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        單管一步甲基化可變位點(diǎn)分析技術(shù)

        2013-03-11 02:33:48岳陽(yáng)陽(yáng)趙貴森張倩魯滌翟仙敦莫耀南
        法醫(yī)學(xué)雜志 2013年6期
        關(guān)鍵詞:檢測(cè)

        岳陽(yáng)陽(yáng),趙貴森,張倩,魯滌,翟仙敦,莫耀南

        (1.河南科技大學(xué)法醫(yī)學(xué)院,河南洛陽(yáng) 471003;2.中國(guó)政法大學(xué)證據(jù)科學(xué)教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,北京 100088)

        單管一步甲基化可變位點(diǎn)分析技術(shù)

        岳陽(yáng)陽(yáng)1,2,趙貴森1,2,張倩1,魯滌2,翟仙敦1,莫耀南1

        (1.河南科技大學(xué)法醫(yī)學(xué)院,河南洛陽(yáng) 471003;2.中國(guó)政法大學(xué)證據(jù)科學(xué)教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,北京 100088)

        目的建立單管一步甲基化可變位點(diǎn)(methylation variable position,MVP)分析技術(shù)——單管消化后PCR鏈融解曲線分析(post-digestion PCR-melting curve analysis,PDP-MCA)。方法以文獻(xiàn)報(bào)道的差異甲基化區(qū)(differentially methylated region,DMR)為模型,在MVP兩側(cè)設(shè)計(jì)一組解鏈溫度各不相同的引物。應(yīng)用FastDigest甲基化敏感性限制酶(methylation-sensitive restriction enzyme,MSRE),在同一反應(yīng)管內(nèi)順次進(jìn)行DNA的酶切、復(fù)合擴(kuò)增和MCA檢測(cè),生成MCA圖譜。同時(shí)用該方法和傳統(tǒng)的MSRE-PCR MCA技術(shù)檢測(cè)相同樣品(外周靜脈血、精液、陰道液各5份),比較兩種方法檢測(cè)結(jié)果,驗(yàn)證其可行性,并分析比較不同樣品的MCA/HRM圖譜。結(jié)果解鏈溫度相差2℃以上的片段,MCA峰分離良好,復(fù)合擴(kuò)增后可以用MCA技術(shù)檢測(cè)。應(yīng)用單管PDP-MCA技術(shù),可以集酶切、擴(kuò)增和檢測(cè)三步于一管,在2h內(nèi)得到與傳統(tǒng)方法一致的特異性圖譜和數(shù)據(jù),并實(shí)現(xiàn)樣品的快速分類鑒別。結(jié)論單管PDP-MCA技術(shù)可以實(shí)現(xiàn)多個(gè)MVP的單管、閉管檢測(cè),具有簡(jiǎn)便、快速、易于自動(dòng)化等優(yōu)點(diǎn),可用于樣品DNA甲基化差異的檢測(cè)。

        法醫(yī)遺傳學(xué);DNA甲基化;鏈融解曲線;甲基化敏感性限制酶;甲基化可變位點(diǎn)

        DNA甲基化是DNA的一種新型分子標(biāo)記,與SNP等反映個(gè)體間差異的遺傳標(biāo)記不同,主要表現(xiàn)為個(gè)體內(nèi)細(xì)胞間的差異。甲基化可變位點(diǎn)(methylation variable position,MVP)被視為表觀遺傳學(xué)水平上的“SNP”[1],即DNA鏈上表現(xiàn)出不同甲基化狀態(tài)的CpG位點(diǎn),這種差異存在于正常的細(xì)胞類型之間以及細(xì)胞的不同發(fā)育階段。基因組內(nèi)廣泛存在的MVP為解決法醫(yī)學(xué)問(wèn)題提供了一種全新的途徑,國(guó)內(nèi)外學(xué)者正在探索利用DNA甲基化標(biāo)記解決同卵雙生子鑒別、年齡推斷、斑痕類型鑒別、人造DNA鑒偽等問(wèn)題[2-8]。細(xì)胞類型的差異導(dǎo)致了不同組織間的特異性甲基化模式即組織特異性差異甲基化區(qū)(differentially methylated region,DMR),因而通過(guò)分析檢材的甲基化特征,就可推斷其組織細(xì)胞類型。

        在篩選高鑒別能力標(biāo)記的同時(shí),還需建立適合法醫(yī)學(xué)檢材特點(diǎn)、足夠便捷、能與當(dāng)代DNA分析技術(shù)相匹配的檢測(cè)方法。常用的應(yīng)用性MVP分析技術(shù)大多操作繁瑣、耗時(shí)費(fèi)力,難以達(dá)到自動(dòng)化、標(biāo)準(zhǔn)化的要求[9-10]。本研究旨在把常用的FastDigest內(nèi)切酶[11]、鏈融解曲線分析(melting curve analysis,MCA)[12-13]與傳統(tǒng)的甲基化敏感性限制酶PCR(methylation-sensitive restriction enzyme PCR,MSRE-PCR)技術(shù)[14-15]結(jié)合起來(lái),建立一種能在單管內(nèi)連續(xù)進(jìn)行酶切、擴(kuò)增和MCA檢測(cè)的簡(jiǎn)便方法——單管消化后PCR鏈融解曲線分析(post-digestion PCR-melting curve analysis,PDPMCA)技術(shù),以期實(shí)現(xiàn)多個(gè)MVP的單管、閉管、復(fù)合、快速檢測(cè),為DNA甲基化標(biāo)記在法醫(yī)學(xué)中的應(yīng)用尋求合適的方法。

        1 材料與方法

        1.1 儀器與試劑

        Rotor-Gene Q 5Plex HRM熒光定量PCR儀(德國(guó)QIAGEN公司),F(xiàn)LA6000微量紫外可見分光光度計(jì)(杭州晶飛科技有限公司),TGL-16B高速臺(tái)式離心機(jī)(上海安亭科學(xué)儀器廠)。

        限制酶FastDigest?HhaⅠ、FastDigest?HpaⅡ、普通HhaⅠ、普通HpaⅡ和熱啟動(dòng)Taq DNA聚合酶(加拿大Fermentas公司),20×Eva Green熒光染料(美國(guó)Biotium公司),甜菜堿、二甲基亞砜(美國(guó)Sigma公司)。

        1.2 樣品

        按知情同意原則收集健康成人外周靜脈血、精液、陰道液各5份。常規(guī)的蛋白酶K消化、酚-氯仿法提取基因組DNA,紫外分光光度法定量,-20℃保存?zhèn)溆谩?/p>

        1.3 引物

        根據(jù)文獻(xiàn)[16-19]報(bào)道的DMR為模型,從Genebank中獲取4個(gè)具有組織特異性的差異甲基化序列MAGE-1、14-3-3σ、MCJ、TIMP,用pDRAW32軟件搜索其中可為限制酶FastDigest?HhaⅠ和HpaⅡ識(shí)別的MVP數(shù)。運(yùn)用Primer Premier 5.0軟件設(shè)計(jì)引物,使擴(kuò)增片段內(nèi)至少有1個(gè)MVP,4個(gè)片段的解鏈溫度(melting temperature,Tm)梯度增加。另外設(shè)置一個(gè)擴(kuò)增參照片段AC,不含HhaⅠ和HpaⅡ識(shí)別的MVP,且Tm低于上述4個(gè)片段(表1)。引物由上海捷瑞生物工程有限公司合成。

        表1 擴(kuò)增片段與引物信息

        1.4 多重PCR-MCA確定引物組合

        常規(guī)PCR法確定各基因座最佳的引物濃度、反應(yīng)體系和循環(huán)參數(shù)。在此基礎(chǔ)上進(jìn)行組合、優(yōu)化,形成兩套復(fù)合擴(kuò)增體系(A組合為AC、MAGE-1、14-3-3σ 和MCJ,B組合為AC、MAGE-1、MCJ和TIMP),分別檢驗(yàn)其復(fù)合擴(kuò)增后直接進(jìn)行多重MCA檢測(cè)的可行性。

        反應(yīng)體系20μL:含熱啟動(dòng)Taq DNA聚合酶1.5U,引物組合A或B(濃度見表1),2×通用反應(yīng)液10 μL(含緩沖離子、MgCl2、dNTPs、EvaGreen、甜菜堿和二甲基亞砜等),20 ng外周靜脈血基因組DNA,加純水至20 μL。在Rotor-Gene Q 5Plex HRM熒光定量PCR儀上順次進(jìn)行擴(kuò)增和MCA分析。

        循環(huán)參數(shù):94℃8min;94℃30s,59℃25s,72℃30s,35個(gè)循環(huán);72℃5min。MCA分析:從70℃開始,逐步升高溫度至94℃,每步上升0.2℃,Green/HRM通道采集熒光信號(hào)。

        保持上述條件不變,分別以源于其他個(gè)體的DNA和各種濃度的DNA(0.5~80 ng)為模板重復(fù)實(shí)驗(yàn),檢驗(yàn)方法的穩(wěn)定性、靈敏度。

        1.5 單管PDP-MCA法

        反應(yīng)體系20μL:含F(xiàn)astDigest?HhaⅠ和HpaⅡ各1 μL,引物組合(選擇1.4項(xiàng)中適用于單管PDPMCA技術(shù)的引物組合),待測(cè)樣品基因組DNA 20ng,Taq DNA聚合酶和通用反應(yīng)液同1.4項(xiàng),加純水至20μL。在Rotor-Gene Q 5Plex HRM熒光定量PCR儀上順次進(jìn)行酶切、擴(kuò)增和MCA分析。

        循環(huán)參數(shù):37℃保溫10 min,后續(xù)步驟和重復(fù)管設(shè)置同1.4項(xiàng)。每批反應(yīng)設(shè)置假酶切對(duì)照管(不加限制酶),以外周靜脈血基因組DNA為模板,用50%甘油2μL代替限制酶,其余條件與酶切管完全相同。

        保持上述條件不變,以各濃度外周靜脈血基因組DNA(0.5~80ng)為模板重復(fù)實(shí)驗(yàn),測(cè)試方法的靈敏度。

        1.6 傳統(tǒng)MSRE-PCR MCA法

        按照產(chǎn)品說(shuō)明書,基因組DNA用普通HhaⅠ、普通HpaⅡ酶切8 h,取相當(dāng)于20 ng基因組DNA的酶切物進(jìn)行復(fù)合擴(kuò)增和MCA分析。除不含限制酶、略去37℃保溫步驟外,PCR體系和循環(huán)參數(shù)同1.5項(xiàng)。

        1.7 數(shù)據(jù)分析

        Rotor-Gene 2.0.2.4軟件分析數(shù)據(jù)生成MCA圖譜,用Origin8的Peak Analyzer模塊進(jìn)行基線扣除和峰積分計(jì)算,Statistics模塊進(jìn)行峰參數(shù)的統(tǒng)計(jì)學(xué)描述和配對(duì)t檢驗(yàn)。比較兩種方法所得基因片段的峰面積占MCA曲線下總面積的百分比。

        2 結(jié)果

        2.1 多重PCR-MCA圖譜

        以外周靜脈血基因組DNA為模板,經(jīng)調(diào)整引物濃度,優(yōu)化反應(yīng)體系和循環(huán)參數(shù),表1中的基因座均可以實(shí)現(xiàn)特異擴(kuò)增(圖1A、1B),并且可以分成A、B兩個(gè)組合進(jìn)行復(fù)合擴(kuò)增(圖1C、1D)。

        A組合4個(gè)片段(AC、MAGE-1、14-3-3σ和MCJ)分管同步擴(kuò)增時(shí),MCA圖譜均呈單一的主峰,且片段之間的MCA峰主體上互不重疊(圖1A);單管復(fù)合擴(kuò)增時(shí),MCA圖譜呈4個(gè)分離良好的峰,與4個(gè)片段相對(duì)應(yīng)(圖1C)。以源于不同個(gè)體的基因組DNA重復(fù)測(cè)定,只要模板量在1~40 ng,各片段的峰位置偏離在0.2℃以內(nèi),小于相鄰峰間距的1/10。

        B組合(AC、MAGE-1、MCJ和TIMP)中MCJ和TIMP的MCA峰相互交疊(圖1B);單管復(fù)合擴(kuò)增時(shí),與二者相應(yīng)的峰呈雙頭寬峰或肩峰狀,且TIMP的MCA峰較分管同步擴(kuò)增時(shí)右移0.5℃以上(圖1D)。故B組合不適用于單管PDP-MCA技術(shù)。

        2.2 單管PDP-MCA法的建立

        圖1 Tm差異片段的多重PCR-MCA圖譜

        以2.1項(xiàng)多重PCR-MCA檢測(cè)為基礎(chǔ),在反應(yīng)體系內(nèi)引入FastDigest?HhaⅠ、FastDigest?HpaⅡ、引物A組合、啟動(dòng)擴(kuò)增前增加一個(gè)37℃保溫10min的酶切步驟,即為單管PDP-MCA法。用該技術(shù)檢測(cè)并生成精液、血液和陰道液各有其特異的MCA圖譜。與未加限制酶的假酶切對(duì)照管相比較,組成樣品MCA圖譜的各MVP峰的位置不變,但峰高、峰面積呈組織特異性變化(圖2)。這種變化與傳統(tǒng)MSRE-PCR MCA法得到的結(jié)果一致(表2),精液的MAGE-1和14-3-3σ甲基化程度低于血液和陰道液,而陰道液的MCJ甲基化程度高于精液和血液,血液、精液樣品的MCJ峰高均小于0.1(圖2)。除14-3-3σ基因座外,各樣品用兩種方法的檢測(cè)結(jié)果比較,差異均無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05,表2)。當(dāng)前實(shí)驗(yàn)條件下,1 ng的基因組DNA可獲得穩(wěn)定的MCA圖譜。加入的基因組DNA 在1~40ng,不影響圖譜的特異性。

        在可進(jìn)行高分辨率融解曲線(high resolution melting,HRM)的儀器上,用HRM模式進(jìn)行MCA分析,除生成MCA圖譜外,得到的數(shù)據(jù)還可以用儀器配備的HRM軟件處理,得到標(biāo)準(zhǔn)和差異HRM圖譜,便于比較樣品間的差異(圖3)。

        圖2 不同組織來(lái)源樣品的單管PDP-MCA圖譜

        表2 單管PDP-MCA法與傳統(tǒng)MSRE-PCR MCA法結(jié)果比較(n=5,±s,%)

        表2 單管PDP-MCA法與傳統(tǒng)MSRE-PCR MCA法結(jié)果比較(n=5,±s,%)

        注:表中數(shù)值為各基因片段的峰面積占MCA曲線下總面積的百分?jǐn)?shù)

        MCAPDP-MCAMSRE-PCR MCA對(duì)照15.67±2.3014.79±1.1018.40±1.4519.90±0.6044.56±1.6944.53±0.6018.51±1.4317.14±0.99血液25.72±1.4524.14±1.7526.07±0.6126.57±4.5943.21±2.4943.12±2.510.67±0.401.01±0.55精液42.59±1.6941.52±2.3417.11±1.6818.19±1.8334.65±3.6631.20±1.311.44±0.623.55±0.73陰道液19.23±1.8221.60±0.9326.57±1.6227.65±2.8243.41±3.1638.82±0.625.44±1.476.32±0.78樣品ACMAGE-114-3-3σMCJ PDP-MCAMSRE-PCR MCAPDP-MCAMSRE-PCR MCAPDP-MCAMSRE-PCR

        圖3 樣品特異性的HRM圖譜

        3 討論

        3.1 原理

        FastDigest內(nèi)切酶是一種新型的限制酶,具有高效、快速、模板和體系適應(yīng)性強(qiáng)等優(yōu)點(diǎn),在PCR緩沖體系內(nèi)也可以實(shí)現(xiàn)靶位點(diǎn)的有效切割[11]。直接把這種限制酶加入PCR體系,只需在常規(guī)擴(kuò)增前37℃保溫10min,即可替代傳統(tǒng)的酶切步驟。實(shí)現(xiàn)酶切和擴(kuò)增兩個(gè)反應(yīng)在同一體系、同一管內(nèi)的連續(xù)進(jìn)行。

        MCA是一種根據(jù)融鏈曲線的特征來(lái)鑒別DNA片段的電泳替代技術(shù)。與根據(jù)長(zhǎng)度差異性來(lái)分離檢測(cè)的電泳方法不同,MCA是一種基于解鏈溫度差異的均相閉管分析技術(shù)[13]。PCR體系內(nèi)如含有EvaGreen等雙鏈DNA熒光染料,在定量PCR儀上完成擴(kuò)增后,只需在梯度升溫的同時(shí)采集熒光信號(hào),就可得到特異性的MCA圖譜,即時(shí)提供靶片段的有無(wú)、產(chǎn)量及純度等類似電泳檢測(cè)的信息。復(fù)合擴(kuò)增時(shí),只要多個(gè)片段之間的解鏈溫度互不重疊,可以同時(shí)獲得各片段的信息并進(jìn)行相互比較[12]。

        同時(shí)采用FastDigest內(nèi)切酶和復(fù)合MCA技術(shù),就可以把傳統(tǒng)MSRE-PCR MCA的酶切、擴(kuò)增和產(chǎn)物分析3個(gè)步驟集成于一個(gè)反應(yīng)管內(nèi),實(shí)現(xiàn)多個(gè)MVP的單步閉管快速檢測(cè)。

        3.2 可行性

        為了驗(yàn)證上述原理或設(shè)計(jì)思路的可行性,本研究以文獻(xiàn)[16-19]報(bào)道的DMR為模型,成功建立了單管PDPMCA法。

        從DMR中篩選含有MVP的可擴(kuò)增片段,是建立該技術(shù)的前提。本研究運(yùn)用兩種最常見的MSRE酶(HhaⅠ和HpaⅡ)設(shè)計(jì)并合成4個(gè)片段的引物(表1)進(jìn)行實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證,成功實(shí)現(xiàn)了運(yùn)用引物A組合4個(gè)片段的單管PDP-MCA檢測(cè)。綜合上述序列分析和實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證的結(jié)果,應(yīng)用MSRE-PCR MCA法來(lái)進(jìn)行MVP分析是可行的。同時(shí),考慮到還有多種可用的MSRE酶及引物改進(jìn)的可能性,多數(shù)DMR都可以找到符合設(shè)計(jì)要求的MVP,即該技術(shù)具有一定的實(shí)際應(yīng)用前景。

        FastDigest內(nèi)切酶的應(yīng)用是本研究的另一重要改進(jìn)。為了驗(yàn)證其在PCR體系內(nèi)的切割效果,本研究比較了單管PDP-MCA法和傳統(tǒng)MSRE-PCR MCA法對(duì)同一組基因組樣品的檢測(cè)結(jié)果。兩種方法的MCA圖譜及峰積分?jǐn)?shù)據(jù)(表2)均有良好的一致性,所反映的組織細(xì)胞甲基化特征也與文獻(xiàn)[16-19]報(bào)道相同。

        只有在14-3-3σ基因座上,兩種方法的差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),可能系陰道液(樣本收集困難,檢材質(zhì)量偏低)DNA樣品的純度較低所致,有待進(jìn)一步分析確認(rèn)。改進(jìn)后的方法總體上可以達(dá)到傳統(tǒng)的檢測(cè)效果,實(shí)現(xiàn)MVP的簡(jiǎn)便快速分析,用于組織細(xì)胞之間甲基化差異的比較(圖2~3)。

        應(yīng)用本研究建立的單管PDP-MCA技術(shù)進(jìn)行檢測(cè),血液、精液和陰道液各有其特征性的圖譜(圖2~3),說(shuō)明本技術(shù)具有解決法醫(yī)學(xué)斑痕類型鑒別等實(shí)際問(wèn)題的潛力。本課題組正在對(duì)更多的斑痕特異性MVP進(jìn)行優(yōu)選組合,以期建立一種符合法醫(yī)學(xué)應(yīng)用要求的斑痕單管PDP-MCA鑒別技術(shù)。

        3.3 優(yōu)勢(shì)與問(wèn)題

        與傳統(tǒng)的MSRE-PCR MCA法及其他基于DNA修飾的甲基化分析方法相比較,單管PDP-MCA技術(shù)的突出優(yōu)勢(shì)是簡(jiǎn)便快速。該技術(shù)只需配制一次反應(yīng)體系即可實(shí)現(xiàn)DNA樣品的甲基化分析,不需反復(fù)移液、換管及電泳操作,結(jié)束后可直接得到多種數(shù)字化的圖譜和相應(yīng)的數(shù)據(jù)。在大幅降低操作量的同時(shí),也降低了出錯(cuò)和污染的機(jī)會(huì),并使整個(gè)檢測(cè)過(guò)程有可能實(shí)現(xiàn)自動(dòng)化和標(biāo)準(zhǔn)化。同時(shí),檢測(cè)時(shí)間大為縮短。

        當(dāng)然,要作為一種實(shí)用的方法,單管PDP-MCA法在諸多方面尚需繼續(xù)完善優(yōu)化。首先,受可利用溫度范圍的限制,即使采用分辨率高的HRM技術(shù),單色熒光MCA檢測(cè)可以復(fù)合的片段數(shù)目理論上很難超過(guò)10個(gè)。有必要繼續(xù)探討利用各種熒光探針或探針染料組合的多色MCA技術(shù),以增加單次檢測(cè)的信息量[20]。其次,單管PDP-MCA的反應(yīng)體系要兼顧酶切、擴(kuò)增和熒光MCA檢測(cè)3個(gè)方面的要求,應(yīng)繼續(xù)探討優(yōu)化各緩沖組分及反應(yīng)組分的類型和濃度,引入對(duì)酶切效果進(jìn)行控制的片段,以確立真正高效、靈敏、可靠的實(shí)用性方案。

        需要指出的是,單管PDP-MCA法進(jìn)行的是復(fù)合擴(kuò)增、復(fù)合MCA和終點(diǎn)檢測(cè),MCA峰與相應(yīng)MVP的甲基化水平之間有相關(guān)性,但并非定量關(guān)系。樣品MCA圖譜的特異性是由所檢測(cè)的MVP共同決定的,其特征體現(xiàn)在圖譜內(nèi)各MVP峰之間的比例關(guān)系。未經(jīng)標(biāo)準(zhǔn)化的參數(shù),在樣品間并沒有可比性。因此,在設(shè)置反應(yīng)時(shí),須使用熱啟動(dòng)聚合酶,并注意控制PCR循環(huán)次數(shù),防止引物二聚體等非特異性產(chǎn)物的形成,以保持MVP片段的融鏈峰與其甲基化水平之間的相關(guān)性。

        在分析利用數(shù)據(jù),對(duì)樣品圖譜的特征進(jìn)行數(shù)字化描述或建立判別標(biāo)準(zhǔn)時(shí),對(duì)于MCA圖譜,可以采用峰高比、峰面積比、峰面積百分比等,適用于沒有HRM功能的定量PCR儀,須借助其他軟件對(duì)MCA數(shù)據(jù)作進(jìn)一步處理。在有HRM功能的定量PCR儀上,可用HRM代替MCA,直接得到標(biāo)準(zhǔn)和差異HRM圖譜,既直觀呈現(xiàn)樣品間的差異(圖3),又可直接以若干特征溫度點(diǎn)的標(biāo)準(zhǔn)熒光信號(hào)值為參量進(jìn)行判別分析。

        本研究用FastDigest內(nèi)切酶和MCA技術(shù)對(duì)傳統(tǒng)的MSRE-PCR MCA法進(jìn)行改良,初步建立了一種簡(jiǎn)便、快速、易于自動(dòng)化和標(biāo)準(zhǔn)化的DNA甲基化分析技術(shù)。對(duì)于DNA樣品,該技術(shù)可以在2 h內(nèi)完成多個(gè)MVP的綜合評(píng)估,即時(shí)生成樣品特異性的MCA-HRM圖譜。適用于各種根據(jù)DNA甲基化差異對(duì)樣品進(jìn)行歸類或鑒別的研究與應(yīng)用。

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        One-step Methylation Variable Position Analysis Technology in Single-tube

        YUE Yang-yang1,2,ZHAO Gui-sen1,2,ZHANG Qian1,LU Di2,ZHAI Xian-dun1,MO Yao-nan1
        (1.School of Forensic Medicine,Henan University of Science and Technology,Luoyang 471003,China;2.Key Laboratory of Evidence Science,China University of Political Science and Law,Ministry of Education,Beijing 100088,China)

        ObjectiveTo develop the single-tube one-step methylation variable position(MVP)analysis technology——single-tube post-digestion PCR-melting curve analysis(PDP-MCA).MethodsBased on differentially methylated region(DMR)reported previously as the model,a set of primers with different melting temperatures of products in the two sides of MVP were designed.By using the FastDigest methylation-sensitive restriction enzyme(MSRE),DNA digestion,multiplex amplification,MCA detection and MCA profiles were performed in a single reaction tube.Same samples(peripheral venous blood,semen, and vaginal fluid,5 samples each type)were tested by single-tube one step MVP and traditional MSREPCR MCA technology.To verify the feasibility of this method,the results were compared with that of the traditional technology.The MCA/HRM profiles of different samples were analyzed and compared.ResultsWhen the melting temperature of the fragments had a differential of 2℃,the MCA melting peaks separated well,and MCA detection after multiplex amplification was successful.The single-tube PDP-MCA assay was developed,which integrated multiple reactions(digestion,amplification and detection)into one tube.By this method,the sample-specific profiles and data were analyzed in 2h,which is similar to that of the traditional method.The rapid classifications of the samples were also realized.ConclusionMultiplex MVPs can be analyzed in a single closed-tube.The single-tube PDP-MCA technology is a simple,fast,and automatable method.It can be used for detection of DNA methylation variations.

        forensic genetics;DNA methylation;melting curve;methylation-sensitive restriction enzyme; methylation variable position

        DF795.2

        10.3969/j.issn.1004-5619.2013.06.005

        1004-5619(2013)06-0419-06

        2012-04-26)

        (本文編輯:柳燕)

        《法醫(yī)學(xué)雜志》常用主題詞(六)

        檢索詞主題詞英文串聯(lián)質(zhì)譜法串聯(lián)質(zhì)譜法tandem mass spectrometry氣相色譜-質(zhì)譜法/氣液體色譜法-質(zhì)量光譜測(cè)定法/色譜法,氣液質(zhì)量光譜測(cè)定法/色譜法,氣質(zhì)量光譜測(cè)定法/質(zhì)量光譜測(cè)定法-氣相色譜法氣相色譜-質(zhì)譜法gas chromatography-mass spectrometry氣相色譜法色譜法,氣相chromatography,gas色譜法,高速液相/色譜法,高效液相/色譜法,高壓液相色譜法,高壓液相chromatography,high pressure liquid色譜法,液相/液相色譜法色譜法,液相chromatography,liquid間質(zhì)性肺疾病/肺炎,間質(zhì)性/肺炎,間質(zhì)肺疾病,間質(zhì)性lung diseases,interstitial肺疾病,阻塞性肺疾病,阻塞性lung diseases,obstructive慢性阻塞性肺疾病/慢性阻塞肺疾病肺疾病,慢性阻塞性pulmonary disease,chronic obstructive創(chuàng)傷性膈疝疝,橫膈,創(chuàng)傷性hernia,diaphragmatic,traumatic膈疝疝,橫膈hernia,diaphragmatic腹內(nèi)疝疝,腹部hernia,abdominal動(dòng)脈瘤樣骨囊腫骨囊腫,動(dòng)脈瘤樣bone cysts,aneurysmal胃癌胃腫瘤stomach neoplasms骨髓移植/骨髓細(xì)胞移植/移植,骨髓/移植,骨髓細(xì)胞/移植術(shù),骨髓骨髓移植bone marrow transplantation

        證據(jù)科學(xué)教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室(中國(guó)政法大學(xué))開放基金資助項(xiàng)目(08KFKT002)

        岳陽(yáng)陽(yáng)(1988—),男,陜西興平人,碩士研究生,主要從事法醫(yī)分子遺傳學(xué)研究

        趙貴森,男,副教授,主要從事法醫(yī)遺傳學(xué)研究;E-mail:lyfy@haust.edu.cn

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