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        微生物發(fā)酵法制備結(jié)冷膠的研究進展

        2013-08-07 09:13:56吳軍林吳清平張菊梅
        食品工業(yè)科技 2013年10期
        關(guān)鍵詞:結(jié)冷膠氮源碳源

        吳軍林,吳清平,張菊梅,張 文

        (1.廣東省微生物研究所,廣東省華南應(yīng)用微生物重點實驗室-省部共建國家重點實驗室培育基地;廣東省微生物菌種保藏與應(yīng)用重點實驗室,廣東省微生物新技術(shù)公共實驗室,廣東廣州510070;2.廣東環(huán)凱微生物科技有限公司,廣東廣州510643)

        結(jié)冷膠(gellan gum)是由原稱為伊樂假單胞菌(Pseudomonas elodea ATCC 31461),后來基于r-RNA特征及含有鞘氨醇糖脂被進一步確認(rèn)為少動鞘脂單胞菌(Sphingomonas paucimobilis),又譯名少動鞘氨醇單胞菌,經(jīng)過有氧發(fā)酵所產(chǎn)生的細(xì)胞外多糖(extraeellular polysaeeharide,EPS)[1]。具有食用安全、用量低、耐酸堿性、適宜的風(fēng)味釋放性、高熱穩(wěn)定性等特性,廣泛應(yīng)用于化妝品、食品、化工等多個領(lǐng)域,是近年來最有發(fā)展前景的微生物食用膠。自1978年美國科學(xué)家首次發(fā)現(xiàn)結(jié)冷膠,直到1982年才出現(xiàn)規(guī)?;l(fā)酵得到結(jié)冷膠的報道。日本最早于1988年成功地完成了結(jié)冷膠的毒理實驗并準(zhǔn)許結(jié)冷膠在食品中應(yīng)用,美國食品與藥物管理局(FDA)于1992年批準(zhǔn)結(jié)冷膠作為穩(wěn)定劑和粘結(jié)劑在食品中使用[2]。我國也在1996年批準(zhǔn)其作為食品增稠劑、穩(wěn)定劑使用,并制定了結(jié)冷膠的食品安全國家標(biāo)準(zhǔn)GB 25535。結(jié)冷膠是一個線性四糖重復(fù)單元的長鏈分子,分子量約為0.5×106u的陰離子型線狀聚合物[3]。結(jié)冷膠的基本結(jié)構(gòu)如圖1所示。圖1中n為聚合物的聚合數(shù)目,主鏈由葡萄糖、鼠李糖和葡萄糖醛酸等單糖以2∶1∶1聚合組成,天然結(jié)冷膠(高乙?;Y(jié)冷膠)和低乙?;Y(jié)冷膠在結(jié)構(gòu)上的不同點在于:高乙酰基在每個以β-1-3鍵連接的葡萄糖分子的C2處被L-甘油酸酯化,C6處被乙酸酯化[4]。目前結(jié)冷膠的生產(chǎn)方法主要由微生物發(fā)酵法生產(chǎn),國內(nèi)外眾多學(xué)者對結(jié)冷膠的生產(chǎn)菌種及發(fā)酵工藝條件等方面做了大量研究,其目的是為了提高菌株的生產(chǎn)結(jié)冷膠能力,降低生產(chǎn)成本。結(jié)冷膠生產(chǎn)菌大都是從自然界分離篩選的原始菌株經(jīng)物理、化學(xué)方法誘變得到。由于誘變的不確定性,高產(chǎn)菌株在產(chǎn)結(jié)冷膠的同時,也產(chǎn)生大量的黃色類胡蘿卜素,給發(fā)酵產(chǎn)品的分離、提純帶來困難,嚴(yán)重制約了發(fā)酵法生產(chǎn)結(jié)冷膠的工業(yè)化生產(chǎn)[5]。近年來,生物工程、基因改良技術(shù)突飛猛進,使得結(jié)冷膠合成基因簇的基礎(chǔ)研究較為透徹,結(jié)冷膠基因簇(gel基因簇)中已被識別的結(jié)構(gòu)和序列與已測序的多糖sphingan S-88的合成基因簇(sps基因簇)十分相似,且相對應(yīng)的基因也有很高的同源性,因此,在分子和基因水平研究少動鞘脂單胞菌發(fā)酵產(chǎn)結(jié)冷膠的基因調(diào)控,對提高結(jié)冷膠產(chǎn)量成為可能,本文綜述了國內(nèi)外微生物發(fā)酵法制備結(jié)冷膠方面的研究進展,以期為結(jié)冷膠的研究和開發(fā)提供新思路和方向。

        圖1 結(jié)冷膠的分子結(jié)構(gòu)重復(fù)單元Fig.1 Molecular structure of the repeat unit of gellan

        1 結(jié)冷膠的生物合成

        有關(guān)結(jié)冷膠的合成代謝與調(diào)控一直是代謝領(lǐng)域的研究熱點。目前以少動鞘脂單胞菌為模式生物的結(jié)冷膠生物合成途徑是一個多步驟過程,已經(jīng)闡述清楚,可分為三個連續(xù)的步驟:a.胞內(nèi)糖活化前體的合成;b.四糖重復(fù)單元的合成;c.重復(fù)單元的移位、聚合及結(jié)冷膠分泌到膜外。王霞等[6]對結(jié)冷膠的生物合成機理研究報道的比較清晰。

        結(jié)冷膠的生物合成過程起始于核苷酸糖前體物質(zhì):UDP-D-葡萄糖、UDP-D-葡萄糖醛酸、dTDP-L-鼠李糖。合成途徑中參與的酶有:Sucrosehydrolase(蔗糖水解酶)、Hexokinase(己糖激酶)、Phosphofructokinase(磷酸果糖激酶)、UGP(UDP-葡萄糖焦磷酸化酶)、TGP(TDP-葡萄糖焦磷酸化酶)、UGD(UDP-葡萄糖脫氫酶)、TRS(TDP-鼠李糖合成酶)。在該途徑中,1-磷酸葡萄糖是個關(guān)鍵代謝位點,由它開始代謝途徑分為兩條,一條合成UDP-D-葡萄糖醛酸;而另外一條途徑合成UDP-D-葡萄糖和dTDP-L-鼠李糖。之后,胞內(nèi)合成的核苷酸前體物質(zhì)通過與細(xì)胞壁內(nèi)的脂質(zhì)載體相連接而形成結(jié)冷膠多糖的基本單元。細(xì)胞質(zhì)內(nèi)的一些核糖轉(zhuǎn)移酶將這些多糖片斷由細(xì)胞內(nèi)部轉(zhuǎn)移至細(xì)胞膜。最后,由細(xì)胞膜內(nèi)的GelS蛋白質(zhì)協(xié)助多糖基本單元跨膜運動,再通過GelC、GelE等蛋白質(zhì),將多糖的基本單元合成為具有一定長度的結(jié)冷膠多糖重復(fù)單元即結(jié)冷膠的低聚物,最后通過蛋白質(zhì)GelC分泌到胞外,形成具有一定聚合度的結(jié)冷膠多糖[6-7]。Gai等[1]繪制了少動鞘脂單胞菌ATCC31461染色體基因組序列草圖,并從中發(fā)現(xiàn)結(jié)冷膠生物合成、調(diào)控、修飾有關(guān)的特征基因,為結(jié)冷膠生物合成調(diào)控及代謝調(diào)控規(guī)律研究奠定了基礎(chǔ)。

        2 結(jié)冷膠生產(chǎn)菌種構(gòu)建

        2.1 結(jié)冷膠生產(chǎn)菌種的誘變

        從生物技術(shù)的角度來看,Sphingomonas這一屬中的菌株的共同特征是能分泌出如結(jié)冷膠、沃侖膠、鼠李膠這樣的一類多糖。這些菌株能從多種環(huán)境中分離得到,不過Sphingomonas paucimobilis中的多數(shù)菌株是從臨床樣本或醫(yī)院周邊環(huán)境中分離到的。結(jié)冷膠的生產(chǎn)菌種可以從土壤、空氣、水樣、動物體組織、植物體中分離獲得。工業(yè)上最早采用的結(jié)冷膠生產(chǎn)菌株為Pseudomonas elodea,它是從一種植物水百合上分離而得的一種好氧的革蘭氏陰性菌,端生鞭毛,后確認(rèn)被為少動鞘氨醇單胞菌(少動鞘脂單胞菌),該菌自1982年首次被發(fā)現(xiàn)以來,已廣泛應(yīng)用于結(jié)冷膠的工業(yè)化發(fā)酵生產(chǎn)[2]。近年來,結(jié)冷膠的微生物發(fā)酵生產(chǎn)越來越引人關(guān)注。科研工作者們嘗試了通過傳統(tǒng)誘變菌種的方法以提高結(jié)冷膠的產(chǎn)率。

        West等分離出了S.paucimobilis ATCC 31461的突變株,其結(jié)冷膠產(chǎn)量較原菌株高約1.4倍,彭志英等利用搖瓶培養(yǎng)分離獲得一株少動鞘脂單胞菌Sl,并優(yōu)化了該菌產(chǎn)胞外多糖的工藝條件,Sl菌胞外多糖的產(chǎn)量最高達8.98g/L,發(fā)酵液粘度最高可達45000mPa·s[8]。王姍杰等[9]采用低能N+離子束注入對出發(fā)菌Pseudomonas elodea ATCC 31461進行離子照射誘變,確定了合適的誘變條件為離子束照射(10keV,注入劑量為200×1014個N+/cm2,200s),以氨芐青霉素作為抗性篩選藥物,經(jīng)過初篩和復(fù)篩得到一株高產(chǎn)結(jié)冷膠突變株P(guān)seudomonas elodea A3-5。突變菌株經(jīng)傳代培養(yǎng),結(jié)冷膠產(chǎn)量未出現(xiàn)較大的變化,遺傳穩(wěn)定性較好,突變株形態(tài)較出發(fā)菌有較大變化,生長速度加快,結(jié)冷膠產(chǎn)量達16.5g/L,較出發(fā)菌株提高了25%。由此可見,微生物合成結(jié)冷膠以氨芐青霉素為藥物篩選是一種有效的方法,但對氨芐青霉素抗性與結(jié)冷膠產(chǎn)量之間的相關(guān)性機制需要進一步的研究。

        2.2 改變結(jié)冷膠合成途徑

        基因工程菌的構(gòu)建一直以來成為提高菌株目的產(chǎn)物的有效手段,由于結(jié)冷膠生產(chǎn)過程中糖轉(zhuǎn)化率(40%~50%)較低[5],通過對結(jié)冷膠代謝途徑的深入了解,Vartak等[10]通過基因工程修飾出發(fā)菌株ATCC 31461以增加其合成效率,期盼獲得較高的糖轉(zhuǎn)化率。研究者們先從S. elodea細(xì)胞內(nèi)克隆編碼葡萄糖-6-磷酸葡萄糖脫氫酶的ZWF基因,部分測序后構(gòu)建了敲除ZWF基因的工程菌,期望細(xì)胞內(nèi)碳代謝流向結(jié)冷膠合成方向,減少在磷酸戊糖途徑中因生成大量的CO2而降低轉(zhuǎn)化率,但這種重組并沒有顯著提高結(jié)冷膠的合成效率。Zhu等[11]克隆并鑒定了少動鞘氨醇單胞菌ATCC 31461的類胡蘿卜素的生物合成途徑中編碼八氫番茄紅素脫氫酶基因crtI,敲除crtI基因?qū)е曼S色類胡蘿卜素色素合成受阻,結(jié)冷膠的產(chǎn)量與野生型基本相同,但結(jié)冷膠回收時所使用的乙醇減少30%,使下游純化成本顯著減少。

        2.3 阻斷競爭性分支途徑

        Vartak等[10]發(fā)現(xiàn)結(jié)冷膠生產(chǎn)菌的最佳發(fā)酵條件極易出現(xiàn)C/N比失衡的問題,有利于副產(chǎn)物聚β-羥丁酸(PHB)合成,結(jié)冷膠的最佳發(fā)酵條件也是副產(chǎn)物PHB合成的最佳條件,因此,發(fā)酵過程中結(jié)冷膠的合成會與PHB合成競爭碳源。Baird和Cleary通過隨機突變,使出發(fā)菌株P(guān)HB的合成受阻,但沒有提高結(jié)冷膠的合成效率,可能化學(xué)隨機誘變在阻斷PHB合成的同時,還導(dǎo)致了其他不利突變,因此有學(xué)者嘗試通過基因敲除的方法阻斷PHB的合成途徑[12]。Motrison等構(gòu)建了敲除PHB聚合酶基因(phac)的工程菌種,有效阻斷PHB的合成,但此工程菌株產(chǎn)膠能力反而下降[13-14],可能影響工程菌株的生長,需要進一步的深入研究。

        2.4 增加結(jié)冷膠合成途徑中關(guān)鍵酶的表達

        隨著在結(jié)冷膠合成的遺傳特性方面取得顯著的發(fā)展。越來越多的基因工程控制策略已應(yīng)用于結(jié)冷膠的早期合成步驟中。Sá-Correia等[15]在S. elodea ATCC 31461中分別過表達pgmG基因(葡糖磷酸變位酶)和ugpG基因(UDP-葡萄糖焦磷酸化酶),提高了特異性酶的活力,使UDP-葡萄糖合成增加,然而對提高結(jié)冷膠的合成并不顯著,而同時過度表達pgmG基因和ugdG基因,使結(jié)冷膠的產(chǎn)量和ESP粘度增長了20%。將基因工程技術(shù)應(yīng)用于結(jié)冷膠的中后期合成步驟中的研究也有報道。Thorne等由Sphingomonas sp. ATCC 21423合成糖活化前體sphingan S-7的基因調(diào)控過程中,同時過度表達S-7基因簇的合成基因,包括特異糖基轉(zhuǎn)移酶、重復(fù)單元聚合以及聚合物分泌等編碼基因,構(gòu)建成的工程菌的多糖sphingan S-7產(chǎn)量同比增長20%,發(fā)酵液的粘度也大大增加[12]。因此對于結(jié)冷膠基因工程改造方面還有許多問題需要解決,結(jié)冷膠合成及其他糖代謝的關(guān)系和調(diào)控,仍然需要深入研究。

        2.5 其他位點的基因工程改造

        Handing等[16]通過EMS化學(xué)誘變獲得了一株產(chǎn)低酰基結(jié)冷膠的突變株LAM-1,破壞菌株合成乙酰基的途徑,并通過敲除乙酰基轉(zhuǎn)移酶基因,得到了合成無乙酰基側(cè)鏈的結(jié)冷膠突變株,該工程菌產(chǎn)結(jié)冷膠能力沒有明顯提高,但其合成產(chǎn)物的性質(zhì)發(fā)生了較大的變化。Handing等[17]通過敲除生物合成基因簇中與結(jié)冷膠和細(xì)胞表面結(jié)合相關(guān)的酶GeIN或GeIM后,發(fā)酵液粘度下降,同時也造成出膠率和強度的下降。推測可能原因是上述基因敲除后,結(jié)冷膠更容易受到結(jié)冷膠降解酶Ge1R的降解。因此嘗試在敲除gelN的基礎(chǔ)上,同時敲除結(jié)冷膠降解酶基因gelR,所得的結(jié)冷膠在較低的粘度下具有更高的強度。

        高酰基結(jié)冷膠目前主要作為牛奶中的添加劑使用。但是高?;Y(jié)冷膠中會殘留發(fā)酵過程中產(chǎn)生的芳香基硫酸醋酶(arylsulfatase)和β-葡萄糖醛酸酶(β-glucuronidase),影響牛奶的口味。因此Cleary等[18]敲除了這兩個酶基因,有效解決了牛奶中添加結(jié)冷膠產(chǎn)品影響風(fēng)味的問題。Wu等[5,19]構(gòu)建了含透明顫菌血紅蛋白VHb基因的工程菌,發(fā)現(xiàn)VHb的表達不僅加速了少動鞘氨醇單胞菌的生長,同時也有效地促進了菌株合成結(jié)冷膠的能力,VHb的存在改善了細(xì)胞對氧氣的攝取和利用能力,較有效地緩解了發(fā)酵后期低溶氧條件對菌株細(xì)胞代謝活性的限制。構(gòu)建的工程菌株在6.7L小罐發(fā)酵48h后,結(jié)冷膠產(chǎn)量高達16.82g/L,糖膠轉(zhuǎn)化率達到57.8%,均較原始菌株提高20%。

        3 結(jié)冷膠發(fā)酵生產(chǎn)工藝

        影響結(jié)冷膠產(chǎn)量的因素有很多,例如培養(yǎng)基的營養(yǎng)成分、發(fā)酵條件等。國內(nèi)外的研究主要集中在培養(yǎng)基配方和工藝條件方面,有研究表明,較高的C/N有利于多糖的合成[15]。關(guān)于結(jié)冷膠發(fā)酵生產(chǎn)的最佳碳源的研究國內(nèi)外學(xué)者得出的結(jié)果并不一致。Kanari等[20]發(fā)現(xiàn)少動鞘脂單胞菌發(fā)酵產(chǎn)結(jié)冷膠的最適碳源為葡萄糖、蔗糖以及可溶性淀粉。Ashtaputre和Shah[21]認(rèn)為蔗糖是用于Sphingomonas paucimobilis-GS1發(fā)酵產(chǎn)結(jié)冷膠的最佳碳源。Fialho等[22]研究了葡萄糖、乳糖、干酪乳清對Sphingomonas paucimobilis ATCC 31461發(fā)酵產(chǎn)結(jié)冷膠的影響,發(fā)現(xiàn)采用葡萄糖作為最佳碳源時結(jié)冷膠產(chǎn)量達到14.59g/L,且利用不同的碳源得到的結(jié)冷膠乙?;潭炔⒉幌嗤?。但是,Bajaj等[23]研究結(jié)果表明2%可溶性淀粉為最佳碳源,其結(jié)冷膠產(chǎn)量可以達到24~28g/L。Banik等[24]研究了利用蔗糖工業(yè)上的廉價副產(chǎn)物糖蜜作為碳源來生產(chǎn)結(jié)冷膠,并獲得了13.8g/L的產(chǎn)量。彭志英等[8]研究發(fā)現(xiàn)一葡萄糖或蔗糖為碳源時,菌體及產(chǎn)膠量最好,同時發(fā)現(xiàn)碳源添加方式為二步加糖法時更有利于結(jié)冷膠發(fā)酵生產(chǎn)。

        氮源的種類和濃度對結(jié)冷膠產(chǎn)量和質(zhì)量都會產(chǎn)生顯著的影響。Dreveton等[25]研究發(fā)現(xiàn)有機氮源對菌體的生長和結(jié)冷膠的生物合成明顯優(yōu)于無機氮源。Jin等[26]比較了NH4NO3、蛋白胨、大豆油渣對Sphingomonas paucimobilis NK2000發(fā)酵產(chǎn)結(jié)冷膠的影響,研究發(fā)現(xiàn)在沒有NH4NO3存在下,使用大豆油渣代替昂貴的蛋白胨作為氮源,結(jié)冷膠的產(chǎn)量提高了3倍。Nampoothiri等[8]比較了多種有機氮源和無機氮源對結(jié)冷膠發(fā)酵的影響,發(fā)現(xiàn)蛋白胨為最佳氮源。胡桂萍等[27]研究發(fā)現(xiàn)少動鞘脂單胞菌發(fā)酵產(chǎn)膠最適氮源為豆餅粉。Bajaj等[23]的研究發(fā)現(xiàn)少動鞘氨醇單胞菌在含尿素、NH4NO3等無機氮源的培養(yǎng)基中,菌體長勢非常好,但是結(jié)冷膠的產(chǎn)量卻不高;而利用酵母膏、干酪素、蛋白胨、大豆粉等有機氮源時,雖然菌體的干重有所下降,但是結(jié)冷膠的產(chǎn)量卻有所提高。

        Vanderhoff等[28]利用乙醇加工副產(chǎn)物玉米可溶物(CCS)作為氮源與一定濃度葡萄糖為碳源開發(fā)了一種廉價的培養(yǎng)基,結(jié)冷膠產(chǎn)量達到12.5g/L,葡萄糖利用率達到90%以上,具有一定的應(yīng)用前景。

        微生物發(fā)酵過程中,溫度是能夠影響結(jié)冷膠產(chǎn)量的重要因素之一,結(jié)冷膠的發(fā)酵溫度一般控制在30℃左右[29],也有報道,結(jié)冷膠發(fā)酵的最適溫度為30~31℃,菌體生長的最適溫度為31℃,若溫度下降到28℃或升高到33℃,生產(chǎn)菌在最適的生長溫度下產(chǎn)生的結(jié)冷膠要比在其他的溫度下的產(chǎn)量提高將近50%[13]。通氣量也是一個重要的影響因素,如果能夠不斷的攪拌發(fā)酵液并充分通氣,結(jié)冷膠的終產(chǎn)物濃度也會相應(yīng)的增加。一般通過控制攪拌速度和通氣量來提高發(fā)酵液中氧氣濃度[30-31],但當(dāng)發(fā)酵液粘度增加到一定程度時,需要采用能夠增加供氧的攪拌系統(tǒng)和結(jié)構(gòu)合適的反應(yīng)器來提高結(jié)冷膠的發(fā)酵水平。Arockiasamy和Banik[32]研究了非離子表面活性劑的添加對結(jié)冷膠發(fā)酵的影響,發(fā)現(xiàn)表面活性劑增強氧的傳遞,在較高的攪拌條件下結(jié)冷膠的產(chǎn)量達到27.86g/L。因此,發(fā)酵液中溶氧條件直接影響菌株的代謝和生長,發(fā)酵體系中具備較好的溶解氧(DO)值,可以顯著提高菌株的代謝速率和產(chǎn)量。改善發(fā)酵過程中溶氧條件可作為結(jié)冷膠發(fā)酵生產(chǎn)工藝技術(shù)優(yōu)化的方向。

        也有學(xué)者對結(jié)冷膠的發(fā)酵動力學(xué)和代謝途徑進行了分析,并采用響應(yīng)面實驗設(shè)計等方法改進工藝,提高產(chǎn)量。Banik等[33]通過20個影響結(jié)冷膠發(fā)酵變量的測試,統(tǒng)計分析出糖蜜,蛋白胨,酪蛋白氨基酸,磷酸氫二鈉,氯化錳對結(jié)冷膠的生產(chǎn)具有顯著影響。Arockiasamy 和Banik[32]研究了結(jié)冷膠發(fā)酵流體力學(xué),通過發(fā)酵動力學(xué)及胞外多糖流變學(xué)特性分析發(fā)現(xiàn),曝氣對結(jié)冷膠的大規(guī)模生產(chǎn)至關(guān)重要。徐曉琴等[34]研究了少動鞘脂單胞菌發(fā)酵高產(chǎn)結(jié)冷膠的發(fā)酵過程規(guī)律,建立了結(jié)冷膠發(fā)酵過程中菌體生長、產(chǎn)物積累和基質(zhì)消耗的數(shù)學(xué)模型,較好地反映了結(jié)冷膠發(fā)酵過程中菌體生長、底物消耗和產(chǎn)物合成過程及其動力學(xué)機制。Wang等[35]在建立了動力學(xué)模型的基礎(chǔ)上,使Sphingomonas paucimobilis ATCC 31461結(jié)冷膠產(chǎn)量達到17.71g/L,糖膠轉(zhuǎn)換率達到57.12%。

        4 展望

        結(jié)冷膠由于具有的特殊的理化性質(zhì)及優(yōu)越的凝膠性能使其具有廣泛的應(yīng)用前景和較高的商業(yè)價值。但受其成本的限制,結(jié)冷膠的應(yīng)用受到了極大限制。目前在國內(nèi)由于結(jié)冷膠的研究起步較晚,雖然也有投資生產(chǎn)但生產(chǎn)技術(shù)較國外落后,產(chǎn)品質(zhì)量及產(chǎn)量相對較差。因此降低生產(chǎn)成本,提高結(jié)冷膠的質(zhì)量及產(chǎn)量一直都是結(jié)冷膠研究的關(guān)鍵。結(jié)冷膠的生物合成途徑已基本清晰,但對于其代謝調(diào)控規(guī)律依然還有許多問題要回答,因此,通過代謝調(diào)節(jié)基礎(chǔ)領(lǐng)域的研究,可以有效指導(dǎo)結(jié)冷膠生物合成途徑的修飾,調(diào)節(jié)微生物對結(jié)冷膠的生產(chǎn)、增加結(jié)冷膠的產(chǎn)量;利用遺傳工程和代謝工程對結(jié)冷膠代謝途徑進行重新設(shè)計,如基因打靶、RNAi基因沉默技術(shù)阻斷結(jié)冷膠合成過程中黃色類胡蘿卜素色素的生成。結(jié)冷膠發(fā)酵中后期,發(fā)酵液具有高度的粘性,因此降低攪拌的耗能也是一大難題。另外,結(jié)冷膠生產(chǎn)菌種退化速度較快也是一個不容忽視的問題,目前關(guān)于結(jié)冷膠菌種復(fù)壯的相關(guān)研究還很少,希望會有更多這方面的研究。

        [1] Gai Z,Wang X,Zhang X,et al. Genome sequence of Sphingomonas elodea ATCC 31461,a highly productive industrial strain of gellan gum[J]. J Bacteriol,2011,193(24):7015-7016.

        [2] Bajaj IB,Survase SA,Saudagar PS,et al. Gellan gum:fermentative production,downstream processing and applications[J]. Food Technol Biotechnol,2007,45(4):341-354.

        [3] Freitas F,Alves VD,Reis MA. Advances in bacterial exopolysaccharides:from production to biotechnological applications[J]. Trends Biotechnol,2011,29(8):388-398.

        [4] Taylor DL,F(xiàn)erris CJ,Maniego AR,et al. Characterization of gellan gum by capillary electrophoresis[J]. Aust J Chem,2012,65:1156-1164.

        [5] Wu X,Li O,Chen Y,et al. A carotenoid-free mutant strain of Sphingomonas paucimobilis ATCC 31461 for the commercial production of gellan[J]. Carbohydrate Polymers,2011,84(3):1201-1207.

        [6] 王霞,袁永,黎盛基,等.結(jié)冷膠生物合成機理研究進展[J].中國生物工程雜志,2005,25(11):62-65.

        [7] Rocha J,Granja AT,Sá-Correia I,et al. Cloning,expression,purification, crystallization and preliminary crystallographic studies of UgdG, an UDP -glucose dehydrogenase from Sphingomonas elodea ATCC 31461 [J]. Acta Crystallogr Sect F Struct Biol Cryst Commun,2010,66(Pt 1):69-72.

        [8] 王琴丹,李柏林,歐杰. 結(jié)冷膠的生物合成研究進展[J]. 食品科學(xué),2008,29(10):689-693.

        [9] 王姍杰,詹曉北,吳劍榮,等. 低能氮離子注入誘變選育高產(chǎn)結(jié)冷膠菌株的研究[J]. 工業(yè)微生物,2010(2):20-24.

        [10] Vartak NB,Lin CC,Cleary JM,et al. Glucose metabolism in Sphingomonas elodea:pathway engineering via construction of a glucose - 6 - phosphate dehydrogenase insertion mutant[J].Microbiology,1995,141:2339-2350

        [11] Zhu L,Wu X,Li O,et al. Cloning and knockout of phytoene desaturase gene in Sphingomonas elodea ATCC 31461 for economic recovery of gellan gum[J]. J Ind Microbiol Biotechnol,2011,38(9):1507-1513.

        [12] 黃海東,劉云,劉如林. 合成生物聚合物的重要微生物資源-鞘氨醇單胞菌[J]. 微生物學(xué)報,2009,49(5):560-566.

        [13] West TP.Effect of temperature on bacterial gellan production[J]. World Journal of Microbiology and Biotechnology,2003,19(6):649-652.

        [14] West TP,F(xiàn)ullenkamp NA. Effect of culture medium pH on bacterial gellan production[J]. Microbios,2001,105:133-140.

        [15] Fialho AM,Moreira LM,Granja AT,et al. Occurrence,production,and applications of gellan:current state and perspectives[J].Appl Microbiol Biotechnol,2008,79(6):889-900.

        [16] Harding NY,Patel YN,McQuown JO. Mutant strain of Sphingomonas elodea which produces non-acetylated gellan gum[P]. US Patent 4352523,2002.

        [17] Harding NE,Patel YN,Coleman R. Targeted gene deletions for polysaccharide slime formers[P]. US Patents,2006.

        [18] Cleary JM,Coleman RJ,Harding NE,et al. Genetically purified gellan gum[P]. US patent 7361754,2007.

        [19] Wu XC,Chen YM,Li YD,et al. Constitutive expression of Vitreoscilla haemoglobin in sphingomonas elodea to improve gellan gum production[J]. Journal of Applied Microbiology,2011,110(2):422-430.

        [20] Kanari B,Banik RR,Upadhyay SN. Effect of envirnmental factors and carbohydrateon gellan gum prduction[J].Appl Biochem Biotechnol,2002,102-103(1-6):129-140.

        [21] Ashtaputre AA,Shah AK.Studies on a Viscous,Gel-Forming Exopolysaccharide from Sphingomonas paucimobilis GS1[J]. Appl Environ Microbiol,1995,61(3):1159-1162.

        [22] Fialho AM,Martins LO,Donval ML,et al. Structures and properties of gellan polymers produced by Sphingomonas paucimobilis ATCC 31461 from lactose compared with those produced from glucose and from cheese whey[J]. Appl Environ Microbiol,1999,65(6):2485-2491.

        [23] Bajaj IB,Saudagar PS,Singhal RS,et al. Statistical approach to optimization of fermentative production of gellan gum from Sphingomonas paucimobilis ATCC 31461[J]. J Biosci Bioeng,2006,102(3):150-156.

        [24] Banik RM,Santhiagu A,Upadhyay SN. Optimization of nutrients for gellan gum production by Sphingomonas paucimobilis ATCC 31461 in molasses based medium using response surface methodology[J]. Bioresour Technol,2007,98:792-797.

        [25] Dreveton E,F(xiàn)rederic M,Jacqueline L,et al. Effect of mixing and mass transfer conditions on gellan production by Auromonaselodea[J]. Ferment Bioerrg,1994,77:642-649.

        [26] Jin H,Lee NK,Shin MK,et al. Production of gellan gum by Sphingomonas paucimobilis NK2000 with soybean pomace[J].Biochemical Engineering Journal,2003,16(3):357-360.

        [27] 胡桂萍,劉波,朱育菁,等.少動鞘脂單胞菌產(chǎn)結(jié)冷膠發(fā)酵培養(yǎng)基的響應(yīng)面法優(yōu)化[J]. 生物數(shù)學(xué)學(xué)報,2012,27(3):507-517.

        [28] Vanderhoff A,Gibbons WR,Bauer N,et al. Development of a low-cost medium for producing gellan from Sphingomonas paucimobius[J]. Journal of Biotech Research,2010(2):67-78.

        [29] Kim MK,Lee IY,Ko JH,et al. Higher intracellular levels of uridine monophosphate under nitrogen-limited conditions enhance the metabolic flux of curdlan synthesis in Agrobacterium species[J]. Biotechnol Bioeng,1999,62:317-323.

        [30] Giavasis 1,Harvey LM,McNeil B. The effect of agitation and aeration on the synthesis and molecular weight of gellan in batch cultures of Sphingomonas paucimobilis[J]. Enzyme and Microb Technol,2006,38:101- 108.

        [31] Banik RM,Santhiagu A. Improvement in production and quality of gellan gum by Sphingomorras paucimobilis under high dissolved oxygen tension levels[J].Biotechnol Lett,2006,28:1347-1350.

        [32] Arockiasamy S,Banik RM. Optimization of gellan gum production by Sphingomonas paucimobilis ATCC 31461 with nonionic surfactants using central composite design[J]. J Biosci Bioeng,2008,105(3):204-210.

        [33] Banik RM,Santhiagu A,Upadhyay SN. Optimization of nutrients for gellan gum production by Sphingomonas paucimobilis ATCC-31461 in molasses based medium using response surface methodology[J]. Bioresour Technol,2007,98:792-797

        [34] 徐曉琴,蔣德宏,黃金,等. 微生物多糖結(jié)冷膠的分批發(fā)酵動力學(xué)模型[J]. 化學(xué)工程,2011,39(11):1-5.

        [35] Wang X,Xu P,Yuan Y,et al. Modeling for gellan gum production by Sphingomonas paucimobilis ATCC 31461 in a simplified medium[J]. Appl Environ Microbiol,2006,72(5):3367,3374.

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