吳 瓊,郭 蒙,葉 華,朱宇珍,鄭學(xué)寶
(1.廣東醫(yī)學(xué)院藥理教研室,廣東 湛江 524023;2.廣東醫(yī)學(xué)院廣東天然藥物研究與開發(fā)重點實驗室,廣東 湛江 524023)
結(jié)直腸癌(Colorectal cancer,CRC)是世界第三大常見惡性腫瘤,CRC可由自發(fā)或慢性炎癥發(fā)展而致。炎癥性腸病(Inflammatory bowel disease,IBD)是CRC發(fā)生除吸煙、飲食、家族遺傳等因素外的一個致病因素,可以大大增加患CRC的風(fēng)險[1]。慢性炎癥的反復(fù)損傷、修復(fù)、增生、引起基因突變,從而引起細(xì)胞癌變,大約有20%的人癌癥來源于慢性炎癥[2]。結(jié)腸炎相關(guān)性結(jié)直腸癌(Ulcerative colitis associated colorectal cancer,UCACRC)動物模型的研究,有助于探索復(fù)雜的CRC發(fā)病和發(fā)展的機(jī)制,動物模型已經(jīng)為腫瘤轉(zhuǎn)移及特異性靈敏療法提供了依據(jù)[3],所以以人類診斷和治療為導(dǎo)向的試驗必須用動物模型做臨床前研究。目前最常用的化學(xué)誘導(dǎo)IBD相關(guān)性CRC癌變的動物模型中,氧化偶氮甲烷(Azoxymethane,AOM)/葡聚糖硫酸鈉(Dextran sodium sulfate,DSS)誘發(fā)的CRC動物模型可以成功模擬其全過程。本文主要探討AOM/DSS動物模型的造模方法及UC相關(guān)CRC組織學(xué)特征,并探討其主要特點以及診斷癌變途徑的研究進(jìn)展。
CRC的發(fā)生發(fā)展是一個長期的過程,正常上皮細(xì)胞通過隱窩異常發(fā)展為腺瘤進(jìn)而發(fā)展為原位癌。CRC模型已經(jīng)可以模擬人類的腫瘤病因和病理學(xué)改變,無論是體內(nèi)還是體外模型均可以反映CRC發(fā)展的每一個階段。AOM/DSS模型是使用最廣泛的小鼠模型,AOM是一種化學(xué)致癌劑1,2-二甲基肼(1,2-dime-thylhydrazin,DMH)作用的DNA烷基化產(chǎn)物,可以由腹腔注射并經(jīng)由膽汁代謝,由菌群代謝進(jìn)一步激活A(yù)OM使其致癌[4],AOM較DMH相比致癌效果增強(qiáng)且更加穩(wěn)定。多次腹腔注射AOM導(dǎo)致在結(jié)腸遠(yuǎn)端產(chǎn)生腫瘤,其組織學(xué)特征類似于人類的CRC,要模擬CRC需要AOM與DSS結(jié)合造模。DSS為化學(xué)致炎劑,動物飲用含有DSS的飲水可以造成炎癥性腸病模型,其病理學(xué)改變類似于人類潰瘍性結(jié)腸炎。
AOM/DSS模型多應(yīng)用于CRC發(fā)病機(jī)理的研究、預(yù)防CRC化學(xué)藥物的研究、致癌環(huán)境的檢測[5]以及腫瘤轉(zhuǎn)移風(fēng)險研究[6]。實驗性結(jié)直腸癌的發(fā)生主要是由AOM/DSS模型誘發(fā)的異常隱窩病灶(Aberrant crypt foci,ACF)和腺瘤癌變形成,均依賴于劑量、誘導(dǎo)方式、誘導(dǎo)周期、根據(jù)不同的延長時間形成癌變[7]。Suzuki等[8]報道,選用 Balb/c、C2H/HeN、C57BL/6N、DBA/2N四種品系小鼠,在造模第一天給予單次腹腔注射AOM(10 mg/kg),第二天給予含有1%的DSS自由飲用5 d,之后不做任何處理,至到實驗第126天結(jié)束實驗,觀察到AOM/DSS模型在不同品系小鼠中結(jié)腸癌的發(fā)生敏感性存在差異;在4個近交系小鼠進(jìn)行造模研究,其中結(jié)腸腺癌發(fā)生率在Balb/c小鼠中為100%,在C57BL/6N小鼠中為50%,在C3H/HeN小鼠中為29%,在DBA/2N小鼠中為20%。
AOM/DSS模型通過炎癥和免疫組化的硝基酪氨酸陽性表達(dá)陽性率判斷小鼠品系對其敏感度為:Balb/c>C57BL/6N>C3H/HeN>DBA/2N。 最 近 研 究AOM/DSS模型造模方法相關(guān)報道如表1[8-15]。Tian等[12]和Shang等[13]報道,AOM/DSS模型可以導(dǎo)致其結(jié)腸腺癌發(fā)生率接近100%。
表1 AOM/DSS模型方法
腫瘤發(fā)生是一個復(fù)雜的過程,包括啟動、促進(jìn)和發(fā)展。細(xì)胞癌變涉及到腫瘤細(xì)胞的變異、侵襲及增殖。促進(jìn)腫瘤形成需要持續(xù)誘導(dǎo)和刺激,以及早期致癌物質(zhì)對凋亡的抑制。在腫瘤形成初期,隨著癌細(xì)胞增殖成纖維細(xì)胞也會轉(zhuǎn)移到病灶處,發(fā)揮有益功能的細(xì)胞開始倒轉(zhuǎn)過來對抗機(jī)體,通過刺激炎癥而促進(jìn)腫瘤生長[16]。炎癥微環(huán)境可以影響腫瘤的發(fā)生和腫瘤形成[17],從臨床前研究和臨床研究通過潛在分子機(jī)制已經(jīng)證明炎癥持續(xù)發(fā)生會導(dǎo)致腫瘤的發(fā)生,是發(fā)生癌變的高危因素[18]。流行病學(xué)研究顯示,包括潰瘍性結(jié)腸炎(Ulcerative colitis,UC)的炎癥性腸病(Inflammatory bowel disease,IBD)發(fā)生癌變的機(jī)制為:發(fā)炎黏膜增生性病變-不典型增生-癌變[19]。由炎癥誘發(fā)的癌變機(jī)制包括:炎癥誘導(dǎo)活性氧和活性氮產(chǎn)生、誘導(dǎo)的基因組不穩(wěn)定、基因突變后的倍性、增強(qiáng)細(xì)胞增殖、基因異常表達(dá)、抗凋亡、腫瘤的血管可以新生以至于更具侵略性、穿透基底膜導(dǎo)致腫瘤轉(zhuǎn)移。這些機(jī)制可以直接或是間接的通過損傷重要的細(xì)胞成分(例如DNA、蛋白質(zhì)和脂質(zhì)),促進(jìn)細(xì)胞惡性轉(zhuǎn)化。炎癥已經(jīng)成為癌癥的第七大特征,慢性炎癥的持續(xù)刺激是多種腫瘤產(chǎn)生的關(guān)鍵原因。
AOM/DSS模型在炎癥相關(guān)結(jié)直腸癌實驗中具有重要意義,它是在腫瘤發(fā)生率相對較低的前提下,由標(biāo)準(zhǔn)的UC模型通過多周期DSS誘導(dǎo)和延長造模時間完善而制定。在AOM/DSS誘導(dǎo)3~4周后,小鼠結(jié)腸黏膜出現(xiàn)彌散性炎癥,上皮隱窩異常,固有層呈現(xiàn)不規(guī)則形態(tài)并有大量炎癥細(xì)胞表達(dá)(淋巴細(xì)胞,漿細(xì)胞)。研究中有大量肥大細(xì)胞遷移,可以發(fā)現(xiàn)其周圍或是在其內(nèi)部有癌變[20]。觀察人類結(jié)腸炎相關(guān)性結(jié)腸癌的特征主要表現(xiàn)在免疫細(xì)胞浸潤,包括巨噬細(xì)胞、T細(xì)胞(包括CD8+、CD4+效應(yīng)T細(xì)胞和CD4+、CD25+T細(xì)胞)[21]。Garrett等報道,樹突狀細(xì)胞為T-Bet(-/-)RAG2(-/-)UC模型中炎癥癌變的細(xì)胞感受器[22]。Mantovani等[23]報道,在AOM/DSS模型中形成腫瘤的第一階段,可以觀察到誘發(fā)癌癥的兩個條件——結(jié)腸炎和遺傳/后生遺傳在特定的微環(huán)境協(xié)調(diào)下,有助于促進(jìn)腫瘤形成。在AOM/DSS模型中促進(jìn)腫瘤生長的兩個條件,炎癥內(nèi)在途徑為炎癥相關(guān)基因的表達(dá)促進(jìn)腫瘤細(xì)胞基因改變,外在途徑為在腫瘤微環(huán)境中促進(jìn)炎癥條件改變[23]。
在AOM/DSS模型中炎癥促癌發(fā)生關(guān)鍵因子包括主轉(zhuǎn)錄因子(例如NF-κB和STAT3)、炎性細(xì)胞因子(TNF-α,IL-6)、COX-2和特定趨化因子。用于檢查炎癥介質(zhì)包括IL-10、TCF-β、toll樣受體(TLR),IL-1受體抑制劑TIR8,趨化因子誘餌受體和清道夫受體D6。
大量實驗已經(jīng)證明AOM/DSS動物模型與人類CRC的發(fā)病機(jī)制相似。由于腫瘤誘導(dǎo)劑(AOM)和腫瘤促進(jìn)劑(DSS)的協(xié)同反應(yīng)。AOM/DSS模型較僅用AOM或DSS模型相比,可以呈現(xiàn)急性炎癥的最初階段和較短的潛伏期來再現(xiàn)CRC的發(fā)生機(jī)制。例如,嚙齒動物自由飲用DSS,廣泛應(yīng)用于IBD模型,通過DSS誘導(dǎo)CRC需要長時間飲用或多周期飲用,并且腫瘤發(fā)病率較低。
Tanaka等[20]報道,AOM/DSS模型是給予Balb/c小鼠單次腹腔注射AOM(10 mg/kg),自由飲用2%DSS一個循環(huán),利用這種造模方法有多發(fā)性結(jié)腸腫瘤產(chǎn)生。DSS溶于飲水中其毒性作用于結(jié)腸上皮細(xì)胞,飲用DSS第一周其特征表現(xiàn)在小鼠體重減輕、血便。但是,這些現(xiàn)象在AOM/DSS誘導(dǎo)5周后,明顯減輕。這個模型中的癌癥發(fā)展密切反映人類腫瘤發(fā)展模式。小鼠給予AOM/DSS誘發(fā)的腫瘤準(zhǔn)確的概括了被觀察到的人類CRC發(fā)病機(jī)制。例如,腫瘤多發(fā)于結(jié)腸遠(yuǎn)端,這也是人類自發(fā)CRC的主要位置。腫瘤先由息肉狀成長,并且其病理學(xué)特征與人類CRC相似。但是,AOM誘導(dǎo)的腫瘤往往缺乏黏膜侵襲性[24]。通過微觀和宏觀技術(shù)分析淋巴結(jié)和其他外周器官可能為考慮用于腫瘤轉(zhuǎn)移相關(guān)的研究。
CRC發(fā)病是一個多因素多步驟的過程,這個過程是由正常隱窩形成ACF,隱窩裂變增殖形成微腺瘤,微腺瘤發(fā)展成肉眼可見腺瘤、腺瘤性息肉,最終癌變形成腺癌。因此,在形態(tài)和遺傳學(xué)研究,這個多步驟過程為腺瘤癌變順序[25]。在近交系Balb/c和遠(yuǎn)交系ICR-1易感小鼠中,AOM/DSS模型能有效地高再現(xiàn)性這個多步驟腫瘤發(fā)生過程。雄性小鼠中,從開始致敏到12周,結(jié)腸黏膜潰瘍導(dǎo)致結(jié)腸炎,不典型增生,管狀腺瘤,有80%~100%小鼠出現(xiàn)3~10個肉眼可見腫瘤[26-27]。利用固定好的結(jié)腸切片,通過亞甲基藍(lán)染色可觀察到結(jié)腸黏膜表面的結(jié)腸隱窩是否異常。
Roncucci等[28]報道在AOM/DSS誘導(dǎo)的3~4周可以觀察到深染部分為偶然的,異常大的略凸起的“異常隱窩”。AOM/DSS誘導(dǎo)的腫瘤通常是由T淋巴細(xì)胞和其他免疫細(xì)胞浸潤結(jié)腸壁,腺瘤增生惡性癌變?yōu)橄侔?。AOM/DSS誘導(dǎo)的小鼠結(jié)腸中部和遠(yuǎn)端可觀察到腫瘤呈結(jié)節(jié)狀、息肉狀和絨毛狀。Ward等[29]報道,這些腫瘤是管狀腺瘤或中度分化管狀腺瘤。Tanaka等[20]報道,AOM/DSS誘導(dǎo)20周時,其管狀腺癌發(fā)生率為100%,多發(fā)性腺癌發(fā)生率為38%。顯微鏡下觀察,所形成的腫瘤特性是結(jié)腸上皮內(nèi)形成的腫瘤,成瘤過程是從息肉的周邊和非增生結(jié)腸上皮開始低度增生,到形成腫瘤的中央部位和黏膜下層浸潤的高度增生。Pascal等[30]報道結(jié)腸黏膜發(fā)生的不典型增生多為輕度和重度不典型增生。輕度不典型增生,細(xì)胞核細(xì)長,排列較緊密,出現(xiàn)假復(fù)層,但細(xì)胞核極性正常,杯狀細(xì)胞正?;蚵杂袦p少;中度不典型增生,細(xì)胞核更加細(xì)長,排列緊密,假復(fù)層增多,但細(xì)胞極性仍正常,杯狀細(xì)胞減少;重度不典型增生,細(xì)胞核增大,為圓形或卵圓形,核染色質(zhì)變粗,并出現(xiàn)明顯核仁,排列緊密,出現(xiàn)共壁、篩網(wǎng)結(jié)構(gòu),或腺管上皮細(xì)胞增生,連接成網(wǎng)狀,核極性紊亂,存在眾多有絲分裂,杯狀細(xì)胞明顯減少。若出現(xiàn)上述重度不典型增生現(xiàn)象可以確定腺瘤已癌變,有時腺瘤的細(xì)胞和組織學(xué)還處在不典型增生階段時,但腫瘤組織已突破黏膜肌層向黏膜下層浸潤并向周圍纖維組織發(fā)展,也可以確定腺瘤已癌變。
在過去的二十年中,CRC小鼠模型提供了IBD向CRC發(fā)展相關(guān)的病理組織學(xué)和分子學(xué)機(jī)制,有助于我們了解人類IBD向CRC發(fā)病的機(jī)制。在動物模型中,化學(xué)誘導(dǎo)CRC小鼠模型已被證明是非常有價值的,而其中AOM/DSS模型為更加穩(wěn)定的重要工具。AOM/DSS模型表明在短時間內(nèi)動物受影響且腫瘤發(fā)病率很高,可以預(yù)見和監(jiān)測的腫瘤發(fā)展,可以再現(xiàn)人類CRC發(fā)生發(fā)展的過程。在AOM/DSS模型的平臺上,開發(fā)CRC的化學(xué)預(yù)防藥物,觀察其診斷、預(yù)后和預(yù)測指標(biāo),在臨床前應(yīng)用是非常有價值的。將來對AOM/DSS模型進(jìn)一步完善,在開發(fā)新的和更復(fù)雜的分子工具與遺傳學(xué)結(jié)合應(yīng)用,可能讓我們來重新定義CRC相關(guān)疾病。利用該模型的完善,更有助于觀察及控制癌前病變研究。
[1]Van Hogezand RA,Eichhorn RF,Choudry A,et al.Malignancies in inflammatory bowel disease:fact or fiction?[J].Scand J Gastroenterol Suppl,2002,236:48-53.
[2]Itzkowitz SH,Yio X.Inflammation and cancerⅣ.Colorectal cancer in inflammatory bowel disease:the role of inflammation[J].Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol,2004,287:G7-17.
[3]Powell SM,Petersen GM,Krush AJ,et al.Molecular diagnosis of familial adenomatous polyposis[J].N Engl J Med,1993,329:1982-1987.
[4]Neufert C,Becker C,Neurath MF.An inducible mouse model of colon carcinogenesis for the analysis of sporadic and inflammation-driven tumor progression[J].Nat Protoc,2007,2(8):1998-2004.
[5]Mirvish SS,Haorah J,Zhou L,et al.Total N-nitroso compounds and their precursors in hot dogs and in the gastrointestinal tract and feces of rats and mice:possible etiologic agents for colon cancer[J].J Nutr,2002,132:3526-3529.
[6]Hata K,Tanaka T,Kohno H,et al.Beta-catenin-accumulated crypts in the colonic mucosa of juvenile ApcMin/+mice[J].Cancer Lett,2006,239(1):123-128.
[7]Bird RP,Good CK.The significance of aberrant crypt foci in understanding the pathogenesis of colon cancer[J].Toxicol Lett,2000,112:395-402.
[8]Suzuki R,Kohno H,Sugie S,et al.Strain differences in the susceptibility to azoxymethane and dextran sodium sulfate-induced colon carcinogenesis in mice[J].Carcinogenesis,2006,27(1):162-169.
[9]Svec J,Ergang P,Mandys V,et al.Expression profiles of proliferative and antiapoptotic genes in sporadic and colitis-related mouse colon cancer models[J].Int J,2010,91:44-53.
[10]Kim M,Miyamoto S,Sugie S,et al.A Tobacco-specific Carcinogen,NNK,Enhances AOM/DSS-induced Colon Carcinogenesis in MeleA/J Mice[J].In Vivo,2008,22:557-564.
[11]Ikeda I,Tomimoto A,Wada K,et al.5-aminosalicylic acid given in the remission stage of colitis suppresses colitis-associated cancer in a mouse colitis model[J].Clin Cancer Res,2007,13:6527-6531.
[12]Tian Y,Wang KM,Wang ZX,et al.Chemopreventive effect of dietary glutamine on colitis-associated colon tumorigenesis in mice[J].Carcinogenesis,2013.[Epub ahead of print]
[13]Shang K,Bai YP,Wang C,et al.Crucial involvement of tumor-associated neutrophils in the regulation of chronic colitis-associated carcinogensis in mice[J].Plos One,2012,12:e51848.
[14]Cui XL,Jin Y,Poudyal D,et al.Mechanistic insight into the ability of American ginseng to suppress colon cancer associated with colitis[J].Carcinogenesis,2010,31(10):1734-1741.
[15]Barrett CW,Fingleton B,Williams A,et al.MTGR1 is Required for Tumorigenesis in the Murine AOM/DSS Colitis-Associated Carcinoma Model[J].Cancer Res,2011,71(4):1302-1312.
[16]Heijmans J,Wielenga MC,Rosekrans SL,et al.Oestrogens promote tumorigenesis in a mouse model for colitis-associated cance r[J].Gut,2013.[Epub ahead of print]
[17]Quante M,Wang TC.Inflammation and stem cells in gastrointestinal carcinogenesis[J].Physiology(Bethesda),2008,23:350-359.
[18]Grivennikov SI,Greten FR,Karin M.Immunity,inflammation,and cancer[J].Cell,2010,140:883-899.
[19]Itzkowitz SH,Yio X.Inflammation and cancer IV.Colorectal cancer in inflammatory bowel disease:the role of inflammation[J].Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol,2004,287:G7-17.
[20]Tanaka T,Kohno H,Suzuki R,et al.A novel inflammation-related mouse colon carcinogenesis model induced by azoxymethane and dextran sodium sulfate[J].Cancer Sci,2003,94:965-973.
[21]Waldner M,Schimanski CC,Neurath MF.Colon cancer and the immune system:the role of tumor invading T cells[J].World J Gastroenterol,2006,12:7233-7238.
[22]Garrett WS,Punit S,Gallini CA,et al.Colitis-associated colorectal cancer driven by T-bet deficiency in dendritic cells[J].Cancer Cell,2009,16:208-219.
[23]Mantovani A,Allavena P,Sica A,et al.Cancer-related inflammation[J].Nature,2008,454:436-444.
[24]Roncucci L,Medline A,Bruce WR.Classification of aberrant crypt foci and microadenomas in human colon[J].Cancer Epidemiol Biomarkers Prev,1991,1:57-60.
[25]Kinzler KW,Vogelstein B.Lessons from hereditary colorectal cancer[J].Cell,1996,87:159-170.
[26]Bissahoyo A,Pearsall RS,Hanlon K,et al.Azoxymethane is a genetic background-dependent colorectal tumor initiator and promoter in mice:effects of dose,route,and diet[J].Toxicol Sci,2005,88:340-345.
[27]Becker C,Fantini MC,Wirtz S,et al.In vivo imaging of colitis and colon cancer development in mice using high resolution chromoendoscopy[J].Gut,2005,54:950-954.
[28]Roncucci L,Medline A,Bruce WR.Classification of aberrant crypt foci and microadenomas in human colon[J].Cancer Epidemiol Biomarkers Prev,1991,1:57-60.
[29]Ward JM.Morphogenesis of chemically induced neoplasms of the colon and small intestine in rats[J].Lab Invest,1974,30:505-513.
[30]Pascal RR.Dysplasia and early carcinoma in inflammatory bowel disease and colorectal adenomas[J].Hum Pathol,1994,25:1160-1171.