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        哮喘患兒單個核細(xì)胞FOXP3 mRNA表達(dá)應(yīng)用實時熒光定量RT—PCR檢測的臨床意義

        2013-04-29 06:19:26范光明
        中國醫(yī)藥科學(xué) 2013年8期
        關(guān)鍵詞:檢測

        范光明

        [摘要] 目的 探討哮喘患兒單個核細(xì)胞FOXP3 mRNA表達(dá)應(yīng)用實時熒光定量RT-PCR檢測的臨床意義。 方法 選取來本院就診的29例哮喘患兒和24例正常健康兒童作為對照,對兩組病例應(yīng)用流式細(xì)胞儀檢測外周血單個核細(xì)胞(PBMCs)中CD4+CD25+Treg的比例,并鑒定PCR產(chǎn)物特異性。 結(jié)果 哮喘患兒組CD4+CD25+Treg檢測結(jié)果為(8.26±2.04)%,顯著低于對照組(12.71±2.53)%,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01)。哮喘患兒組FOXP3/β-actin的2-△Ct值為(0.49±0.15),對照組為(0.62±0.18),兩者比較,有顯著性差異(P<0.05)。外周血單個核細(xì)胞中FOXP3 mRNA表達(dá)與淋巴細(xì)胞中CD4+CD25+Treg比例呈正相關(guān)(r=0.679,P<0.05)。經(jīng)融解曲線分析顯示FOXP3和β-actin均僅有單一擴(kuò)增產(chǎn)物。 結(jié)論 對于哮喘患兒單個核細(xì)胞FOXP3 mRNA表達(dá)水平應(yīng)用實時熒光定量RT-PCR檢測,方法簡便,結(jié)果穩(wěn)定、可靠。

        [關(guān)鍵詞] 哮喘;單個核細(xì)胞;FOXP3 mRNA;CD4+CD25+Treg;實時熒光定量RT-PCR

        [中圖分類號] R446.43 [文獻(xiàn)標(biāo)識碼] B [文章編號] 2095-0616(2013)08-125-02

        CD4+CD25+調(diào)節(jié)性T細(xì)胞(Treg)是一群具有免疫抑制功能的T細(xì)胞,在CD4+CD25+Treg上可見FOXP3特異性高水平表達(dá),它具有反映CD4+CD25+Treg的活性水平[1-3]。研究表明,CD4+CD25+Treg與哮喘的發(fā)生和發(fā)展有著密切關(guān)系,CD4+CD25+Treg能夠?qū)h2細(xì)胞的活化起到抑制作用[4]。本研究探討了哮喘患兒單個核細(xì)胞FOXP3 mRNA表達(dá)應(yīng)用實時熒光定量RT-PCR檢測的臨床意義。

        1 資料與方法

        1.1 一般資料

        選取于本院就診的29例經(jīng)哮喘診斷標(biāo)準(zhǔn)[5]確診的哮喘患兒,其中男19例,女10例;年齡3~14歲,平均(6±2)歲;哮喘病程2~8年。并選取24例正常無過敏性疾病史的健康兒童作為對照組,其中男15例,女9例;年齡3~13歲,平均(6.0±1.5)歲。兩組性別、年齡等一般資料經(jīng)比較無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05),具有可比性。

        1.2 方法

        采集靜脈血4 mL,分別裝入兩支EDTA抗凝試管中,各2 mL。應(yīng)用流式細(xì)胞儀檢測外周血單個核細(xì)胞(PBMCs)中CD4+CD25+Treg的比例,采用融解曲線和瓊脂糖電泳鑒定PCR產(chǎn)物特異性,包括引物設(shè)計、淋巴細(xì)胞分離、逆轉(zhuǎn)錄、熒光定量PCR反應(yīng)體系、擴(kuò)增產(chǎn)物電泳分析。

        1.3 統(tǒng)計學(xué)處理

        采用SPSS15.0統(tǒng)計學(xué)軟件,計量資料采用()表示,采用t檢驗,計數(shù)資料采用x2檢驗,P<0.05為差異有顯著性意義。

        2 結(jié)果

        2.1 熒光定量方法學(xué)評價

        2.1.1 特異性 FOXP3和β-actin擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)電泳后出現(xiàn)約176bp和205bp兩條特異性條帶,經(jīng)融解曲線分析顯示FOXP3和β-actin均只有一個尖峰,分別是82.4℃解鏈溫度和87.8℃解鏈溫度,說明FOXP3和β-actin分別僅有一擴(kuò)增產(chǎn)物。

        2.1.2 稀釋逆轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物 10倍稀釋逆轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物cDNA,0.637/反應(yīng)為最低檢測限,0.637~0.796/反應(yīng)為線性范圍,相當(dāng)于Ct值18-37跨度,r=0.98。

        2.1.3 精密度 重復(fù)測定Ct值為21和Ct值為35的2份標(biāo)本,結(jié)果經(jīng)對數(shù)處理后其批內(nèi)CV值為1.6%~2.8%,批間CV值為2.5%~6.7%。見圖1。

        圖1 精密度測定

        2.2 兩組CD4+CD25+Treg結(jié)果比較

        哮喘患兒組CD4+CD25+Treg檢測結(jié)果為(8.26±2.04)%,對照組為(12.71±2.53)%,兩組比較,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01)。

        2.3 兩組FOXP3/β-actin的2-△Ct值比較

        哮喘患兒組FOXP3/β-actin的2-△Ct值為0.49±0.15,對照組為0.62±0.18,兩者比較,有顯著性差異(P<0.05)。

        2.4 FOXP3 mRNA與CD4+CD25+Treg的相關(guān)性

        外周血單個核細(xì)胞中FOXP3 mRNA表達(dá)與淋巴細(xì)胞中CD4+CD25+Treg比例呈正相關(guān)(r=0.679,P<0.05)。

        3 討論

        與普通PCR比較,SYBR Green I實時定量PCR具有特異、快速、敏感特點。SYBR Green I實時定量PCR無需合成特異探針,故而使用方便,但非特異產(chǎn)物可干擾靶基因的產(chǎn)物定量。作為一種熒光染料,SYBR Green I能與雙鏈DNA非特異性結(jié)合并發(fā)出熒光,其與游離狀態(tài)熒光強(qiáng)度相比強(qiáng)百余倍,因此可以通過檢測熒光強(qiáng)度來檢測出雙鏈DNA數(shù)量。但檢測熒光強(qiáng)度也會出現(xiàn)假陽性結(jié)果,這是因為非特異性擴(kuò)增或引物二聚體也可以產(chǎn)生熒光,從而干擾檢測結(jié)果。鑒于假陽性結(jié)果的出現(xiàn),本研究為了區(qū)別是由PCR產(chǎn)物產(chǎn)生的熒光信號還是本底造成的熒光信號,在定量反應(yīng)結(jié)束后特別進(jìn)行了融解曲線分析。由于在融解曲線上PCR產(chǎn)物是單一峰,Tm值也較非目的產(chǎn)物要高[9],因此可以通過分析融解曲線來證實擴(kuò)增產(chǎn)物的特異性。本研究結(jié)果顯示,特異性FOXP3和β-actin擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)融解曲線分析顯示FOXP3和β-actin均只有一個尖峰,分別是82.4℃解鏈溫度和87.8℃解鏈溫度,說明其擴(kuò)增的特異性。

        研究報道,兒童支氣管哮喘發(fā)病機(jī)制中免疫功能紊亂起著不容忽視的作用,目前關(guān)注的焦點在于淋巴細(xì)胞亞群的比例和功能紊亂。哮喘發(fā)病與免疫耐受的破壞和Th1/Th2功能失調(diào)有關(guān)。研究認(rèn)為,CD4+CD25+Treg水平和功能的正常維持對良好的免疫耐受狀態(tài)建立有很好的作用,從而對哮喘的發(fā)生和發(fā)展起到阻止作用[6]。FOXP3作為一種特殊的轉(zhuǎn)錄因子,在CD4+CD25+Treg上特異性高水平表達(dá),它可以反映CD4+CD25+Treg的活性水平[7-8]。本研究結(jié)果顯示,在外周血CD4+CD25+Treg的比例及FOXP3 mRNA的表達(dá)上哮喘患兒組較對照組低,表明因CD4+CD25+Treg數(shù)量不足,以致免疫抑制功能降低,效應(yīng)性CD4+T細(xì)胞活化,特別是Th2細(xì)胞,大量致炎因子產(chǎn)生,從而使哮喘發(fā)作或持續(xù)。因此我們猜測,CD4+CD25+Treg與哮喘的發(fā)生和發(fā)展關(guān)系密切,對CD4+CD25+Treg的檢測將有助于哮喘患兒的診斷和治療。本研究結(jié)果還顯示,外周血CD4+CD25+Treg細(xì)胞數(shù)量和FOXP3 mRNA表達(dá)有相同的趨勢,存在一定的相關(guān)性。因此,這種從外周血單個核細(xì)胞中檢測FOXP3 mRNA的方法簡單,重復(fù)性好,敏感性和特異性較高,值得推廣。

        [參考文獻(xiàn)]

        [1] Fontenot JD,Gavin MA,Rudensky AY.Foxp3 programs thedevelopment and function of CD4+CD25+ regulatory T cells[J].Nat Immunol,2003,4(1):330-336.

        [2] Khattri R,Cox T,Yasayko SA,et al.An essential role forscurfin in CD4+CD25+ T regulatory cells[J].Nat Immunol,2003,4(2):337-342.

        [3] Mochizuki H,Shigeta M,Morikawa A.Develepment of bron-chial hyperresponsiveness during childhood[J].J Asthma,2001,38(1):1-21.

        [4] 中華醫(yī)學(xué)會兒科學(xué)分會呼吸學(xué)組.兒童支氣管哮喘防治常規(guī)(試行)[J].中華兒科雜志,2004,42(1):100-106.

        [5] Seroogy CM,Gern JE.The role of T regulatory cells in asthma[J].Allergy Clin Immunol,2005,116(2):996-999.

        [6] Picca CC,Caton AJ.The role of self-peptides in the develop-ment of CD4+CD25+ regulatory T cells[J].Curr OpinImmunol,2005,17(2):131-136.

        [7] Yi H,Zhen Y,Jiang L,et al.The phenotypic characterizationof naturally occurring regulatory CD4+CD25+ T cells[J].Cell Mol Immunol,2006,3(1):189-195.

        (收稿日期:2013-01-08)

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