高 璐, 唐 偉, 楊振泉, 杭 莉, 高 崧, 方維明
(1.揚(yáng)州大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,江蘇 揚(yáng)州 225127;2.揚(yáng)州大學(xué)獸醫(yī)學(xué)院,江蘇 揚(yáng)州 225009;3.泰州市出入境檢驗(yàn)檢疫局,江蘇 泰州 225300;4.泰州市疾病預(yù)防控制中心,江蘇 泰州 225300)
弧菌廣泛存在于水產(chǎn)品中,現(xiàn)報(bào)道的共有200多種。其中,有12種對(duì)人體具有很強(qiáng)的致病性,可引起人體嚴(yán)重腹瀉或者傷口感染、中耳炎及敗血癥等[1]。近年來,有關(guān)此類的食物中毒事件的案例不斷增加,因而對(duì)消費(fèi)者的健康構(gòu)成潛在的威脅[2]。副溶血弧菌和溶藻弧菌是2種重要的致病菌種,通常認(rèn)為他們是條件致病菌,是引起海洋魚類和無脊椎動(dòng)物大量死亡的主要原因,并且每年導(dǎo)致全世界水產(chǎn)養(yǎng)殖業(yè)大量的經(jīng)濟(jì)損失[3-6]。
微生物分型技術(shù)是進(jìn)行食品中微生物檢測(cè)和流行病學(xué)研究中必不可少的工具,但研究結(jié)果表明傳統(tǒng)的血清分型、表型分型技術(shù)在環(huán)境和流行病學(xué)調(diào)查分析中具有局限性。分子分型方法以其高靈敏性、高分型率等優(yōu)點(diǎn)被廣泛應(yīng)用于弧菌的分型和診斷中。隨機(jī)擴(kuò)增多態(tài)性DNA技術(shù)(Random amplified polymorphic DNA,RPAD)是以PCR為基礎(chǔ)的分子標(biāo)記技術(shù),是Williams等[7]和 John 等[8]建立的一種新的揭示基因組多態(tài)性的方法,所需要的引物無需專門設(shè)計(jì),模板DNA用量少,靈敏度高,已被廣泛地應(yīng)用于生物的遺傳多樣性和種群的遺傳、分類及親緣關(guān)系等研究。
本研究對(duì)從江蘇省部分地區(qū)淡水產(chǎn)品中分離到的59株副溶血弧菌和107株溶藻弧菌的全基因組進(jìn)行了RAPD分析,旨在探討其種內(nèi)各分離株間的親緣關(guān)系和分子特性,為監(jiān)測(cè)流行株、及時(shí)準(zhǔn)確確立污染源、調(diào)查傳播途徑的研究提供依據(jù),也為有效預(yù)防控制弧菌引起的腹瀉及食物中毒事件提供科學(xué)依據(jù)。
1.1.1 菌株來源 所用菌株均分離自江蘇省連云港、揚(yáng)州、泰州、常州地區(qū)的魚、蝦、蟹、貝等淡水產(chǎn)品,由揚(yáng)州大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院發(fā)酵微生物實(shí)驗(yàn)室保存。
1.1.2 主要試劑與儀器 TCBS瓊脂購于杭州微生物試劑有限公司;PCR所用生物試劑(10×Buffer、RNase、Taq 酶、dNTPs、DNA Marker)均為上海生工生物工程技術(shù)有限公司產(chǎn)品。
SPX-250-250B-Z型生化培養(yǎng)箱(購自上海博訊公司),PTC-100 PCR儀(購自美國MJ公司),DYY-8B型穩(wěn)壓穩(wěn)流電泳儀(購自北京市六一儀器廠),TG16-WS型高速離心機(jī)(購自湘儀離心機(jī)儀器有限公司),GELDOCXR凝膠成像系統(tǒng)(購自BIO-RAD公司)。
參照文獻(xiàn)[9]和《精編分子生物學(xué)實(shí)驗(yàn)指南》的CTAB法提取弧菌分離株基因組DNA。
參照文獻(xiàn)[9],選取2條隨機(jī)引物(AP11:5'-GGGAACGTGT-3';AP21:5'-AATCGGGCTG-3')進(jìn)行隨機(jī)多態(tài)性擴(kuò)增試驗(yàn)。
RAPD擴(kuò)增反應(yīng)體系:模板(100 ng/μl)1.0 μl、dNTPs(10 mmol/L)0.5 μl、隨 機(jī) 引 物 (10 pmol/μL)2.0 μl、10 × Buffer 2.5 μl、MgCl2(25 mmol/L)2.0 μl、Taq 酶 (5 U/μl)0.3 μl、ddH2O 15.7 μl,總體積 25.0 μl。
RAPD熱循環(huán)參數(shù):94℃ 3 min,36℃ 1 min,72℃ 2 min,1次循環(huán);94℃ 1 min,36℃ 55 s,72℃ 2 min,35次循環(huán);94 ℃ 1 min,36 ℃ 55 s,72 ℃ 10 min,1 次循環(huán)。
擴(kuò)增產(chǎn)物的檢測(cè):取10.0 μl產(chǎn)物在1.2%的瓊脂糖凝膠上進(jìn)行電泳(電壓5 V/cm)1.5 h,電泳結(jié)束后經(jīng)溴化乙錠染色20 min,在凝膠成像系統(tǒng)上進(jìn)行觀察并拍照。根據(jù)條帶清晰程度,彌散背景情況以及帶型強(qiáng)弱選擇圖片進(jìn)行分析。
取不同的分離株,每個(gè)菌株利用上述建立和優(yōu)化的系統(tǒng)分別獨(dú)立進(jìn)行RAPD-PCR擴(kuò)增3次,并分析擴(kuò)增譜帶的穩(wěn)定性和重復(fù)性。
電泳圖中相同遷移位置上有條帶的記1、無條帶的記0,以1、0數(shù)列矩陣形式記錄PCR產(chǎn)物的擴(kuò)增位點(diǎn)。利用Popgene 32軟件對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行分析,得出Nei's基因多樣度、Shannon's信息指數(shù)、遺傳相似度、遺傳距離等數(shù)據(jù),并根椐遺傳距離利用Mega 4構(gòu)建UPGMA系統(tǒng)進(jìn)化樹。
對(duì)于各分離株進(jìn)行3次RAPD擴(kuò)增,電泳結(jié)果如圖1所示,3次擴(kuò)增獲得的指紋基本一致,顯示指紋圖譜具有較好的穩(wěn)定性和可重復(fù)性。
圖1 RAPD指紋圖譜分型Fig.1 The repeated amplification of the isolates by RAPD
應(yīng)用RAPD分型方法對(duì)59株副溶血弧菌分離株進(jìn)行分析,2種不同隨機(jī)引物AP11、AP21的擴(kuò)增譜帶模式如圖2所示。AP11擴(kuò)增得到8個(gè)不同的指紋圖譜(圖2A),其中,菌株分布最集中的是1型、4型和 7型,所占的比例分別為32.8%(19/59)、25.4%(15/59)和 22.0%(13/59);AP21擴(kuò)增得到7個(gè)不同的指紋圖譜(圖2B),其中,菌株分布最集中的是a型、c型和d型,所占的比例分別為39.0%(23/59)、27.1%(16/59)和15.3%(9/59)(表 1)。
圖2 副溶血弧菌RAPD譜帶Fig.2 RAPD patterns of V.parahaemolyticus isolates
按照每個(gè)菌株的2種譜帶模式組合進(jìn)行基因分型,共獲得了18個(gè)基因型別(表1),其中1a、4a、7d為主要型別,所占比例分別為 16.9%、15.3%、10.2%。根據(jù)分子指紋圖譜計(jì)算Nei氏相似系數(shù),通過UPGMA聚類分析,繪制系統(tǒng)進(jìn)化樹(圖3)進(jìn)一步表明,18個(gè)分子型在相似性80%的基礎(chǔ)上可分為A至I 9個(gè)遺傳譜系,其中A型和C型是副溶血弧菌的主要型別,屬于A型的有17株分離株、C型的有19株,分別占總分離株的28.8%和32.2%,且A型和C型副溶血弧菌在所有采樣地區(qū)和樣品種類中均有檢出(表2)。
圖3 副溶血弧菌分離株的RAPD指紋圖譜聚類分析圖Fig.3 The clustering analysis of RAPD patterns of V.parahaemolyticus isolates
表2 副溶血弧菌在不同地區(qū)、樣品中的分布Table 2 Distribution of different genotypes of V.parahaemolyticus isolates in four samples from all four areas
應(yīng)用隨機(jī)引物AP11、AP21對(duì)107株溶藻弧菌分離株進(jìn)行隨機(jī)多態(tài)性擴(kuò)增分析,不同隨機(jī)引物的譜帶擴(kuò)增模式如圖4所示。AP11擴(kuò)增得到11個(gè)不同的指紋圖譜(圖4A),其中,菌株分布最集中的是1型、8型和10型,所占比例分別為29.0%(31/107),15.0%(16/107)和32.7%(35/107);AP21擴(kuò)增得到6個(gè)不同的指紋圖譜(圖4B),其中,菌株分布最集中的是a型、c型和f型,所占比例分別為50.5%(54/107),19.6%(21/107)和16.8%(18/107)(表3)。
圖4 溶藻弧菌RAPD譜帶Fig.4 RAPD patterns of V.alginolyticus isolates
按照每個(gè)菌株的2種譜帶模式組合進(jìn)行基因分型,共獲得了21個(gè)基因型別(表3),其中1a、8c、10a和10f為主要型別,所占比例分別為22.4%、13.1%、19.6和11.2%。根據(jù)分子指紋圖譜計(jì)算Nei氏相似系數(shù),通過UPGMA聚類分析,繪制系統(tǒng)進(jìn)化樹(圖5)進(jìn)一步表明,21個(gè)分子型在相似性80%的基礎(chǔ)上可分為A至I 12個(gè)遺傳譜系,其中A型是溶藻弧菌的最主要型別,含分離株50株,占總分離株的46.7%。溶藻弧菌的譜系A(chǔ)和K在所有采樣地區(qū)和樣品中均有檢出(表4)。
表4 溶藻弧菌在不同地區(qū)、樣品中的分布Table 4 Distribution of different genotypes of V.alginolyticus in four samples from all four areas
圖5 溶藻弧菌分離株的RAPD指紋圖譜聚類分析圖Fig.5 The clustering analysis of RAPD patterns of V.alginolyticus isolates
表3 不同來源的溶藻弧菌分離株的RAPD分型結(jié)果Table 3 Results of RAPD genotyping differently-originated V.alginolyticus isolates
隨著分子生物學(xué)技術(shù)的發(fā)展,在基因型方面的分子分型技術(shù)已經(jīng)得到了廣泛的應(yīng)用。目前,弧菌中應(yīng)用最多的是以脈沖凝膠電泳分析(PFGE)為首的分子分型方法,但是其分型成本高、操作費(fèi)時(shí)而且技術(shù)復(fù)雜,不適用于大量樣品的快速分型[10]。
RAPD技術(shù)具有個(gè)體、種群、亞種和種等各層次水平上的特異性,且操作簡單,所需要引物不需要專門設(shè)計(jì),適用于大量樣品的快速分型,尤其是在疾病暴發(fā)流行時(shí),它是分析相關(guān)菌株和排除不相關(guān)菌株的良好基礎(chǔ),已廣泛應(yīng)用于遺傳多樣性、分類及親緣關(guān)系等領(lǐng)域的研究[11]。
本研究在我們已建立的副溶血弧菌RAPD分型技術(shù)的基礎(chǔ)上,選取了AP11、AP21 2條隨機(jī)引物,對(duì)不同來源的副溶血弧菌和溶藻弧菌進(jìn)行分型,結(jié)果顯示,AP11、AP21 2條引物將59株副溶血弧菌分為18個(gè)譜型,將107株溶藻弧菌分為21個(gè)譜型,顯示了副溶血弧菌和溶藻弧菌均具有較好的基因多樣性,這與Sudheesh等[12]的研究基本一致。
從弧菌的地理分布上看,連云港地區(qū)樣品中分離到的副溶血弧菌和溶藻弧菌具有豐富的多態(tài)性,其譜帶模式均多于揚(yáng)州、泰州、常州地區(qū)樣品中分離株。這可能與連云港所處的沿海地理位置相關(guān),易與海產(chǎn)品發(fā)生相互交叉污染,或是沿海入口的生存環(huán)境(如鹽度、溫度等)更易于弧菌的生長,我們前期的研究也發(fā)現(xiàn)連云港地區(qū)樣品中弧菌的多樣性比揚(yáng)州、泰州、常州地區(qū)豐富[13]。
從弧菌的樣品來源上看,在魚、蟹和蝦這3類樣品中,副溶血弧菌和溶藻弧菌均顯示了較好的多態(tài)性,魚和蝦樣品中分離株的指紋譜帶模式較為接近,而在貝類樣品中的指紋圖譜譜帶比較單一,這可能與這些水生動(dòng)物的生活習(xí)性有關(guān),也可能與我們樣品數(shù)量有限所致。因而,我們?nèi)孕柽M(jìn)一步的研究以了解他們之間的相關(guān)性。對(duì)這些不同地區(qū)不同樣品的主要攜帶型別進(jìn)行深入的研究,將為水產(chǎn)品中污染源的溯源及水產(chǎn)養(yǎng)殖中疾病傳染的控制提供重要的依據(jù)。
[1]HOLT J G,KRIEG N R,SNEATH P H,et al.Bergey’s manual of determinative bacteriology[M].9th ed.Philadelphia:Williams& Wilkins,1994.
[2]MARTHA I,TRACY A,BARBARA E,et al.Infections in the United States Epidemiology of seafood-associated[J].Clinical Microbiology Reviews,2010,23(2):399-411.
[3]LIGHTNER D V.Vibrio disease in penaeid shrimp[M]//SINDERMAN C J,LIGHTNER D V.Disease diagnosis and control in North American marine aquaculture.Elsevier:Amsterdam,1988:42-47.
[4]CHEN C,WANG Q B,LIU Z H,et al.Characterization of role of the toxR gene in the physiology and pathogenicity of Vibrio alginolyticus[J].Antonie Van Leeuwenhoek,2012,101(2):281-288.
[5]馬月姣,孫曉紅,趙 勇,等.不同樣品副溶血性弧菌多樣性分析[J].江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué),2012,40(12):37-41.
[6]張 毅,王愛華,王貴春.EMA-LAMP方法快速檢測(cè)食源性副溶血性弧菌活細(xì)胞[J].江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué),2012,40(10):290-292.
[7]WILLIAMS J G,KUBELIK A R,LIVAK K J,et al.DNA polymorphisms amplified by arbitrary primers are useful as genetic markers[J].Nucl Acids Res,1990,18:6531-6535.
[8]JOHN W E,MICHAEL M C.Fingerprinting genomes using PCR with arbitrary primers[J].Oxford Journals Life Sciences Nucleic Acids Research,1990,18(24):7213-7218.
[9]YANG Z Q,JIAO X A,ZHOU X H,et al.Isolation and molecular characterization of Vibrio parahaemolyticus from fresh,low-temperature preserved,dried,and salted seafood products in two coastal areas of eastern China[J].International Journal of Food Microbiology,2008,125(3):279-285.
[10]江 曉,任春華,胡超群.分子分型技術(shù)在弧菌研究中的應(yīng)用進(jìn)展[J].海洋科學(xué)進(jìn)展,2010,28(4):563-568.
[11]NILIMA P M,BASANTA K D,JVOTIRMAVEE P,et al.RAPDPCR and outer membrane protein characterization of Vibrio alginolyticus and Vibrio parahaemolyticus isolated from diseased shrimp[J].The Israeli Journal of Aquaculture-Bamidgeh,2012,64:1-8.
[12]SUDHEESH P S,KONG J,XU H S.Random amplified polymorphic DNA-PCR typing of Vibrio parahaemolyticus and V.alginolyticus isolated from cultured shrimps[J].Aquaculture,2002,207:11-17.
[13]高 璐,杭 莉,楊振泉,等.江蘇省部分地區(qū)淡水產(chǎn)品中弧菌菌群及其致病性分析[J].人獸共患病學(xué)報(bào),2013,29(2):142-147.