曾洋 黃建華 孫偉 馬方勵 夏世金
腎陽又被稱為元陽,在機體功能調(diào)節(jié)中占有重要的地位。腎陽虛證是指由于腎陽虛衰、溫煦失職、氣化失權(quán)所表現(xiàn)的一類虛寒證候。腎陽虛的現(xiàn)代研究發(fā)現(xiàn)腎陽虛患者特異性具有腎上腺皮質(zhì)功能或儲備功能低下,補腎陽藥可對腎陽虛患者下丘腦-垂體-腎上腺皮質(zhì)(HPA)軸功能進行調(diào)節(jié),我們以往的研究以及其他報道顯示補腎陽升高血漿皮質(zhì)酮水平[1-3],為深入研究其機制,本研究組首先采用基因芯片在全基因組范圍內(nèi)篩選補腎陽藥物作用后的差異表達基因,發(fā)現(xiàn)補腎陽藥能提高多個類固醇合成酶的mRNA 表達,對此進一步用實驗驗證,現(xiàn)將結(jié)果報道如下。
1.1 主要試劑及儀器 自擬補腎陽復(fù)方(由巴戟天、枸杞、桂枝組成)粉末由無限極中國有限公司提供,組成比例為5 ∶4 ∶1。皮質(zhì)酮購自Sigma 公司;類固醇合成酶免試劑盒購自Caymen 公司。
1.2 動物分組及一般處理 30 只雄性SD 大鼠,體質(zhì)量(200 ±6)g,隨機分為對照組、模型組、自擬補腎陽復(fù)方組(復(fù)方組),每組10 只。動物先適應(yīng)喂養(yǎng)5 d,模型組、復(fù)方組第6 天開始給予10 mg/kg 皮下注射皮質(zhì)酮,對照組以等體積滅菌橄欖油代替皮質(zhì)酮注射。另外復(fù)方組將自擬補腎陽復(fù)方粉末混懸于生理鹽水,并按292 mg/(kg·d)灌胃;對照組和模型組等體積生理鹽水灌胃。
1.3 血漿皮質(zhì)酮和促腎上腺皮質(zhì)激素(ACTH)濃度檢測 實驗結(jié)束,取血漿,采用ELISA 方法檢測,具體方法按Caymen 公司試劑盒說明。取樣品10 μl,加40 μl 緩沖液(稀釋5 倍),除空白孔,每孔加入50 μl Tracer 和50 μl 一抗。室溫(23 ℃),在搖床上孵育2 h,孵育完畢洗板5 次。每孔加入200 μl Ellman's Reagent,避光,在搖床上孵育75 min,孵育完畢,用酶標(biāo)儀在412 nm 波長,讀取OD 值,計算濃度。
1.4 基因芯片檢測 實驗結(jié)束,取腎上腺,提取總RNA,NanoDrop ND-1000 測定濃度,標(biāo)準(zhǔn)變性瓊脂糖凝膠電泳檢測RNA 的完整性。每個樣本取5 μg 總RNA 用于標(biāo)記和微陣列雜交。用Invitrogen Superscript ds-cDNA synthesis kit 進行逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)。用NimbleGen one-color DNA labeling kit 進行ds-cDNA 標(biāo)記。用NimbleGen hybridization system 進行微陣列雜交,用NimbleGen wash buffer kit 進行洗滌。用Axon GenePix 4000B microarray 掃描儀(Molecular Devices Corporation)進行陣列掃描。掃描圖像(TIFF 格式)導(dǎo)入到NimbleScan 軟件(2.5 版)進行柵格匹配和數(shù)據(jù)分析。原始數(shù)據(jù)采用百分位數(shù)法進行歸一化,并形成探針?biāo)叫盘枏姸群突蛩叫盘枏姸?。基因水平信號強度?dǎo)入Agilent GeneSpring GX 軟件(11.5.1 版)進行進一步分析。差異表達基因經(jīng)t 檢驗,P <0.05 篩選。信號通路、gene ontology 分析采用DAVID 在線程序。1.5 蛋白印跡 實驗結(jié)束,取腎上腺,稱重,計算腎上腺質(zhì)量指數(shù)(腎上腺質(zhì)量/體質(zhì)量)。然后稱取20 mg,加入細胞裂解液100 μl(含PMSF 1 mmol/L),勻漿,冰上靜置5 min,1300 r/min 離心5 min,取上清,采用BCA 法檢測蛋白濃度。按試劑盒說明書配制12%SDS-PAGE 分離膠,配5%濃縮膠,每孔加樣總蛋白量為35 μg,70 V 恒壓電泳2 h,11 V 恒壓轉(zhuǎn)膜過夜,取出印記膜,室溫封閉1 h,用一抗稀釋液按1 ∶200 稀釋一抗,室溫孵育1 h,二抗稀釋液按1 ∶5000 稀釋二抗,室溫孵育1 h 后,洗滌,按說明書加入ECL 化學(xué)發(fā)光液,室溫孵育3 min,去除過量的溶液,將膜夾在兩塑料薄膜之間,以X 光膠片曝光。
1.6 統(tǒng)計學(xué)分析 除基因表達數(shù)據(jù),其他數(shù)據(jù)均采用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示,采用SPSS 15.0 for windows 軟件包對樣本進行單因素方差分析,P <0.05 為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
2.1 3 組大鼠體質(zhì)量變化比較 在造模前,各組大鼠體質(zhì)量差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P >0.05);在造模第7 天時,模型組大鼠體質(zhì)量與對照組比較差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P <0.01)。復(fù)方組體質(zhì)量與模型組比較明顯升高(P <0.01),差異有統(tǒng)計學(xué)意義,但與對照組比較沒有統(tǒng)計學(xué)差異(P >0.05)。造模第14 天時,模型組和復(fù)方組體質(zhì)量與對照組比較顯著降低(P <0.05 或P <0.01),復(fù)方組與模型組比較,則顯著升高(P <0.05)。見表1。
表1 3 組大鼠體質(zhì)量變化比較(±s,g,n=10)
表1 3 組大鼠體質(zhì)量變化比較(±s,g,n=10)
注:與對照組比較,* P <0.05,**P <0.01;與模型組比較,△P <0.05,△△P <0.01
組別造模前造模第7 天造模第14天203.50 ±3.34305.75 ±7.21337.75 ±6.54模型組200.25 ±3.28266.00 ±10.80**303.50 ±14.13**復(fù)方組199.45 ±3.52295.50 ±8.35△△320.00 ±10.15對照組*△
2.2 3 組大鼠腎上腺質(zhì)量及腎上腺質(zhì)量指數(shù)比較模型組及復(fù)方組大鼠腎上腺質(zhì)量較對照組明顯下降(P<0.01),復(fù)方組較模型組明顯升高(P <0.05)。3 組間大鼠腎上腺質(zhì)量指數(shù)差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P >0.05)。見表2。
2.3 3 組大鼠血漿皮質(zhì)酮、ACTH 水平的比較 與對照組比較,模型組血漿皮質(zhì)酮和ACTH 顯著降低(P <0.01)。與模型組比較,復(fù)方組血漿皮質(zhì)酮和ACTH含量顯著升高(P <0.05)。見表2。
表2 3 組大鼠腎上腺質(zhì)量及指數(shù)、血漿皮質(zhì)酮及ACTH 濃度變化比較(±s,n=10)
表2 3 組大鼠腎上腺質(zhì)量及指數(shù)、血漿皮質(zhì)酮及ACTH 濃度變化比較(±s,n=10)
注:與對照組比較,**P <0.01;與模型組比較,△P <0.05
組別腎上腺質(zhì)量(mg)腎上腺質(zhì)量指數(shù)血漿皮質(zhì)酮濃度(ng/ml)ACTH(ng/ml)對照組49.63 ±6.000.15 ±0.0216.22 ±5.37324.46 ±132.92模型組28.88 ±9.45**0.10 ±0.035.50 ±4.25**150.25 ±60.54**復(fù)方組35.57 ±7.53**△0.11 ±0.0211.40 ±6.34△330.57 ±224.05△
2.4 基因芯片結(jié)果
2.4.1 差異基因情況:所有差異表達基因均為差異調(diào)節(jié)2 倍以上,組間比較差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P <0.01)。模型組與對照組比較,1098 個基因上調(diào);補腎復(fù)方作用后,共有1135 個基因下調(diào),其中模型組上調(diào)的基因表達被逆轉(zhuǎn)的有735 個。模型組與對照組比較,603 個基因下調(diào);補腎復(fù)方作用之后,共有477 個基因上調(diào),其中模型組下調(diào)的基因表達被逆轉(zhuǎn)的有93 個。這些基因組間的基因表達模式被明顯逆轉(zhuǎn)。
2.4.2 被補腎復(fù)方逆轉(zhuǎn)的基因信號通路分析:為進一步探索保護HPA 軸的功能,我們對被補腎陽復(fù)方逆轉(zhuǎn)的828 個基因進行了信號通路分析。結(jié)果發(fā)現(xiàn)在被補腎復(fù)方調(diào)節(jié)的基因富集的信號通路中,有2 個引起了我們的重視:MAPK 信號通路和類固醇合成通路。見表3。
表3 補腎復(fù)方逆轉(zhuǎn)的基因富集的信號通路
2.5 補腎陽復(fù)方提高類固醇合成酶蛋白表達 各組動物HSD11B1、CYP7A1 蛋白印跡實驗顯示,模型組這2 種蛋白表達降低,而自擬補腎陽復(fù)方作用后,HSD11B1 的表達水平明顯升高,但對CYP7A1 表達的上調(diào)作用不明顯。見圖1。
大劑量糖皮質(zhì)激素長期應(yīng)用對機體多方面產(chǎn)生藥理效應(yīng),如激活肝臟糖原分解酶使糖原分解加速,血糖升高;激活脂肪分解酶使脂肪分解加速,血脂升高;與淋巴細胞中糖皮質(zhì)激素受體(GR)結(jié)合,發(fā)揮抗炎癥的效應(yīng),誘導(dǎo)淋巴細胞凋亡[4-5]。超過一定量的血漿糖皮質(zhì)激素水平也通過負(fù)反饋抑制下丘腦促腎上腺皮質(zhì)激素釋放激素(CRH)分泌,進而抑制垂體ACTH 分泌,導(dǎo)致機體內(nèi)腎上腺自身分泌糖皮質(zhì)激素長期減少,并且長期大劑量糖皮質(zhì)激素的反饋抑制使HPA 軸發(fā)生形態(tài)學(xué)改變,如下丘腦CRH 神經(jīng)元減少,腎上腺皮質(zhì)細胞凋亡及腎上腺萎縮[6-7],高水平的糖皮質(zhì)激素還會引起免疫系統(tǒng)的抑制和胸腺淋巴細胞凋亡[8]。
圖1 補腎陽復(fù)方對有關(guān)類固醇合成酶表達的作用
國際上已有研究探索如何促進HPA 軸恢復(fù),但仍未取得成功。Markowska 等[9]報道一個十肽Pneumadin(PNM),通過促進精氨酸加壓素(AVP)和ACTH 的釋放,防止腎上腺皮質(zhì)細胞數(shù)量和體積的減少,可增加腎上腺組織皮質(zhì)酮和醛固酮的含量,但不能引起2 種激素血漿水平的變化。Maces 等[10]在應(yīng)用地塞米松后的抑郁患者中發(fā)現(xiàn)5-羥色胺1A 受體興奮劑丁螺旋酮能升高血漿ACTH 和可的松濃度,并提出丁螺旋酮通過促進ACTH 合成和釋放使應(yīng)用地塞米松后的抑郁患者免于HPA 抑制,但作為抗抑郁藥,丁螺旋酮能否用于其他HPA 軸受抑情況還沒有相關(guān)報道。本研究中,我們觀察到補腎陽復(fù)方能升高模型鼠腎上腺質(zhì)量、升高血漿皮質(zhì)酮的水平,提示具有提高HPA 軸功能的作用。
本研究我們采用基因表達譜對補腎陽復(fù)方保護腎上腺皮質(zhì)功能的機制進行了初步探索,結(jié)果發(fā)現(xiàn)在皮質(zhì)酮造成的基因表達改變中,補腎復(fù)方逆轉(zhuǎn)了828 個,包括在模型組上調(diào),后被補腎陽復(fù)方下調(diào)的;也包括在模型組下調(diào),后被補腎陽不放上調(diào)的。我們認(rèn)為這些基因可能是補腎陽復(fù)方發(fā)揮作用的候選基因。信號通路分析結(jié)果有2 條通路引起了重視,一是MAPK 信號通路,有11 個基因?qū)儆谠撏?,特別是其中的FGFs,研究表明對腎上腺皮質(zhì)的再生起著關(guān)鍵作用[11],該通路上調(diào)為實驗中觀察到補腎陽復(fù)方能提高腎上腺質(zhì)量的結(jié)果可能提供了一種解釋。另外一條通路是類固醇合成通路,共有6 個基因被上調(diào),均是皮質(zhì)酮生物合成中的各種酶,因此我們進一步采用western blot 檢測HSD11B1、CYP7A1 蛋白的表達,發(fā)現(xiàn)補腎陽復(fù)方對HSD11B1 蛋白表達確有提高作用,這一結(jié)果為補腎陽復(fù)方升高血漿皮質(zhì)酮水平提供了部分解釋。
在實驗中,我們還觀察到補腎陽復(fù)方對動物體質(zhì)量均有明顯的保護作用。在造模第7 天時,造模組大鼠體質(zhì)量與對照組比較顯著下降,而補腎陽藥物治療組體質(zhì)量與正常對照組比較差異無統(tǒng)計學(xué)意義,表現(xiàn)了對皮質(zhì)酮大鼠體質(zhì)量具完全保護作用。造模第14天,我們也發(fā)現(xiàn)對大鼠體質(zhì)量具有保護作用,這些在器官水平的結(jié)果提示補腎陽藥物不僅對HPA 軸,而且對糖皮質(zhì)激素造成的過度分解代謝狀態(tài)具有保護作用。關(guān)于拮抗糖皮質(zhì)激素促分解代謝的不良反應(yīng),國外有一些研究報道[12-13],補腎陽中藥在這些方面表現(xiàn)了顯著效果,其具體機制值得深入研究。
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