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        地被菊‘雪公主’的組織培養(yǎng)和快速繁殖

        2013-04-25 09:41:28董鳳麗劉晨旭周蘊薇
        草業(yè)科學(xué) 2013年8期
        關(guān)鍵詞:莖段外植體生根

        馬 欣,董鳳麗,劉 杰,劉晨旭,周蘊薇

        (東北林業(yè)大學(xué)園林學(xué)院,黑龍江 哈爾濱 150040)

        菊花是我國的傳統(tǒng)名花,也是世界上重要的切花種類之一。地被菊(Chrysanthemumgrandiflorum)是菊科菊屬的多年生宿根草本花卉,是菊花中的一個品種群,具有植株低矮、耐粗放管理、花緊密、花期長等特點[1]。地被菊還具有較強的抗寒性和抗旱性,適合于露地栽植過冬等特點,因而越來越廣泛地應(yīng)用于城市綠化。目前,對于地被菊的組織培養(yǎng)和快速繁殖也有研究,如利用葉片[2]、莖段[3]、花瓣[4]、子房[5]等外植體建立再生體系和對試管苗的生根研究[6]。成功的基因轉(zhuǎn)化首先依賴于良好的植物受體系統(tǒng)的建立,其中外植體的選擇以及能產(chǎn)生高再生能力的培養(yǎng)體系的確立是轉(zhuǎn)化體系建立的關(guān)鍵[7]。但地被菊花品種繁多,而其再生受基因型的限制,再生體系沒有普遍性,有些品種再生不穩(wěn)定[8],不同品種葉片的再生能力具有一定的差異,而且不同品種的胚性愈傷組織的誘導(dǎo)差別很大[9]。此外,由于后期基因的遺傳轉(zhuǎn)化多采用葉盤法[10],所以,本研究以地被菊‘雪公主’葉片為材料,對外植體消毒,通過設(shè)置不同激素配比濃度,篩選出愈傷組織誘導(dǎo)、分化和繼代生根的最佳培養(yǎng)基,建立高效、穩(wěn)定的再生體系,期為基因工程提供良好的受體系統(tǒng),以及為后期的基因遺傳轉(zhuǎn)化和細胞工程育種提供依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1供試材料 選擇東北林業(yè)大學(xué)園林學(xué)院花卉研究所內(nèi)地被菊‘雪公主’的帶腋芽莖段為外植體。

        1.2試驗方法

        1.2.1無菌材料的獲得 將采集的帶腋芽的莖段在洗衣粉水中漂洗5 min,用流水沖洗30~60 min,除去有損傷的部分。在超凈工作臺上用無菌水沖洗3次,用75%的酒精消毒30 min,無菌水洗3遍,用2%的NaClO分別浸泡滅菌4、5、6、7、8 min,無菌水徹底清洗3遍。用無菌濾紙吸干表面的水分,接種到MS培養(yǎng)基中。7 d左右統(tǒng)計污染率,20 d側(cè)芽長成1 cm左右。

        1.2.2葉片愈傷組織的誘導(dǎo)和分化 選擇繼代20 d左右的嫩苗,將頂端第2-3片葉子除去葉緣,切成5 mm×5 mm的葉盤,隨后接種到在MS培養(yǎng)基附加不同濃度6-BA(1.0、1.5、2.0 mg·L-1)和NAA(0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、0.7、0.8 mg·L-1)的培養(yǎng)基中誘導(dǎo)愈傷組織及芽分化,使其葉盤近軸面接觸培養(yǎng)基,每個處理6個重復(fù)。10 d后統(tǒng)計愈傷組織的誘導(dǎo)率,25 d后統(tǒng)計芽的分化率。

        1.2.3莖段的增殖 選擇繼代20 d左右的嫩苗,切取長度約1.5 cm帶有兩個腋芽的嫩莖段,隨后接種到在MS培養(yǎng)基附加不同濃度6-BA(0、0.1、0.2、0.3、0.4 mg·L-1)和NAA(0、0.1、0.2、0.3、0.4 mg·L-1)的培養(yǎng)基中,誘導(dǎo)莖段的增殖。每個三角瓶中接種兩棵莖段,每個處理10個重復(fù),20 d后統(tǒng)計增殖系數(shù)。

        1.2.4繼代生根 待不定芽生長至約1.5 cm時自基部剪下,接種至MS培養(yǎng)基中進行繼代培養(yǎng),每20 d左右繼代一次。生根培養(yǎng)時,將不定芽接種至分別添加NAA(0、0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6 mg·L-1)的MS培養(yǎng)基和1/2MS培養(yǎng)基中培養(yǎng),每處理3個重復(fù),10 d后統(tǒng)計生根率和平均生根系數(shù)。

        1.2.5煉苗移栽 將生根后的組培苗煉苗1 d后,取出并洗凈根部附著的培養(yǎng)基,移栽至經(jīng)過高壓滅菌的蛭石中,15 d后移栽到沙和土壤的混合壤土中,30 d后統(tǒng)計成活率。

        1.3培養(yǎng)條件 培養(yǎng)基均以MS為基本培養(yǎng),培養(yǎng)基含蔗糖30 mg·L-1、瓊脂8~9 g·L-1,培養(yǎng)基在高壓滅菌前將pH值調(diào)至5.8;1/2MS培養(yǎng)基中大量元素減半,pH值不變。培養(yǎng)溫度為(25±2) ℃,光照強度為2 000 lx,光照時間為12 h·d-1。

        1.4評價指標

        污染率=(污染個數(shù)/接種個數(shù))×100%;

        萌發(fā)率=(萌發(fā)個數(shù)/存活個數(shù))×100%;

        誘導(dǎo)率=(形成愈傷組織的材料/接種個數(shù))×100%;

        分化率=(再生不定芽的外植體數(shù)/接種個數(shù))×100%;

        增殖系數(shù)=增殖后的幼苗數(shù)/接種的幼苗數(shù);

        生根率=(生根的幼苗數(shù)/接種的幼苗數(shù))×100%;

        平均生根數(shù)=根的總數(shù)/生根的幼苗數(shù)。

        2 結(jié)果與分析

        2.1消毒時間對污染率的影響 外植體自身的生長狀況對于再生體系的建立有著重要的影響,所以外植體的消毒也是一個重要過程。本試驗選用NaClO進行消毒,不僅消毒效果明顯,還不必進行廢液回收,相比于升汞更加簡便、環(huán)保。對消毒時間進行對比表明,隨著消毒時間的增加,污染率降低,但是外植體受腐蝕情況嚴重,導(dǎo)致萌發(fā)率降低。消毒8 min時雖然污染率最低(5個),但此時萌發(fā)率僅為52.6%(表1)。用2%的NaClO浸泡處理6 min時,污染率為25%,此時消毒效果最佳。

        表1 外植體的消毒時間和污染率Table 1 Disinfection time and polluted rate of explants

        2.2不同激素濃度的培養(yǎng)基對葉片分化的影響 再生苗的幼嫩葉片再生能力較強。選擇大小和營養(yǎng)長勢一致的葉片,接種7 d后,葉片在切口處長出嫩綠色的愈傷組織。20 d后,有的愈傷組織邊緣開始分化出綠色的芽點。試驗表明,葉片基部的分化率高于其他部分。本試驗采用菊花組織培養(yǎng)中最常用的植物生長調(diào)節(jié)劑6-BA和NAA,所設(shè)定的培養(yǎng)基所培養(yǎng)愈傷的誘導(dǎo)率均達到100%。當(dāng)6-BA一定時,葉片的分化率隨著NAA濃度的變大而升高;達到一定高度時又出現(xiàn)抑制現(xiàn)象(表2)。當(dāng)6-BA和NAA的濃度分別為1.0和0.6 mg·L-1時,分化率達最高,即在培養(yǎng)基MS+1.0 mg·L-16-BA+0.6 mg·L-1NAA上,葉片的分化率最高,為63.6%。

        2.3不同激素濃度對莖段增殖的影響 將繼代25 d左右的嫩苗自基部剪下,接種到附加不同濃度6-BA和NAA的MS培養(yǎng)基中,促進叢生芽形成。25 d后,叢生芽的數(shù)量達最高,但隨著時間的增加,由于培養(yǎng)基營養(yǎng)的缺乏,叢生芽有萎蔫的趨勢。MS培養(yǎng)基不能促進莖段的增殖,隨著6-BA和NAA濃度的升高,莖段的增殖系數(shù)也逐漸升高,但當(dāng)6-BA和NAA分別升至0.3和0.2 mg·L-1時達到最高值(表3)。因此,在培養(yǎng)基MS+0.3 mg·L-16-BA+0.2 mg·L-1NAA上,莖段的增殖系數(shù)最高(6.73),且叢生芽的生長狀態(tài)良好。

        2.4不同培養(yǎng)基對繼代生根的影響 待叢生芽生長約1.5 cm時自基部剪下,接種至MS培養(yǎng)基中進行繼代培養(yǎng)。結(jié)果表明,MS培養(yǎng)基對于‘雪公主’不僅有較好的繼代效果,而且有良好的復(fù)壯作用。同瓶培養(yǎng)的苗數(shù)以兩棵為宜,過多則長勢受到明顯影響。同時,隨著繼代次數(shù)的增加,組培苗出現(xiàn)了長勢變?nèi)醯内厔荨km然在MS培養(yǎng)基中,‘雪公主’也有明顯的生根現(xiàn)象,但是1/2 MS培養(yǎng)基誘導(dǎo)的根數(shù)較多,生根率達100%,平均生根數(shù)為8條。在1/2 MS培養(yǎng)基中添加不同濃度的NAA時,其生根系數(shù)呈隨濃度增加而提高的趨勢。但當(dāng)NAA濃度高于0.5 mg·L-1時,生根系數(shù)下降,地上部分的生長勢也下降。所以,生根培養(yǎng)基選用1/2MS+0.5 mg·L-1NAA培養(yǎng)基(表4)。

        2.5組培苗的馴化及移栽 在生根培養(yǎng)基上培養(yǎng)25 d后,選擇生長健壯的無菌苗,經(jīng)過1 d的煉苗后,取出,并洗凈根部附著的培養(yǎng)基,移栽至經(jīng)過滅菌的蛭石中。注意遮陰處理,通風(fēng)保濕,15 d后移栽到沙和土壤的混合壤土中。30 d后組培苗的成活率可達100%,而且生長良好(圖1)。

        3 討論

        在地被菊的組織培養(yǎng)研究中,不同的組織或器官都可以作為外植體,但是由帶腋芽的莖段獲得無菌苗更加簡便,而且比葉片受消毒的影響小,所以本研究選擇的外植體為帶腋芽的莖段。對于外植體的消毒,采用NaClO能達到良好的效果,相比于以往的試驗中采用的升汞消毒法,不僅減少了對人體的毒害作用,也大大降低了環(huán)境污染[11]。雖然在以往地被菊的組織培養(yǎng)中生長調(diào)節(jié)物質(zhì)有多種,但受基因型影響,6-BA和NAA對‘雪公主’影響顯著,所以本研究采用這兩種激素進行誘導(dǎo),建立再生體系。由于葉盤法是菊花基因轉(zhuǎn)化的主要方法,而且轉(zhuǎn)化后的體細胞胚胎發(fā)生的再生植株遺傳穩(wěn)定性很強[12],所以以葉片誘導(dǎo)叢生芽的研究比其他組織或器官有更加重要的意義。

        表2 不同6-BA和NAA濃度對葉片分化的影響Table 2 Effects of different concentrations of 6-BA and NAA on the differentiation capability of leaf blades

        表3 不同6-BA和NAA濃度對莖段增殖的影響Table 3 Effects of different concentrations of 6-BA and NAA on the proliferation of stem segments

        表4 基本培養(yǎng)基和不同NAA濃度對叢生芽生根的影響Table 4 Effects of basal medium and different concentrations of NAA on rooting of adventions buds

        圖1 地被菊再生體系幾個連續(xù)階段的培養(yǎng)情況Fig.1 Sequential phases of Chrysanthemum grandiflorum regeneration system

        在地被菊的快速繁殖研究中,不僅不同品種的愈傷組織分化差別很大,而且同一品種同一器官的不同部分分化率也存在很大差別。試驗中發(fā)現(xiàn),葉片基部的分化能力大于其他部分,這與花瓣[13]的研究結(jié)果相似,原因可能是葉脈處的細胞更易于分化出不定芽。所以,對于葉片大小和營養(yǎng)長勢的選擇也應(yīng)盡量一致,試驗中認為具有20 d左右苗齡的無菌苗中上部幼嫩葉片基部的再生能力高,這與前人的研究相符[14]。

        由于每次得到的無菌苗數(shù)量有限,不足以為后期的試驗提供足夠的材料,所以通過繼代培養(yǎng)來擴大無菌苗的數(shù)量也是必要的。試驗中隨著繼代次數(shù)的增加,出現(xiàn)了組培苗長勢下降的現(xiàn)象,原因可能是組培苗經(jīng)過多次繼代培養(yǎng)后出現(xiàn)了遺傳不穩(wěn)定性。而且隨著同瓶培養(yǎng)的苗數(shù)的增加,組培苗的長勢明顯下降,說明瓶中空間對于組培苗的生長也有很大影響,結(jié)果發(fā)現(xiàn)同瓶培養(yǎng)的無菌苗數(shù)量以2~3株效果最佳。另外,做生根培養(yǎng)時,1/2MS培養(yǎng)基好于MS培養(yǎng)基,這與多數(shù)研究結(jié)果一致[15]。原因可能是礦質(zhì)元素濃度較低時有利于生根,較高時有利于發(fā)展莖葉,高濃度的無機鹽抑制了不定根的生長。

        本研究以地被菊‘雪公主’為試驗材料,通過設(shè)定不同濃度的6-BA和NAA建立再生體系,完成了快速繁殖的過程。由于地被菊花優(yōu)良品種種源較少,所以通過組織培養(yǎng)可迅速快繁。再生體系的建立不僅為后期的基因轉(zhuǎn)化奠定了基礎(chǔ),而且大大地提高了繁殖系數(shù), 使地被菊‘雪公主’的大規(guī)??焖偕a(chǎn)成為可能。

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