中的HRP標記的羊抗兔IgG(1∶10000),在搖床放置1 h,TBST清洗二抗1 h,每15min換一次清洗液.洗膜后加ECL工作液,在可見光下室溫孵育膜數(shù)分鐘,將印跡膜用保鮮膜包被粘貼固定于X光片曝光暗盒.然后轉(zhuǎn)入暗室將X光膠片壓在膜上曝光數(shù)秒,顯影定影于X光膠片上.
www.a(chǎn)rabidopsis.org 網(wǎng)站上列出的AtERF1的蛋白的氨基酸序列,共含268個氨基酸殘基.根據(jù)此序列設(shè)計出滿足大腸桿菌密碼子嗜好的堿基序列,并引入Nde I和Xho I兩個限制性酶切位點,堿基序列長度共816bp(圖1).
圖1 AtERF1蛋白編碼序列的優(yōu)化
經(jīng)密碼子優(yōu)化的序列由Invitrogen公司全基因合成后克隆至 pMD-18T載體上,將AtERF1-T載體經(jīng)限制性內(nèi)切酶Nde I和Xho I消化后,電泳結(jié)果表明AtERF1基因序列已成功克隆入pMD18-T(圖2-A).利用T載體上的M13通用引物進行測序分析,結(jié)果表明該816bp的片段序列與優(yōu)化的序列吻合.為了獲得大量的AtERF1蛋白,采用了原核表達的載體pET-29 b進行蛋白表達實驗.用限制性內(nèi)切酶Nde I和Xho I將AtERF1-T載體中的 AtERF1片段切下后,將其克隆入pET-29 b,轉(zhuǎn)化E.coli DH 5α感受態(tài)后的重組質(zhì)粒,用限制性酶切鑒定可以看到一條大約816 bp的條帶(圖2-B),測序結(jié)果表明目的基因AtERF1位于正確的讀碼框中,獲得了原核表達質(zhì)粒 AtERF1-pET29 b.將構(gòu)建好的AtERF1-pET29 b質(zhì)粒和空載體pET29 b質(zhì)粒轉(zhuǎn)化入表達菌株E.coli BL21(DE3)感受態(tài)中,PCR鑒定顯示AtERF1-pET29 b含有目的基因片段(圖2-C1),而含空載體的菌落中不含目的基因片段(圖2-C2).
圖2 AtERF1蛋白表達載體的構(gòu)建
AtERF1蛋白的分子量約30 kD,按照材料與方法中所述步驟進行蛋白誘導(dǎo)表達實驗,SDS-PAGE電泳結(jié)果顯示,誘導(dǎo)4 h及5 h后,其全細胞裂解液中在35 kD~25 kD處可見清晰的AtERF1蛋白的條帶(圖3,箭頭所指 ).
圖3 AtERF1蛋白的誘導(dǎo)表達
將誘導(dǎo)過夜的全細胞裂解液離心后的上清液進行SDS-PAGE電泳,發(fā)現(xiàn)在35 kD~25 kD處可見清晰的AtERF1蛋白的條帶(圖4條帶1),說明表達的AtERF1蛋白以可溶的形式存在.
圖4 AtERF1蛋白的可溶性分析
將IPTG誘導(dǎo)過夜的細菌裂解液上清進行SDS-PAGE電泳,轉(zhuǎn)移至硝酸纖維素(NC)膜上.每只兔約需200μg抗原,依據(jù)標準分子量參照估計AtERF1蛋白條帶的含量,轉(zhuǎn)移足夠數(shù)量的NC膜.用眼科剪將NC膜剪成非常細小的碎片,加入0.5 mL滅菌PBS,用組織勻漿器研磨,-70℃凍存?zhèn)溆茫看稳? mL碾碎的包含抗原的NC膜對成年健康家兔進行背部多點皮下注射,共四次.最后一次注射一周后,耳緣靜脈取血用免疫雙擴散法測定抗體效價.抗血清經(jīng)1∶2、1∶4、1∶8、1∶16稀釋后均能與AtERF1蛋白形成明顯的沉淀線(圖5),表明抗體效價達到要求.對家兔在麻醉狀態(tài)下頸動脈放血,血液經(jīng)37℃溫育后,4℃放置過夜析出多克隆抗血清.為了進一步分析獲得的抗體對AtERF1蛋白的識別,用Western blot技術(shù)檢測抗體,雜交后經(jīng)HRP標記的羊抗兔抗體顯色試劑盒顯色,用X光膠片顯影,在膠片上可在約30 kD處看到清晰的AtERF1蛋白條帶,這表明多克隆抗體與AtERF1蛋白識別良好(圖6).
圖5 多克隆抗體效價測定
圖6 AtERF1表達蛋白的Western blot檢測
遺傳密碼有64種,但是絕大多數(shù)生物傾向于利用這些密碼子中的一部分.那些被最頻繁利用的稱為最佳密碼子,那些不被經(jīng)常利用的稱為稀有或利用率低的密碼子.因此重組蛋白的表達可能受密碼子利用的影響,尤其是在異源表達系統(tǒng)[6].
本研究利用基因全合成的方法,將擬南芥AtERF1基因序列優(yōu)化為滿足大腸桿菌密碼子嗜好的序列,并逐步構(gòu)建到原核表達載體pET29b.誘導(dǎo)表達結(jié)果顯示,構(gòu)建的原核表達載體AtERF1-pET29b經(jīng)IPTG誘導(dǎo)后,AtERF1蛋白以可溶的形式得到了高效穩(wěn)定的表達.對獲得的多克隆抗血清經(jīng)Western blot技術(shù)檢測,結(jié)果顯示制備的抗體與目的蛋白識別良好.
ERF轉(zhuǎn)錄因子分別與細胞發(fā)育、激素、抗病、低溫及干旱、高鹽等信號傳遞有關(guān)[7].AtERF1基因的超表達,增強了擬南芥對灰霉(Botrytis cinerea)、核盤菌(Sclerotinia sclerotiorum)、Erysiphe orontii的抗性[4],然而對于ERF轉(zhuǎn)錄因子AtERF1作用位點及下游基因的研究并不清楚.染色質(zhì)免疫共沉淀(Chromatin Immunoprecipitation,Ch Ip)的方法可以用來在體內(nèi)鑒定轉(zhuǎn)錄因子直接調(diào)控的下游基因,但是這些方法都需要特異性很高的蛋白抗體[8].本研究制備的抗體與目的蛋白AtERF1特異性較強,可用于AtERF1作用位點及其直接調(diào)控的下游基因功能的研究,有助于生化水平上深入研究AtERF1在花藥發(fā)育中的分子機理.
[1]RIECHMANN JL,HEARD J,MARTIN G,et al.Arabidopsis transcription factor:genome wide comparative analysis among eukaryotes[J].Science,2000,290:2105-2110.
[2]劉強,張貴友,陳受宜.植物轉(zhuǎn)錄因子的結(jié)構(gòu)與調(diào)控作用[J].科學(xué)通報,2000,45(14):1465-14741.
[3]LORENZO O,PIQUERASR,SáNCHEZ-SERRANO J J,et al.ETHYI ENE RESPONSE FACTOR1 integrates signals from ethylene and jasmonate pathways in plant defense[J].Plant Cell,2003,15(1):165-178.
[4]BERROCAL-LOBO M,MOLINA A.Ethylene response factor 1 mediates Arabidopsis resistance to the soilborne fungus Fusarium oxysporum[J].Mol Plant Microbe Interact,2004,17:763-770.
[5]FUGLSANG A.Codon optimizer:a freeware tool for codon optimization[J].Protein Expr Purif,2003,31:247-249.
[6]SORENSEN H P,MORTENSEN K K.Soluble expression of recombinant proteins in the cytoplasm of Escherichia coli[J].Microb Cell Fact,2005,4:1.
[7]黃澤軍,黃榮峰,黃大昉.ERF轉(zhuǎn)錄因子及其在植物防衛(wèi)反應(yīng)中的作用[J].植物病理學(xué)報,2004,34(3):193-198.
[8]DASP M,RAMACHANDRAN K,VANWERT J,et al.Chromatin immunoprecipitation assay[J].Biotechniques,2004,37(6):961-969.
上海師范大學(xué)學(xué)報·自然科學(xué)版2013年4期