金鳳燮, 魚紅閃, 孫長(zhǎng)凱, 蘆明春, 劉春瑩, 張春枝, 徐龍權(quán)
(1.大連工業(yè)大學(xué)生物工程學(xué)院,遼寧大連 116034;2.大連醫(yī)科大學(xué)腦疾病研究所,遼寧大連 116044)
我國(guó)中草藥植物有萬(wàn)余種,但其中少部分只用于藥,大部分用于公眾營(yíng)養(yǎng)和保健食品,用于化妝品以及日用化學(xué)制品——牙膏甚至色素和墨水等.這些植物的天然活性成分種類繁多,超過(guò)6萬(wàn)余種,可歸納為幾大類:配糖體類(包括三萜皂苷和甾醇皂苷)、黃酮類、醌類、苯丙素類、生物堿類、鞣質(zhì)、酯類等[1].但是這些植物主要的天然成分與化學(xué)藥不同,化學(xué)藥口服后直接吸收,起藥效;而大部分主要的天然成分人體難吸收、活性低,口服后在消化系統(tǒng)內(nèi)轉(zhuǎn)化為另一種高活性結(jié)構(gòu),吸收起功效;而且人體內(nèi)這種轉(zhuǎn)化很弱,大部分很難利用[2-3].因此,在體外改變低活性、難吸收的天然成分,制備高活性、易吸收的有效成分,對(duì)公眾營(yíng)養(yǎng)食品、功能食品和化妝品、日化產(chǎn)品以及中草藥行業(yè)技術(shù)升級(jí)意義巨大.
改變植物天然活性成分結(jié)構(gòu),生物轉(zhuǎn)化是很有效的方法.然而,其種類繁多,結(jié)構(gòu)復(fù)雜,現(xiàn)有的微生物和酶解決不了中草藥天然成分的生物轉(zhuǎn)化,必須開發(fā)許多新微生物和新酶類,才能解決天然成分轉(zhuǎn)化制備易吸收、高活性成分的問(wèn)題.
為此,為了得到易吸收、高活性的天然有效成分,本文篩選一批新微生物,發(fā)現(xiàn)一批新型特異的天然成分轉(zhuǎn)化酶,研究了其特性和應(yīng)用開發(fā).
為了得到易吸收、高活性的天然有效成分,從土壤、人參地、森林地,篩選一批新微生物,確認(rèn)新篩選菌的產(chǎn)酶和天然成分的轉(zhuǎn)化功能,其中有用的菌進(jìn)行分類鑒定,確定其新微生物的屬名和種名.
土壤中的大部分微生物處于休眠狀態(tài)、或者目的微生物數(shù)量很低,因此本文采用兩種方法篩選微生物:富集培養(yǎng)4~5代后分離單菌落;另一種方法是,將土壤樣品稀釋、涂鋪在低營(yíng)養(yǎng)的培養(yǎng)皿的固體培養(yǎng)基上、長(zhǎng)時(shí)間培養(yǎng)(培養(yǎng)1~3個(gè)月)方法,得到單菌落.為了保險(xiǎn)起見,所得到的單菌落在培養(yǎng)皿的固體培養(yǎng)基重新分離單菌落,測(cè)定其16S rRNA基因序列,與在 NCBI(http:∥www.ncbi.nlm.nih.gov/)的基因庫(kù)(GenBank)上所登錄的已知菌比較;共篩選了與已知菌的16S rRNA基因序列同源性90%以下的菌有25種,90% ~95%的有43種,95%~97%的50種,97% ~98%的50種的新篩選菌.
一般地來(lái)說(shuō),16S rRNA基因序列同源性(相似度)為95%以下的菌,直接能確定為新屬(new genus)微生物,同源性在95% ~97%的菌,直接能確定為新種(new species),同源性97% ~99%的菌,借助分子雜交判斷是否新菌,堿基序列與已知菌基本不配對(duì)的為新菌.
因此,篩選了16S rRNA基因與已知菌相差較大的百余種菌,為篩選天然成分轉(zhuǎn)化酶,提供新微生物資源.
上述新篩選微生物,隨培養(yǎng)基不同、誘導(dǎo)物不同,所產(chǎn)的天然成分轉(zhuǎn)化酶的種類也不同.上述新篩選的菌種中,選擇16S rRNA基因同源性在Gen-Bank庫(kù)中所登錄的已知菌相差較大的,如下20種菌株,研究了產(chǎn)中草藥組分水解酶的功能.
如20種菌株分別在1%的Trypton/L,0.5%的酵母膏,1%的NaCl和0.02%人參提取物的培養(yǎng)基中培養(yǎng),與人參皂苷Rb1反應(yīng).其結(jié)果如TLC圖1.
巷道礦壓顯現(xiàn)特征為空間尺度上頂板離層變化大、變化快且各層位離層均較大,表面煤巖快速碎脹并向深部擴(kuò)展。時(shí)間尺度為在開挖的過(guò)程及開挖后段時(shí)間內(nèi)變形最快,變形劇烈階段為開挖開始至距離掘進(jìn)工作面30~50 m;后期出現(xiàn)持續(xù)的蠕變和不連續(xù)變形,表現(xiàn)為整體位移持續(xù)增大、頂板離層繼續(xù)增加、表面碎脹逐漸發(fā)展等。
圖1 20種菌株發(fā)酵液對(duì)人參皂苷Rb1的水解Fig.1 Twenty kinds of strains on hydrolysis of ginsenoside Rb1
從圖 1 中可以看到:1,3,9,10,14,18 號(hào)菌,明顯水解人參皂苷 Rb1;而且15,16,17,20號(hào)菌也水解人參皂苷Rb1,說(shuō)明這些菌,都產(chǎn)人參皂苷酶.
相同的方法,改變菌和培養(yǎng)基、產(chǎn)酶誘導(dǎo)物的方法,可以確認(rèn)其他新菌的天然成分轉(zhuǎn)化功能的產(chǎn)酶菌.其中選擇有特色、有用的菌,進(jìn)行分類鑒定,確定新菌.
上述新篩選菌中,選擇高產(chǎn)中草藥成分酶的有用菌,按照國(guó)際上規(guī)定的新菌分類鑒定方法,確定其微生物屬和種;發(fā)表在國(guó)際微生物協(xié)會(huì)新菌刊物Int.J.Syst.Evol.Microb(IJSEM)等國(guó)際微生物學(xué)刊物上,填補(bǔ)國(guó)際微生物學(xué)的新微生物.
例如,作者課題組與韓國(guó)KAIST的林完澤博士,共同研究了從人參土壤中分離篩選的新細(xì)菌Gsoil 085T進(jìn)行分類鑒定.該菌的種系分析中提取DNA,其16S rRNA基因用PCR方法擴(kuò)充、分離提純其16S rRNA基因,其16S rRNA基因序列用SeqMan software(DNASTAR)測(cè)定的;結(jié)果是1463個(gè)堿基對(duì)組成;與基因庫(kù)(GenBank):利用 BLAST在 NCBI(http:∥www.ncbi.nlm.nih.gov)上登錄的菌上登錄的已知菌比較,該菌屬于細(xì)菌門(phylum Bacteroidetes)的 ‘Flexibacteraceae'科;相近的Emticicia oligotrophicaGPTSA100-15菌比較,16S rRNA的同源性只有94.6%;與‘Flexibacteraceae'科的其他菌相比較,16S rRNA的同源性為83.0%以下;DNA分子雜交結(jié)果,在16S rRNA基因水平上3.0%的基因序列不相同;在全基因水平上涉及70%序列不相同.該菌16S rRNA基因序列,在基因庫(kù)中查找新菌種所對(duì)應(yīng)的系統(tǒng)生物學(xué)位置,制作“鄰近菌的種系發(fā)生樹“Neighbour-joining phylogenetic tree”,在上述基礎(chǔ)上研究了該菌的分類學(xué)形態(tài)和生化特性.
該菌DNA的G+C含量為40.5%,革蘭氏陰性(Gram negative),絕對(duì)好氧(strictly aerobic),不運(yùn)動(dòng),不利用很多糖;細(xì)胞脂肪酸組成不同于相近的Emticicia oligotrophicaGPTSA100-15菌是新的Emticicia屬中一個(gè)新種,命名為Emticicia ginsengisolisp.nov..新發(fā)現(xiàn)的菌確定其屬名和種名,刊登在國(guó)際微生物協(xié)會(huì)新菌刊物Int J Syst Evol Microb等國(guó)際微生物學(xué)刊物上,增添國(guó)際微生物學(xué)的新菌.
本課題組分類鑒定的新菌為:Emticicia ginsengisolisp.nov.菌(Int J Syst Evol Microb,2008,58,1100-1105);Kaistia granulisp.Nov.菌(Int J Syst Evol Microb, 2007, 57:2280-2283);Hymenobacter daecheongensissp.nov. 菌(Int J Syst Evol Microb,2009, 59,331 -335);Spirosoma panaciterraesp.nov.菌(Int J Syst Evol Microb,2009,59,1183-1187);Terrabacter ginsenosidimutanssp.nov.菌(Appl Enviro Microb, 2010, 76,5827-5836);Phycicoccus ginsenosidimutanssp.nov.菌(Int J Syst Evol Microb, 2011, 61,524-528);Mucilaginibacter compostisp.nov. 菌(J Microb,2011,49,393398);Ramlibacter ginsenosidimutanssp.nov.菌(J Microbiol Biotechnol, 2012, 22:311-315)等;不僅增添國(guó)際微生物新菌,為篩選天然成分轉(zhuǎn)化酶,提供一批新微生物資源.
圖2 人參皂苷糖苷酶I型催化反應(yīng)Fig.2 Catalytic reaction of ginsenoside glucosidase I type
上述新微生物和重要的已知菌發(fā)酵,用離子交換柱、凝膠柱、分子篩等的分離方法,分離純化得到純的酶蛋白,其純酶與各種天然活性成分的單體分別反應(yīng),確定酶的催化反應(yīng),研究該酶的其他特性,然后與國(guó)際上已公布的酶相比較,確定是否為新酶.由此,發(fā)現(xiàn)了一批新的特異性天然活性成分轉(zhuǎn)化酶.
用上述方法,發(fā)現(xiàn)了一批皂苷酶;其中4種人參皂苷酶 I、II、III、IV 型,其酶分別如下.
人參皂苷糖苷酶I型[4],能水解人參二醇類皂苷 Rb1、Rb2、Rb3、Rc的(第 3 碳)3-O-的 β-(1→6)-葡萄糖苷鍵;水解(第20碳)20-O-位置的 β-(1→6)-葡萄糖苷鍵、α-(1→6)-阿拉伯糖苷鍵、β-(1→6)-木糖苷鍵和 3-碳(3-O-)上的 β-(1→2)-葡萄糖苷鍵等多種糖基,生成F2;F2進(jìn)一步水解成C-K以及皂苷元(PPD),其催化反應(yīng)如圖2.
人參皂苷糖苷酶II型[5],能水解人參二醇類皂苷 Rb1、Rb2、Rb3、Rc 的 20-O-位置的 β-(1→6)-葡萄糖苷鍵、α-(1→6)-阿拉伯糖苷鍵、β-(1→6)-木糖苷鍵等多種糖基,生成Rd和Rg3皂苷.
人參皂苷糖苷酶III型[6],能水解人參二醇類皂苷的3-O-位置的糖基.來(lái)源于霉菌的酶水解Rd的3-O-糖苷,生成C-K;基因重組酶III型(新發(fā)現(xiàn)菌T ginsenosidimutanssp.nov.的bgpA基因,克隆到E-.coli細(xì)胞中表達(dá)的得到的酶,736個(gè)氨基酸殘基,分子量81 kDa),水解3-O-位置的糖基:水解Rb1皂苷3-O-位置的糖基、逐步生成 Gyp17→Gyp75;同樣,Rb2變成C-O→C-Y;Rc變成C-McI→C-Mc;水解Rd的3-O-糖基、逐步變成F2→C-K皂苷,如圖3.
圖3 人參皂苷糖苷酶III型催化反應(yīng)Fig.3 Catalytic reaction of ginsenoside glucosidase III type
人參皂苷酶IV型[7-8],能水解人參三醇類皂苷Re、R1、Rf、Rg2 皂苷的 6-O-位置上的多種糖基,如圖4.
歸納人參皂苷酶特性,人參皂苷I型酶水解人參皂苷第3碳、第20碳上的糖基;人參皂苷II型酶水解人參皂苷第20碳上的多種糖基;人參皂苷III型酶水解人參皂苷第3碳上的糖基;人參皂苷IV型酶水解人參皂苷第6碳上的多種糖基,是新酶.
用上述方法,也發(fā)現(xiàn)一些其他皂苷酶:薯蕷(穿山龍)甾醇皂苷酶[9],能水解薯蕷皂苷3-碳(3-O-)上的α-(1→2)-鼠李糖苷鍵、α-(1→4)-鼠李糖苷鍵和β-葡萄糖苷鍵,其催化反應(yīng)如圖5所示.
柴胡皂苷酶[10],能水解柴胡皂苷的3-O-上的多種糖基;白頭翁皂苷酶,能水解白頭翁皂苷的3-O-和28-O-上多種糖基;還有黃芪、朱砂根和大豆皂苷酶等.
圖4 人參皂苷糖苷酶IV型催化反應(yīng)Fig.4 Catalytic reaction of ginsenoside glucosidase IV type
圖5 薯蕷(穿山龍)甾醇皂苷酶催化反應(yīng)Fig.5 Enzyme-catalyzed reactions of Yam(dioscorea)sterol saponins
上述皂苷酶的催化反應(yīng)共性為,對(duì)苷元種類和糖基位置選擇性高,對(duì)糖基種類(葡萄糖、阿拉伯糖、木糖、鼠李糖等種類)選擇性低,能水解葡萄糖、阿拉伯糖、木糖、鼠李糖等多種糖基;這與國(guó)際酶學(xué)上的160余種糖苷酶“一種酶水解一種糖基(糖苷鍵)”(NC-IUBMB in http:∥www.qmul.ac.uk/iubmb/enzyme)的普遍規(guī)律所不同,是一類特異性的新苷酶,增添了國(guó)際酶學(xué)的一批新的皂苷酶[11].
用上述方法發(fā)現(xiàn)一些其他天然成分轉(zhuǎn)化酶:水解蘆丁轉(zhuǎn)化為異槲皮素和槲皮素的蘆丁苷酶[12],黃芩苷轉(zhuǎn)化為抗艾滋病毒的黃芩苷酶,大豆異黃酮的苷酶,紅景天苷酶水解和合成酶[13],丹酚酸B轉(zhuǎn)化為丹參素和低聚丹酚酸的丹酚酸酶,制備高活性淫羊藿苷的淫羊藿苷酶;其中大豆異黃酮的苷酶的催化反應(yīng)如圖6.
圖6 大豆異黃酮苷酶催化反應(yīng)Fig.6 Catalytic reaction of soy isoflavones glycosidase
以上篩選了一批新的特異的天然成分轉(zhuǎn)化酶,為活性低、難吸收的天然成分轉(zhuǎn)化為高活性的有效成分,提供了一批新酶.
為了上述新的天然成分轉(zhuǎn)化酶的應(yīng)用,育種了一些天然成分轉(zhuǎn)化酶的生產(chǎn)菌;發(fā)現(xiàn)其酶在普通酶(淀粉、蛋白酶)發(fā)酵條件下不產(chǎn),只有在發(fā)酵環(huán)境和營(yíng)養(yǎng)惡劣條件下才產(chǎn)酶;建立了貧營(yíng)養(yǎng)極端發(fā)酵法、生產(chǎn)天然成分轉(zhuǎn)化酶類的方法.建立了從植物中提取天然成分轉(zhuǎn)化酶方法.發(fā)現(xiàn)上述新酶抗有機(jī)溶劑;建立了酶生產(chǎn)中,用無(wú)毒有機(jī)溶劑沉淀酶方法,分離酶和產(chǎn)物;建立酶不用固定化、重復(fù)使用方法.在此基礎(chǔ)上,利用天然成分轉(zhuǎn)化酶生產(chǎn)了高活性天然活性成分;生產(chǎn)了高活性單體成分、高活性組分、高活性成分含量高的中草藥和提取物;研究開發(fā)了高活性成分的公眾營(yíng)養(yǎng)食品、功能食品和化妝品.
1)酶轉(zhuǎn)化法生產(chǎn)高活性單體成分:如酶轉(zhuǎn)化法生產(chǎn)高活性單體皂苷C-K和F1的制備.人參皂苷C-K(Compound-K)在天然的人參中并不存在,是原人參二醇類皂苷(Rb1、Rb2、Rc、Rd 等)在人腸道內(nèi)代謝的末端產(chǎn)物,是人體吸收的結(jié)構(gòu),具有抗突變、抗過(guò)敏、抗搔癢、抗敗血病、抗糖尿病、抗癌、增強(qiáng)機(jī)體免疫力等作用,對(duì)保健食品、化妝品、人參藥物意義很大,但是尚無(wú)產(chǎn)業(yè)化大量生產(chǎn).同樣,F(xiàn)1皂苷在天然的人參中并不存在,是原人參三醇類皂苷(Re、R1、Rg1等)在人腸道內(nèi)代謝的產(chǎn)物,人體易吸收、具有保肝、益智等藥理和保健功能,其結(jié)構(gòu)如圖7.
圖7 人參皂苷C-K和F1的結(jié)構(gòu)Fig.7 Structure of ginsenoside C-K and F1
利用新發(fā)現(xiàn)的人參皂苷酶I型[4]和IV型[5],分別轉(zhuǎn)化生產(chǎn)高活性C-K和F1皂苷;其轉(zhuǎn)化率為70% ~90%;酶不用固定化,反應(yīng)后,重復(fù)使用,酶的回收率為70%~80%.
2)生物轉(zhuǎn)化法制備4種異構(gòu)體的Rg2組、Rg3組、Rh1組等紅參稀有皂苷群:如,Rg2組等由20(S)-Rg2、20(R)-Rg2、Rg6 和 Rg4(F4)等 4 種異構(gòu)體皂苷組成,Rg2組皂苷的結(jié)構(gòu)與組成,如圖8.
圖8 Rg2組產(chǎn)品皂苷結(jié)構(gòu)與組成的HPLCFig.8 Rg2 group saponins structure and HPLC of composition
紅參稀有皂苷Rg2組,Rg3組,Rh1組等,由于四種異構(gòu)體皂苷協(xié)同作用而比單體皂苷活性高,水中的溶解度高,更適合于開發(fā)人參制品、公眾營(yíng)養(yǎng)食品、化妝品和人參藥物.如紅參稀有皂苷Rg3組,20(S)-Rg3、20(R)-Rg3、Rk1和Rg5等4種異構(gòu)體協(xié)同作用,比Rg3皂苷單體,抗癌、抗血栓、調(diào)節(jié)胰島素活性提高較大.
本課題組與企業(yè)聯(lián)合,利用生物轉(zhuǎn)化法分別生產(chǎn),4種異構(gòu)體含量90%以上的Rg3組,Rg2組,Rh1組等;開發(fā)其應(yīng)用,用于公眾營(yíng)養(yǎng)食品、人參制品、化妝品等添加劑.生物酶轉(zhuǎn)化法,也生產(chǎn)了高活性白頭翁皂苷組、高活性大豆異黃酮等,正開發(fā)其制品.
3)利用中草藥植物本身含有的自身酶作用,在中藥加工過(guò)程中發(fā)揮自身酶的作用,制備高活性有效成分含量高的中藥或者提取物——活性中藥.也就是說(shuō),中藥加工過(guò)程中,有目的地發(fā)揮自身酶作用,提高活性有效成分的含量,改變了傳統(tǒng)的中藥加工的炮制和煎制等、傳統(tǒng)的盲目性的加工方法.
如人參植物中含有人參自身皂苷酶[14-15],在傳統(tǒng)紅參加工過(guò)程中激活人參自身皂苷酶,制備活性紅參;其活性紅參中的稀有皂苷 Rg3,Rg5,Rh2,Rh3,Rg2,Rg4,Rh1,Rh4 含量比傳統(tǒng)紅參提高十幾倍,同時(shí)人參中部分人上火成分Re,Rg1含量,降低到西洋參水平.
同樣,也制備了高活性成分含量高的黃芩、丹參等提取物,提取了高活性大豆異黃酮混合物.開發(fā)了其公眾營(yíng)養(yǎng)食品、功能化妝品.
總之,為了得到易吸收、高活性的天然有效成分,本文篩選了一批新微生物,發(fā)現(xiàn)了一批新型特異的天然成分轉(zhuǎn)化酶,開發(fā)了一批高活性的有效天然成分、高活性異構(gòu)體混合物和活性中藥,也開發(fā)了一些制品,也正在拓寬研發(fā)范圍.
[1] 金鳳燮.天然產(chǎn)物生物轉(zhuǎn)化[M].北京:化學(xué)工業(yè)出版社,2009:-33.
[2] Kobashi K.Glycosides are natural products-evidence using germ-free and gnotobioticrats associated with a human intestinal bacterium[J].J Trad Med, 1998,15:1-13.
[3] Tawab M A,Bahr U,Karas M,et al.Degradation of ginsenoside in humans after oral administration[J].Drug Metab Dispos, 2003, 31:1065-1071
[4] Yu H,Zhang C,Liu M,et al.Purification and characterization of ginsenosidase hydrolyzing malti-glycosides of protopanaxadiol ginsenoside,Ginsenoside Type I[J].Chem Pharm Bull, 2007, 55:231 -235.
[5] Yu H,Liu Q,Zhang C,et al.A new ginsenosidase from Aspergillus strain hydrolyzing 20-O-multi-glycoside of PPD ginsenoside[J].Process Biochem,2009,44:772-775.
[6] Jin X,Yu H,Wang M,et al.Kinetics of a cloned spe-cial ginsenosidase hydrolyzing 3-O-glucoside of multi-protopanaxadiol-type ginsenosides,named ginsenosidase type III[J].J Microbiol Biotechnol, 2012, 22:343 -351.
[7] Wang D,Yu H,Song J,et al.A novel ginsenosidase from anAspergillusstrain hydrolyzing 6-O-multi-glycosides of protopanaxatriol-type ginsenosides,named ginsenosidase type IV[J].J Microbiol Biotechnol, 2011,21:1057-1063.
[8] Wang D,Yu H,Song J,et al.Enzyme kinetics of ginsenosidase type IV hydrolyzing 6-O-multi-glycosides of protopanaxatriol type ginsenosides[J].Process Biochem,2012,47:133 -138.
[9] Fu Y,Yu H,Tang S,et al.New dioscin-glycosidase hydrolyzing multi-glycosides of dioscin from absidia strain[J].J Microbiol Biotechnol, 2010, 20(6):1011-1017.
[10] Fu Yaoyao, An Jiayan, Yu Hongshan, et al.Purification and Characterization of new special saikosaponinglycosidase[J].Chemical Journal of Chinese University,2010, 31(6):1152-1157.
[11] Jin Fengxie, Yu Hongshan, Fu Yaoyao, et al.Biotransformation of ginsenosides(ginseng saponins)[J].International Journal of Biomedical and Pharmaceutical Science,2012(增刊):33-44.
[12] Liu T,Yu H,Zhang C,et al.Aspergillus nigerDLFCC-90 rhamniside hydrolase,a new type of flavonoid glycoside hydrolase[J].Appl Enviro Microb, 2012, 78(13):4752-4754.
[13] Zhang C,Yu H,Lu M,et al.Enzyme synthesis of salidoside:purification and characterization of saldosidase fromAspergilllas niger[J].Process Biochem, 2005,40:3143 -3147.
[14] Zhang C,Yu H,Bao Y,et al.Purification and characterization of ginsenoside-β-glucosidase from ginseng[J].Chem Pharm Bull, 2001,49:795 798.
[15] Zhang C,Yu H,Bao Y,et al.Purification and characterization of gisenoside-α-arabiofuranase hygrolyzing ginseoside Rc into Rd from the fresh rood ofPanax ginseng[J].Process Biochem,2002,37:793-798.