魏 璨,高 君,陳愛(ài)東,白淑芝,李宏霞,柳 磊,邵洪江,彭 雪,李梅秀,徐長(zhǎng)慶△,李鴻珠△
(1.哈爾濱醫(yī)科大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院病理生理學(xué)教研室,黑龍江哈爾濱150086;2.哈爾濱市第一醫(yī)院骨一科,黑龍江哈爾濱150010;3.牡丹江醫(yī)學(xué)院紅旗醫(yī)院,黑龍江牡丹江157011)
在原發(fā)性心臟病中,缺血性心臟病的發(fā)病率居首位,其中50%以上都是由心肌缺血/再灌注損傷(myocardial ischemia/reperfusion injury,MI/RI)所引起[1]。大量的動(dòng)物實(shí)驗(yàn)研究已發(fā)現(xiàn),MI/RI的發(fā)生與細(xì)胞凋亡密切相關(guān)[2],缺血/再灌注后心肌細(xì)胞凋亡明顯增加,那么減少心肌細(xì)胞凋亡,則對(duì)減輕心肌損傷具有重要的意義。
多巴胺受體(dopamine receptor,DR)屬于七個(gè)跨膜區(qū)域組成的G蛋白偶聯(lián)受體家族[3],主要分布在中樞神經(jīng)系統(tǒng),在外周主要分布于腎臟、腸系膜、心臟、血管等。當(dāng)今國(guó)內(nèi)外對(duì)于DR的研究多集中在精神分裂癥、帕金森病、藥物依賴(lài)、胃潰瘍等,心血管系統(tǒng)主要涉及多巴胺對(duì)高血壓、充血性心力衰竭等的影響。DR對(duì)MI/RI的影響,國(guó)內(nèi)外尚未見(jiàn)報(bào)道。我們?cè)谇捌谘芯恐邪l(fā)現(xiàn),大鼠離體 MI/RI過(guò)程中DR1和DR2的表達(dá)是增加的[4],且在模擬的原代培養(yǎng)乳鼠 MI/RI模型中,DR1激動(dòng)劑(SKF-38393)可上調(diào)線粒體和死亡受體途徑,促進(jìn) MI/RI和細(xì)胞凋亡[5]。有報(bào)道,多巴胺D2受體激動(dòng)劑培高利特能減輕腦缺血/再灌注時(shí)海馬神經(jīng)元的凋亡[6]。我們采用原代培養(yǎng)乳鼠心肌細(xì)胞缺氧/再灌注損傷模型,探討DR2激動(dòng)劑是否在MI/RI誘導(dǎo)的細(xì)胞凋亡中發(fā)揮類(lèi)似作用,以便為缺血性心臟病的防治提供新思路和新靶點(diǎn)。
Wistar乳鼠(2~3 d,雄性,8~15 g),由哈爾濱醫(yī)科大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供。
溴麥角環(huán)肽(bromocriptine,Bro)和氟哌啶醇(haloperidol,Hal,Sigma),Western及 IP細(xì)胞裂解液(beyotime),DMEM培養(yǎng)液(Hyclone),RT-PCR試劑盒(Promega),LDH、SOD、MDA測(cè)定試劑盒(南京建成),Annexin-V凋亡檢測(cè)試劑盒(北京寶賽)等。
高速低溫離心機(jī)(Beckman),US-640型紫外分光光度計(jì)(Beckman),倒置相差顯微鏡(Olympus),Western blot電泳槽(美國(guó) BIO-RAD),培養(yǎng)箱 MCO-17AICO2(SANYO),S-1300-U凈化工作臺(tái),PCR儀PTC-100(美國(guó))等。
用70%的酒精浸泡消毒W(wǎng)istar乳鼠,開(kāi)胸取心,D-Hank’s液清洗2次,剪碎放入10 ml離心管中;加入心肌5倍體積的0.25%胰酶,37℃水浴消化12 min,共消化4~5次;除第一次外,每次收集的細(xì)胞懸液,放入等體積的高糖DMEM培養(yǎng)液終止消化后,1 500 r/min離心 15 min,棄上清,用含 10%胎牛血清的高糖DMEM培養(yǎng)液將沉淀吹打?yàn)閱渭?xì)胞懸液,經(jīng)200目篩網(wǎng)過(guò)濾去除未消化組織塊。用差速貼壁分離法去除成纖維細(xì)胞,將純化心肌細(xì)胞計(jì)數(shù)后,以 5×106cells/cm2接種于培養(yǎng)皿中,37℃、5%CO2條件下孵育培養(yǎng)。隔天換液,取第4天的細(xì)胞進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。
1.5.1 模型建立 參照文獻(xiàn)[7],將高純度氮?dú)猓∟2)通入低糖DMEM中飽和30 min,驅(qū)除氧氣,取生長(zhǎng)4 d的單層心肌細(xì)胞,換用 N2飽和的低糖DMEM培養(yǎng)液,放入5%CO2的37℃孵箱中培養(yǎng)2 h;再將缺氧后心肌細(xì)胞的培養(yǎng)液換為含10%胎牛血清的高糖DMEM培養(yǎng)液培養(yǎng)24 h。
1.5.2 實(shí)驗(yàn)分組 培養(yǎng)的乳鼠心肌細(xì)胞隨機(jī)分為4組(n=10):(1)正常對(duì)照組(Control):正常細(xì)胞培養(yǎng),不做任何處理;(2)缺氧/再灌注組(H/R):按照上述方法缺氧 2 h,復(fù)氧 24 h;(3)激動(dòng)劑干預(yù)組(Bro):同上,在復(fù)氧時(shí)加入 Bro(10μmol/L);(4)抑制劑干預(yù)組(Hal):復(fù)氧時(shí)加入 Hal(10μmol/L)。
1.6.1 倒置顯微鏡 在倒置顯微鏡下,肉眼觀察不同培養(yǎng)時(shí)間、不同因素處理后乳鼠心肌細(xì)胞的形態(tài)變化。
1.6.2 透射電鏡 用0.25%胰酶消化細(xì)胞 4 min,PBS洗滌1次,2 000 r/min離心 10 min后棄上清收集細(xì)胞;4℃,2.5%戊二醛固定;1%鋨酸固定,常規(guī)乙醇、丙酮逐級(jí)脫水,環(huán)氧樹(shù)脂包埋,超薄切片,鉛鈾雙重染色,透射電鏡下觀察心肌細(xì)胞的超微結(jié)構(gòu)并攝片。
1.6.3 Annexin-V染色檢測(cè)凋亡率 取各組心肌細(xì)胞,0.25%胰酶消化,PBS洗滌2次后調(diào)整細(xì)胞密度為1×106cells/L,制成單細(xì)胞懸液;加入由 100μl Binding Buffer和 FITC標(biāo)記的 Annexin-V(20μg/ml)10 μl,室溫避光 30 min;加入 PI(50μg/ml)5μl,避光 5 min;加入400μl Binding Buffer,立即用流式細(xì)胞儀(FACScan)進(jìn)行定量檢測(cè)。
取各組細(xì)胞的培養(yǎng)液,用考馬斯亮藍(lán)法測(cè)定蛋白濃度:標(biāo)準(zhǔn)品為牛血清白蛋白;按試劑盒說(shuō)明書(shū)操作;紫外分光光度計(jì)上讀出吸光度(OD)值,計(jì)算細(xì)胞的LDH和SOD活力以及MDA水平。
1.8.1 心肌細(xì)胞總RNA提取 用 Trizol法提取心肌細(xì)胞總RNA,用A260和A280判斷RNA純度及含量。
1.8.2 DNase I酶處理 RNA RNA 15μl;DNase I 1 μl;10×DNase Ibuffer 5μl;DEPC-H2O29μl;37℃水浴30 min后加入Trizol reagent、氯仿重新提取總RNA。
1.8.3 逆轉(zhuǎn)錄(RT) 反應(yīng) AMV逆轉(zhuǎn)錄酶逆轉(zhuǎn)RNA,合成第一鏈 cDNA,取 RNA 5μl,Oligo dT 1μl,DEPC-H2O 4.5μl,總體積為 10.5μl。70℃水浴 10 min后置于冰上,放入-20℃冰箱保存。
1.8.4 聚合酶鏈反應(yīng)(PCR) 依據(jù)文獻(xiàn)設(shè)計(jì)Bcl-2、Fas、Fas-L、caspase-3、caspase-8和 caspase-9的引物(表1)。引物擴(kuò)增條件:首次循環(huán)為94℃3 min;隨后進(jìn)行 30次循環(huán):94℃ 30 s,58℃40 s,72℃ 1 min;進(jìn)行10次循環(huán)后加入β-actin,72℃終延伸5 min。
Tab.1PCR-primer sequences
1.8.5 PCR產(chǎn)物分析 取8μl產(chǎn)物進(jìn)行1.2%瓊脂糖凝膠電泳,在凝膠成像系統(tǒng)下拍照,分別用Bcl-2、Fas、Fas-L、caspase-3、caspase-8、caspase-9與β-actin擴(kuò)增條帶的信號(hào)面積之比判斷其mRNA水平。
取各組心肌細(xì)胞,PBS洗滌后加入全細(xì)胞裂解液,冰浴 10 min,4℃,12 000 r/min離心 15 min,取上清進(jìn)行蛋白質(zhì)定量。取50μg蛋白樣品于10%SDSPAGE凝膠電泳;隨后轉(zhuǎn)印于PVDF濾膜上,用5%脫脂奶粉,37℃封閉1 h;用封閉液稀釋一抗,4℃震蕩過(guò)夜;TBST稀釋二抗(1/2 000的羊抗兔IgG二抗,堿性磷酸酶標(biāo)記),室溫振蕩孵育2 h;最后顯色,凝膠成像系統(tǒng)下拍照,計(jì)算條帶光密度值,蛋白表達(dá)水平以其與β-actin光密度比值來(lái)表示。
實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)以均值 ±標(biāo)準(zhǔn)差s)表示,采用SPSS10.1軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,采用方差分析及配對(duì)t檢驗(yàn)判斷其差異顯著性。
正常心肌細(xì)胞原代培養(yǎng)4~6 h后開(kāi)始貼壁生長(zhǎng),由圓形變?yōu)樗笮位蚨嘟切?,胞核小,胞漿致密;培養(yǎng)24 h后,細(xì)胞呈團(tuán)簇狀并同步節(jié)律性收縮。取培養(yǎng)4 d的細(xì)胞進(jìn)行分組實(shí)驗(yàn)。正常組細(xì)胞繼續(xù)培養(yǎng),細(xì)胞生長(zhǎng)情況良好;H/R組可見(jiàn)心肌細(xì)胞皺縮,生長(zhǎng)分散,心肌細(xì)胞收縮節(jié)律不規(guī)則,貼壁細(xì)胞變圓,部分脫落;加藥孵育24 h后,Bro組心肌細(xì)胞形態(tài)及收縮性等較H/R組有所改善;而 Hal組則變化不顯著(圖 1)。
Fig.1 Morphological changes of neonatal rat cardiomyocytes by inverted microscope(×100)
正常組:核膜清楚,線粒體結(jié)構(gòu)完好;H/R組:細(xì)胞核固縮,染色質(zhì)高度凝聚、邊緣化,線粒體腫脹和空泡化;Bro組:核膜結(jié)構(gòu)較完好,染色質(zhì)部分凝聚,少量線粒體空泡化;Hal組:細(xì)胞核固縮,染色質(zhì)凝聚、邊緣化,線粒體空泡化(圖2)。
正常組:心肌細(xì)胞少量凋亡;H/R組:心肌細(xì)胞凋亡率明顯增加(P<0.01與對(duì)照組比);Bro組:心肌細(xì)胞凋亡率明顯低于 H/R組(P<0.01);Hal組:心肌細(xì)胞凋亡率與H/R組沒(méi)有顯著差異(P>0.05,圖 3)。
Fig.2 Ultrastructure of cardiomyocytes by transmission electron microscopy(×10k)
Fig.3 Apoptosis rate of cardiomyocytes by FCM(n=4)
(1)與正常對(duì)照組比較:H/R組 LDH活性、MDA含量明顯增加,SOD活性顯著降低(P<0.01);(2)與H/R組比較:Bro組LDH活性、MDA含量降低,SOD活性增加(P<0.01);Hal組上述指標(biāo)變化不明顯(P>0.05,表 2)。
Tab.2 Changes of LDH and SOD activity and MDA content in cell medium(ˉx±s,n=10)
按 Trizol提取心肌細(xì)胞總 RNA,測(cè)定 OD260/OD280值為1.84,符合實(shí)驗(yàn)標(biāo)準(zhǔn)。RT-PCR的檢測(cè)結(jié)果分別以各凋亡相關(guān)因子與β-actin擴(kuò)增條帶的面積比表示:(1)與正常組相比,H/R組所有凋亡相關(guān)因子表達(dá)均增加(P<0.01);(2)與 H/R組比較,加入Bro后除Bcl-2表達(dá)增加(P<0.01),其它因子表達(dá)都降低(P<0.05,P<0.01);加入 Hal對(duì)上述指標(biāo)影響不顯著(P>0.05,表 3)。
以凋亡相關(guān)因子與β-actin蛋白條帶面積之比作為觀察參數(shù),各組凋亡相關(guān)因子的表達(dá)規(guī)律與上面mRNA的轉(zhuǎn)錄規(guī)律一致(表4)。
Tab.3 Results analysis of mRNA expression of the factors in cell apoptosiss,n=6)
Tab.3 Results analysis of mRNA expression of the factors in cell apoptosiss,n=6)
H/R:Hypoxia/reperfusion;Bro:Dopamine receptor(DR2)agonist;Hal:DR2 antagonist**P<0.01 vs control group;##P<0.01 vs H/R group
?
Tab.4 Results analysis of protein expression of the factors in cell apoptosiss,n=4)
Tab.4 Results analysis of protein expression of the factors in cell apoptosiss,n=4)
Cyt C:Cytochrome C**P<0.01 vs control group;##P<0.01 vs H/R group
?
本實(shí)驗(yàn)通過(guò)乳鼠心肌細(xì)胞缺氧/再灌注模擬MI/RI,采用多種方法檢測(cè)心肌細(xì)胞損傷和凋亡情況,并觀察DR2激動(dòng)劑和抑制劑對(duì)心肌細(xì)胞缺氧/再灌注所致?lián)p傷的作用并探討其機(jī)制。
倒置顯微鏡和透射電鏡觀察顯示,原代培養(yǎng)的乳鼠心肌細(xì)胞在缺氧/再灌注后出現(xiàn)貼壁細(xì)胞變圓,部分脫落;細(xì)胞核固縮,染色質(zhì)凝聚,線粒體腫脹和空泡化;同時(shí),細(xì)胞培養(yǎng)液LDH活性增強(qiáng)。這些均表明缺氧/再灌注導(dǎo)致心肌細(xì)胞發(fā)生明顯的損傷。
LDH外漏程度可反映細(xì)胞受損程度;SOD活性可反映機(jī)體清除自由基和抗脂質(zhì)過(guò)氧化的能力;MDA含量可反映氧自由基產(chǎn)生和組織的損傷程度。本研究顯示,與正常對(duì)照組相比,缺氧/再灌注組培養(yǎng)液中MDA含量明顯增加、SOD活性顯著降低,表明缺氧/再灌注性心肌損傷與自由基生成增多有關(guān)。
大量動(dòng)物實(shí)驗(yàn)和臨床研究證明,缺血/再灌注心肌存在細(xì)胞凋亡[2]。心肌缺血/再灌注時(shí),鈣超載、氧自由基大量產(chǎn)生、ATP耗竭等,可觸發(fā)細(xì)胞凋亡的發(fā)生[8]。細(xì)胞凋亡的發(fā)生可經(jīng)外部的死亡受體途徑及內(nèi)部的線粒體途徑。Caspase-3是細(xì)胞凋亡的關(guān)鍵蛋白酶,其活化是凋亡級(jí)聯(lián)反應(yīng)關(guān)鍵步驟[9]。上述兩條途徑都是通過(guò)激活 caspase-3執(zhí)行凋亡過(guò)程。抗凋亡蛋白Bcl-2可抑制 Cyt C釋放和 caspase激活,進(jìn)而阻斷凋亡發(fā)生[10]。
Annexin-V是目前檢測(cè)細(xì)胞早期凋亡的靈敏指標(biāo)之一。本實(shí)驗(yàn)的流式細(xì)胞儀分析結(jié)果顯示:缺氧/再灌注后心肌細(xì)胞凋亡率約增加3倍。同時(shí),RTPCR和Western blot的檢測(cè)表明,缺氧/再灌注組Cyt C、caspase-3、caspase-8、caspase-9、Fas和 Fas-L mRNA和蛋白表達(dá)均明顯增加,這就進(jìn)一步證實(shí)上述結(jié)論。至于Bcl-2表達(dá)增加,可能是機(jī)體的一種代償性適應(yīng)性反應(yīng)。
我們前期研究發(fā)現(xiàn),在 MI/RI過(guò)程中 DR1和DR2的表達(dá)增加,DR1激動(dòng)劑可上調(diào)線粒體和死亡受體途徑,促進(jìn) MI/RI和細(xì)胞凋亡[4-5]。DR2的活性變化對(duì)MI/RI的影響,國(guó)內(nèi)外尚未見(jiàn)報(bào)道。
Bromocriptine(Bro)是 DR2的激動(dòng)劑,Haloperidol(Hal)是DR2的抑制劑。本實(shí)驗(yàn)倒置顯微鏡、透射電鏡、流式細(xì)胞儀和生化檢測(cè)結(jié)果均顯示:Bro可減輕并抑制心肌缺氧/再灌注誘導(dǎo)的心肌細(xì)胞損傷和細(xì)胞凋亡以及增強(qiáng)機(jī)體的抗氧化能力;而Hal則無(wú)明顯影響。分子生物學(xué)檢測(cè)結(jié)果顯示,加入Bro可下調(diào)促凋亡因子表達(dá)而上調(diào)抑凋亡因子Bcl-2表達(dá)。
綜上所述,DR2激活可減輕缺氧/再灌注對(duì)心肌細(xì)胞的損傷,其機(jī)制與清除自由基、減少脂質(zhì)過(guò)氧化和通過(guò)Cyt C-caspase-3線粒體途徑和Fas/Fas-L死亡受體途徑抑制心肌細(xì)胞凋亡有關(guān)。結(jié)合我們的前期實(shí)驗(yàn)結(jié)果,激活心肌DR2和抑制DR1有望為缺血性心臟病的防治提供一個(gè)新思路和新靶點(diǎn)。
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