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        弱后酸化保加利亞乳桿菌突變株與親本菌株H+-ATPase基因的相似性比較

        2013-07-17 02:21:08焦月華郭文奎谷春濤霍貴成
        食品工業(yè)科技 2013年15期
        關(guān)鍵詞:亞種親本相似性

        劉 飛,焦月華,郭文奎,于 微,谷春濤,霍貴成,*

        (1.東北農(nóng)業(yè)大學(xué),乳品科學(xué)教育部重點實驗室,黑龍江哈爾濱 150030;2.黑龍江省中醫(yī)藥大學(xué),藥物安全性評價中心,黑龍江哈爾濱 150040)

        酸奶作為一種具有益生作用的乳制品,已經(jīng)普遍被消費者認可。但是由于酸奶正常發(fā)酵結(jié)束后,在產(chǎn)品貯存、運輸、銷售這一過程會發(fā)生后酸化,出現(xiàn)消費者不可接受的過酸味及感官品質(zhì)下降,影響酸奶的保質(zhì)期[1]。德氏乳桿菌保加利亞亞種(Lactobacillus delbrueckii subsp.bulgaricus)能夠在酸奶產(chǎn)品中繼續(xù)生長,并發(fā)酵乳糖產(chǎn)酸導(dǎo)致酸奶發(fā)生后酸化,它具有較強的耐酸性,當外界環(huán)境中pH降低時,其質(zhì)膜 H+-ATPase(F1F0-ATPase)能通過水解ATP提供的能量將細胞內(nèi)的質(zhì)子泵出胞外,形成跨膜的pH梯度差,使細胞內(nèi)pH維持在近中性,代謝酶的活力不受影響[2]。直至環(huán)境中pH3.5時,跨膜pH梯度差才不存在,細胞內(nèi)呈酸性,新陳代謝活動開始受到抑制[3-4]。然而,理想酸奶產(chǎn)品的 pH4.2 左右。F1F0-ATPase,是由F0和F1亞基組成,其中嵌入細胞膜中的F0亞基是一個通道蛋白,具有質(zhì)子轉(zhuǎn)運活性,而當結(jié)合在細胞膜內(nèi)表面的F1亞基被從膜中釋放出來后就具有 ATPase 活性[5-6]。許多研究者發(fā)現(xiàn),乳酸菌的H+-ATPase能夠在其自身細胞內(nèi)pH的調(diào)控過程中發(fā)揮主要作用,是乳酸菌維持其細胞內(nèi)環(huán)境pH穩(wěn)定必不可少的因素。Kobayashi等首先發(fā)現(xiàn)了一株糞腸球菌(Enterococcus faecalis)的突變體失去了調(diào)控其自身胞內(nèi)環(huán)境pH的能力,隨后他對這株突變菌株進行了一系列的研究,結(jié)果發(fā)現(xiàn)導(dǎo)致突變菌株產(chǎn)生這種表型的原因是由于其胞內(nèi)的H+-ATPase的活性較低[7]。Nannen 和 Hutkins[8]分別對一株嗜熱鏈球菌、乳酸乳球菌乳酸亞種、乳酸乳球菌乳亞種、干酪乳桿菌的H+-ATPase進行了研究,結(jié)果也表明H+-ATPase能夠調(diào)控細胞內(nèi)的pH,但是他們沒有在分子水平對H+-ATPase的調(diào)控機制進行深入的研究。Kullen 和 Klaenhammer[9]還 鑒 定 了 嗜 酸 乳 桿 菌(Lactobacillus acidophilus)中受pH誘導(dǎo)的F1F0-ATPase的操縱子,RT-PCR結(jié)果顯示嗜酸乳桿菌在低pH環(huán)境中生長時,不但atp基因的轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物會增加,而且細胞膜中 F1F0-ATPase活性也會增加。Amachi等[10]的 Northern 和 Western blot分析結(jié)果卻表明,Lactococcus lactis subsp.lactis C2和由它誘變得到的H+-ATPase缺陷的突變菌株 No.1016-51的ATPase的mRNA的豐度沒有明顯差異,他們推測這可能是因為突變菌株也具有一個正常調(diào)控ATPase基因表達的系統(tǒng),但是由于編碼ATPase的結(jié)構(gòu)基因的缺陷導(dǎo)致了突變菌株表達的ATPase的特異活性比親本的低,遺憾的是他們并沒有通過測序來驗證親本和突變菌株H+-ATPase編碼基因是否的確發(fā)生了突變。Ongol等[11]的研究也表明 H+-ATPase缺陷的突變株德氏乳桿菌保加利亞亞種SBT0164 No.55-1的H+-ATPase活性的降低是導(dǎo)致其不能夠在pH為4.5的MRS培養(yǎng)基中繼續(xù)生長的原因,但是他們并沒有利用分子生物學(xué)技術(shù)在基因水平或者轉(zhuǎn)錄水平對突變菌株的 H+-ATPase進行分析。因此,H+-ATPase缺陷的突變株對H+-ATPase活性的調(diào)控到底是由于編碼基因的突變引起的,還是菌體細胞在轉(zhuǎn)錄水平或者翻譯時進行調(diào)控還有待進一步的研究。針對這一問題,在本研究中,以通過誘變育種得到的具有弱后酸化能力的H+-ATPase缺陷的德氏乳桿菌保加利亞亞種菌株 KLDS 1.9201-11和親本菌株KLDS 1.9201 為研究對象[12],分別擴增它們 H+-ATPase的編碼基因,并用DNAMAN軟件比較它們之間的相似性,為闡明乳酸菌H+-ATPase的調(diào)控機制提供理論依據(jù),并為最終開發(fā)弱后酸化的酸奶發(fā)酵劑奠定基礎(chǔ)。

        1 材料與方法

        1.1 材料與儀器

        德氏乳桿菌保加利亞亞種(Lactobacillus delbrueckii subsp.bulgaricus)KLDS 1.9201和KLDS 1.9201-11 東北農(nóng)業(yè)大學(xué)乳品科學(xué)教育部重點實驗室菌種庫(DICC)保藏菌種;rTaq酶、dNTP、Pfu、RNase A、DNA Marker DL2000 寶生物工程有限公司;細菌基因組DNA提取試劑盒和溶菌酶 天根生化科技有限公司。

        臺式高速離心機AnkeTGL-16C 上海安亭科學(xué)儀器廠;凝膠成像UVP 美國Thermo公司;紫外分光光度計DU-800 Beckman Coulter公司;電泳儀DYY-10C型 北京六一儀器廠;Gene Amp PCR System 9700 美國ABI公司。

        1.2 實驗方法

        1.2.1 基因組DNA的提取 應(yīng)用天根公司的基因組提取試劑盒提取細菌基因組DNA,所提取的基因組DNA為后續(xù)PCR擴增實驗所用,按照試劑盒說明書操作。

        1.2.2 基因組DNA的電泳鑒定 取3μL收集的基因組DNA溶液,用質(zhì)量分數(shù)為1.5%的瓊脂糖進行凝膠電泳,經(jīng)EB染色,紫外燈下觀察基因組條帶的純度和完整性。

        1.2.3 H+-ATPase編碼基因的 PCR擴增 查找Genebank中的德氏乳桿菌保加利亞亞種的基因組信息,發(fā)現(xiàn)德氏乳桿菌保加利亞亞種ATCC 11842的H+-transporting ATPase/ATP synthase共有8個亞基,分別為 A、B、C、alpha、beta、gamma、epsilon 和 delta,對應(yīng)的編碼基因分別為 atpB、atpF、atpE、atpA、atpD、atpG、atpC、atpH。由于其中 atpB 和 atpE、atpF 和atpH基因在基因組上相鄰。因此分別利用6個PCR反應(yīng)擴增H+-ATPase基因的全序列和H+-ATPase基因的調(diào)控序列,使用Primer Premier 5.0設(shè)計擴增引物,使用oligo 6.0對引物進行評估,然后由上海生工合成。PCR反應(yīng)體系如下:滅菌ddH2O,37μL;10×Buffer,5μL;dNTP,4μL;基因組 DNA,1μL;上游引物,1μL;下游引物,1μL;Pfu(1U/μL),1μL。PCR 反應(yīng)條件如下:94℃ 5min;94℃ 1min,55℃ 1min,72℃2min,共30個循環(huán);72℃ 10min;之后4℃恒溫。PCR反應(yīng)中所用的引物見表1。

        1.2.4 PCR產(chǎn)物的電泳鑒定 PCR擴增結(jié)束后,取5μL擴增產(chǎn)物,用質(zhì)量分數(shù)為1.5%瓊脂糖進行凝膠電泳,經(jīng)EB染色,紫外燈下觀察擴增條帶。

        1.2.5 PCR產(chǎn)物的測序 PCR產(chǎn)物送交上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司純化后測序。

        1.2.6 H+-ATPase編碼基因的相似性比較 利用DNAMAN軟件比較親本和突變菌株的H+-ATPase各亞基編碼基因和調(diào)控基因的相似性。

        2 結(jié)果與討論

        2.1 基因組的電泳結(jié)果

        采用天根公司的細菌基因組DNA提取試劑盒提取 KLDS 1.9201和 KLDS 1.9201-11的基因組DNA,1.5%的瓊脂糖凝膠電泳結(jié)果見圖1。

        由圖1可知,利用試劑盒提取的KLDS 1.9201和KLDS 1.9201-11的基因組DNA的純度很高,紫外分光光度計測定結(jié)果表明OD260/OD280=1.81、OD260/OD230=2.28,因此可知提取的基因組DNA沒有RNA、蛋白和鹽類物質(zhì)的污染,可以直接用于PCR擴增H+-ATPase

        表1 PCR反應(yīng)引物Table1 Primers of PCR

        圖1 KLDS1.9201和KLDS1.9201-11的基因組Fig.1 Genome of KLDS1.9201 and KLDS1.9201-11

        2.2 H+-ATPase編碼基因的擴增結(jié)果

        以達到純度和濃度標準的KLDS 1.9201和KLDS 1.9201-11基因組DNA為模板,特異引物擴增atpA、atpD、atpG、atpC、atpB 和 atpE、atpF 和 atpH 基因,擴增結(jié)果如下。

        由圖2可知,第1和泳道分別為KLDS1.9201和KLDS1.9201-11中atpB和atpE基因的PCR產(chǎn)物,條帶清晰,且無非特異性條帶出現(xiàn)。

        圖2 KLDS1.9201和 KLDS1.9201-11atpB和atpE基因的PCR產(chǎn)物Fig.2 PCR product of atpB and atpE in KLDS1.9201 and KLDS1.9201-11

        由圖3可知,第1和2泳道分別為KLDS1.9201和KLDS1.9201-11中 atpF和 atpH基因的PCR產(chǎn)物,條帶清晰,且無非特異性條帶出現(xiàn)。

        圖3 KLDS1.9201和 KLDS1.9201-11 atpF和atpH基因的PCR產(chǎn)物Fig.3 PCR product of atpF and atpH in KLDS1.9201 and KLDS1.9201-11

        由圖4可知,第1和2泳道分別為KLDS1.9201和KLDS1.9201-11中atpA基因的PCR產(chǎn)物,條帶清晰,而且無非特異性條帶出現(xiàn)。

        圖4 KLDS1.9201和KLDS1.9201-11atpA基因的PCR產(chǎn)物Fig.4 PCR product of atpA in KLDS1.9201 and KLDS1.9201-11

        由圖5可知,第1和2泳道分別為KLDS1.9201和KLDS1.9201-11中atpG基因的PCR產(chǎn)物,條帶清晰,而且無非特異性條帶出現(xiàn)。

        由圖6可知,第1和2泳道分別為KLDS1.9201和KLDS1.9201-11中atpD基因的PCR產(chǎn)物,條帶清晰,而且無非特異性條帶出現(xiàn)。

        由圖7可知,第1和2泳道分別為KLDS1.9201和KLDS1.9201-11中atpC基因的PCR產(chǎn)物,條帶清晰,且無非特異性條帶出現(xiàn)。在本研究中,根據(jù)GeneBank中德氏乳桿菌保加利亞亞種ATCC11842的全基因組序列中,編碼 H+-transporting ATPase/ATP synthase的序列為模板一共設(shè)計了6對引物,使用PCR分別擴增了KLDS 1.9201和KLDS 1.9201-11的H+-transporting ATPase/ATP synthase的8個亞基A、B、C、alpha、beta、gamma、epsilon 和 delta 的編碼基因 atpB、atpF、atpE、atpA、atpD、atpG、atpC、atpH 全序列。由于本實驗需要比較親本和突變菌株 H+-transporting ATPase/ATP synthase編碼基因的相似性,因此在PCR擴增的過程中需要使用高保真的Pfu DNA聚合酶,從而將堿基錯配的誤差降低到最小程度。

        圖5 KLDS1.9201和 KLDS1.9201-11中atpG基因的PCR產(chǎn)物Fig.5 PCR product of atpG in KLDS1.9201 and KLDS1.9201-11

        圖6 KLDS1.9201和 KLDS1.9201-11中atpD基因的PCR產(chǎn)物Fig.6 PCR product of atpD in KLDS1.9201 and KLDS1.9201-11

        2.3 親本和突變菌株H+-ATPase編碼基因的相似性比較

        圖7 KLDS1.9201和KLDS1.9201-11中atpC基因的PCR產(chǎn)物Fig.7 PCR product of atpC in KLDS1.9201 and KLDS1.9201-11

        利用DNAMAN軟件,對 KLDS 1.9201和 KLDS 1.9201-11的H+-ATPase編碼序列之間的相似性進行了比較,結(jié)果發(fā)現(xiàn)它們 H+-transporting ATPase/ATP synthase的8 個亞基 A、B、C、alpha、beta、gamma、epsilon和 delta的編碼基因 atpB、atpF、atpE、atpA、atpD、atpG、atpC和atpH之間的序列相似性為100%,這說明突變菌株的 H+-transporting ATPase/ATP synthase的編碼序列并沒有發(fā)生突變,親本和突變菌株H+-ATPase活力之間的差異并不是由于它們的編碼基因發(fā)生了變化,親本和突變菌株的H+-ATPase酶蛋白的結(jié)構(gòu)是相同,而可能是由于H+-ATPase的表達量降低引起的。本研究還比較了KLDS 1.9201和德氏乳桿菌保加利亞亞種 ATCC11842的 H+-transporting ATPase/ATP synthase的編碼基因序列,結(jié)果表明atpB、atpA、atpC和atpD的相似性為100%,atpE、atpF分別有1個和2個核苷酸的差異,但是它們編碼的氨基酸沒有發(fā)生變化,atpH和atpG分別有1個和2個核苷酸的差異,而且編碼的氨基酸也發(fā)生了變化。但是總的來說H+-transporting ATPase/ATP synthase的編碼基因序列還是非常的保守,本實驗中突變菌株的H+-transporting ATPase/ATP synthase的編碼序列并沒有發(fā)生突變也進一步說明了此基因序列的高度保守性,因此,H+-ATPase缺陷菌株活力的降低并不是由于結(jié)構(gòu)基因發(fā)生了突變,極有可能是由于轉(zhuǎn)錄水平的降低引起的,需要利用更先進的熒光定量PCR技術(shù)來進行進一步的分析,從而闡明H+-ATPase的調(diào)控機制。

        3 結(jié)論

        同親本菌株KLDS 1.9201相比,突變菌株KLDS 1.9201-11的 H+-ATPase活性的降低并不是由于H+-ATPase編碼基因發(fā)生了突變導(dǎo)致表達的 H+-ATPase蛋白的結(jié)構(gòu)發(fā)生了變化,從而導(dǎo)致酶活性的降低,而可能是由于H+-ATPase的表達量降低引起的,需要進行qRT-PCR檢測,因此本研究為進一步確定乳酸菌H+-ATPase的調(diào)控機制奠定了基礎(chǔ)。

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