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        超聲波法提取胎菊中綠原酸的研究

        2013-09-11 02:35:46刁全平侯冬巖回瑞華趙元元
        關(guān)鍵詞:綠原容量瓶溶劑

        刁全平,侯冬巖,回瑞華,趙元元

        鞍山師范學(xué)院化學(xué)與生命科學(xué)學(xué)院,鞍山 114005

        胎菊系菊科植物菊(Chrysanthemum morifolium Ramat.)的干燥頭狀花序[1],在花朵尚未完全張開時收摘所得,亦名小湯黃、小白菊,是浙江傳統(tǒng)道地藥材“浙八味”之一,亦可加工制成高端飲品。胎菊性微寒,味辛甘苦,對中樞神經(jīng)有鎮(zhèn)靜作用,還具有解熱和抑菌等作用[2]。綠原酸作為菊科植物中的主要藥理成分之一,具有抗菌、抗病毒、抗氧化、抗腫瘤、免疫調(diào)節(jié)、降糖等多種作用[3]。目前對胎菊中綠原酸的提取檢測方法尚未見文獻(xiàn)報道,本文嘗試采用超聲波法對胎菊中綠原酸的提取進(jìn)行研究,對提取溶劑、提取時間、提取料液比等因素進(jìn)行考查,確定胎菊中綠原酸的最佳提取條件,并建立HPLC法測定胎菊中綠原酸的方法,為胎菊的質(zhì)量監(jiān)控提供一定的技術(shù)支持。

        1 材料與方法

        1.1 儀器與試劑

        儀器:高效液相色譜儀(美國Waters公司,配有510泵,486可變波長紫外檢測器);N3000色譜工作站(浙江大學(xué)智能信息工程研究所);KQ-250B型超聲波清洗器(昆山市超聲儀器有限公司)。

        試劑:HPLC所用的乙腈為色譜純(天津市彪仕奇科技發(fā)展有限公司),其他均為分析純,水為二次蒸餾水。

        胎菊購自杭州藝福茶業(yè)有限公司。

        綠原酸對照品購自中國食品藥品檢定研究院。

        1.2 實驗方法

        1.2.1 色譜條件

        色譜柱為Kromasil C18柱(250 mm × 4.6 mm i.d.,5 μm,大連化學(xué)物理研究所);流動相為乙腈-0.4%磷酸水溶液(10∶90);流速為1.0 mL/min;柱溫為室溫;檢測波長為327 nm;進(jìn)樣量為10 μL。

        1.2.2 供試液的制備

        精確稱取樣品(約1.0 g)置于100 mL錐形瓶中,加入提取溶劑,塞緊塞子,置于超聲波清洗器中,提取一定時間后,過濾,再用提取溶劑清洗2次,合并濾液并定容于100 mL容量瓶中,0.45 μm濾膜過濾后,HPLC測定其含量,并計算提取量。

        1.2.3 方法學(xué)考察

        1.2.3.1 標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制

        準(zhǔn)確稱取3.0 mg綠原酸對照品置于10 mL容量瓶中,甲醇溶解并定容。然后分別準(zhǔn)確移取0.5、1.0、1.5、2.0、2.5、3.0 mL 于 10 mL 容量瓶中,用甲醇定容。按照1.2.1的色譜條件進(jìn)行測定,以峰面積(A)縱坐標(biāo),濃度(C)為橫坐標(biāo)作標(biāo)準(zhǔn)曲線得回歸方程為A=32163C-41092,線性相關(guān)系數(shù) r=0.9998,表明綠原酸在15 ~90 μg/mL范圍內(nèi)線形關(guān)系良好。

        1.2.3.2 精密度實驗

        以甲醇為提取溶劑,料液比為1∶20,超聲時間為80 min對樣品進(jìn)行提取,將提取液重復(fù)進(jìn)樣6次,測定其峰面積,計算提取量并計算 RSD =0.615%,說明實驗精密度良好。

        1.2.3.3 穩(wěn)定性實驗

        取綠原酸對照品溶液,每隔2 h進(jìn)樣,測定其峰面積,計算RSD=0.344%,表明在12 h內(nèi)基本穩(wěn)定。

        1.2.3.4 回收率實驗

        準(zhǔn)確稱取質(zhì)量為0.5506 g的胎菊樣品3份,分別加入標(biāo)準(zhǔn)樣品 0.70、1.0、1.3 mg,以甲醇為溶劑,料液比為 1∶20,超聲 80 min,按照步驟 1.2.2 進(jìn)行處理,測得結(jié)果見表2。

        表2 回收率實驗Table 2 Recovery of chlorogenic acid

        由表2可知,回收率在98.10% ~103.3%之間,平均回收率為100.3%,表明本方法準(zhǔn)確。

        2 結(jié)果與討論

        2.1 提取溶劑的選擇

        分別以甲醇、乙醇、丙酮、水為提取劑,按照1∶15的料液比,對樣品超聲80 min后,HPLC測定溶液中綠原酸的含量,結(jié)果見表3。

        表3 提取溶劑對胎菊中綠原酸提取量的影響Table 3 Effect of extraction solvent on extraction amount of chlorogenic acid

        由表3可見,采用甲醇作為提取溶劑,胎菊中綠原酸的提取量較高。

        2.2 提取時間的選擇

        以甲醇為提取溶劑,按照1∶15的料液比,分別超聲提取 20、40、60、80、100、120 min,結(jié)果見圖 1。

        圖1 提取時間對胎菊中綠原酸提取量的影響Fig.1 Effect of extraction time on extraction amount of chlorogenic acid

        由圖1可知,提取時間為80 min時,胎菊中綠原酸的提取量最高。時間太短,提取不完全;時間太長,綠原酸不穩(wěn)定,容易分解,導(dǎo)致提取量下降。所以本試驗提取時間采用80 min。

        2.3 提取料液比的選擇

        以甲醇為提取溶劑,提取時間為80 min,采用不同提取料液比,考查其對提取量的影響,結(jié)果如表4所示。

        表4 提取料液比對胎菊中綠原酸提取量的影響Table 4 Effect of sample-solvent ratio on extraction amount of chlorogenic acid

        由表4可見,當(dāng)料液比為1∶20時,提取量較高,料液比為1∶25時變化不大,所以采用料液比為1∶20。

        2.4 樣品的測定

        精確稱取樣品1.0000 g胎菊樣品,按照最佳提取條件對其中的綠原酸進(jìn)行提取,HPLC測定其含量為 1.878 mg/g。

        圖2 綠原酸對照品及胎菊HPLC色譜圖Fig.2 HPLC chromatograms of chlorogenic acid standard(A)and chrysanthemum bud sample(B)

        3 結(jié)論

        文獻(xiàn)報道綠原酸可以采用索氏提取法[4]、熱回流提取法[5,6]、超聲波提取法[7]等進(jìn)行提取,可綠原酸不穩(wěn)定,遇光及熱易分解,特別是長時間受光及加熱。本文采用超聲波提取法對胎菊中的綠原酸進(jìn)行提取,盡量避免其在提取過程中的損失,確定最佳提取條件并建立了HPLC測定方法,為胎菊的質(zhì)量監(jiān)控提供一定的技術(shù)支持。

        1 Chinese Pharmacopoeia Committee(國家藥典委員會).Pharmacopoeia of the People's Republic of China(中華人民共和國藥典).Beijing:China Medical Science Press,2005.Vol I,218.

        2 Zhou Q(周群),Yu XP(俞旭平),Ren JJ(任江劍),et al.Influence of different harvest methods and processing methods on quality of chrysanthemum morifolium.Mode Chin Med(中國現(xiàn)代中藥),2009,11(12):24-27.

        3 Wu WH(吳衛(wèi)華),Kang Z(康楨),Ouyang DS(歐陽冬生),et al.Progresses in the pharmacology of chlorogenic acid.Nat Prod Res Dev(天然產(chǎn)物研究與開發(fā)),2006,18:691-694.

        4 Luo SZ(雒淑珍),Lei YH(雷耀湖),Zhao JR(趙繼榮),et al.Determination of chlorogenic acid in flos lonicerae by HPLC.Mode Agrl Sci Tech(現(xiàn)代農(nóng)業(yè)科技),2011,17:41-42.

        5 Wu L(烏蘭),Zhang ZS(張澤生).Extraction and examination of chlorogenic acid from flos lonicerae.Food Sci(食品科學(xué)),2005,26:130-134.

        6 Yuan XY(袁曉艷),Gao MZ(高明哲),Wang K(王鍇),et al.Analysis of chlorogenic acids in Helianthus tuberosus Linn leaves using high performance liquid chromatography-mass spectrometry.Chin J Chrom(色譜),2008,26:335-338.

        7 Hu XJ(胡曉娟),Gao ZQ(郜占青),Zhang RP(張榮培),et al.Determination of chlorogenic acid in jinju effervescent tablet by HPLC.Chin J of Spec Lab(光譜實驗室),2007,24:1013-1016.

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