鐘 磊,王林紅,喬亞科,崔姍姍,紀展波,李桂蘭
(河北科技師范學院生命科技學院,河北秦皇島,066600)
大豆是公認的較難進行遺傳轉化的植物之一。農(nóng)桿菌介導的大豆遺傳轉化是最早被開發(fā)出來并且是目前應用最廣泛的一種轉基因技術[1],該法具有操作簡單,費用低廉,可插入基因片段大,不容易發(fā)生重排等優(yōu)點。農(nóng)桿菌轉化所用的外植體主要有子葉節(jié)[2~6]、無菌苗的莖尖[7]、未成熟胚子葉[8]、上胚軸和初生葉[9]、子葉[10]、成熟胚的胚尖[11]、未成熟胚體細胞胚[12]等,而對利用未成熟大豆種子子葉節(jié)的轉化研究報道則較少。筆者以不同大豆品種的未成熟種子子葉節(jié)為轉化受體,研究其遺傳轉化影響因素,為提高大豆遺傳轉化效率提供依據(jù)。
供試大豆品種:冀豆7號,豫豆22,九農(nóng)26,鄭97196,品系10,品系12。
植物表達載體:pX6PTF1(河北農(nóng)業(yè)大學張彩英研究員提供)[13]。
1.2.1 外植體的制備 選取開花后不同發(fā)育時期的大豆豆莢,清水沖洗表面,體積分數(shù)為0.75的酒精消毒1 min,無菌水沖洗1次,質(zhì)量濃度為1.0 g/L的氯化汞溶液消毒10 min,無菌水沖洗3次。無菌條件下取出未成熟種子,滅菌的液體共培養(yǎng)基(或無菌蒸餾水)浸泡15 min,去掉種皮,將2片子葉從胚軸縱切,去除幼芽和胚尖。
1.2.2 菌液制備 挑取工程菌的單菌落,接種到鏈霉素、壯觀霉素質(zhì)量濃度為50 mg/L的LB液體培養(yǎng)基中,180 r/min,28 ℃振蕩培養(yǎng) 2~3 d至OD600=0.6~0.8。隨后吸取OD600=0.6~0.8 菌液,接種到新鮮的LB液體培養(yǎng)基中,28℃培養(yǎng)至OD600=0.3~0.5。將菌液5 000 r/min,4℃離心10 min,棄上清,沉淀重懸于與共培養(yǎng)基成分相同的液體培養(yǎng)基中,調(diào)整菌液濃度至OD600=0.3~0.5,備用。
1.2.3 共培養(yǎng) 將制備好的農(nóng)桿菌菌液侵染外植體30 min,接種到共培養(yǎng)基,24℃恒溫培養(yǎng)4 d。
1.2.4 抗性植株再生 共培養(yǎng)后經(jīng)抗性芽誘導、伸長、生根、移栽和馴化后獲得抗性植株。
1.3.1 子葉節(jié)預處理試驗 以冀豆7為材料,對所取材料分別進行如下預處理:處理1,對去除莢皮的種子在4℃下處理24 h,切制子葉節(jié);處理2,將豆莢在4℃低溫處理24 h,然后消毒后除去豆莢皮切制子葉節(jié);處理3,取新鮮豆莢直接去莢皮后切制子葉節(jié)。
1.3.2 共培養(yǎng)溫度試驗 以開花60 d的冀豆7未成熟種子為材料,共培養(yǎng)溫度設置3個處理:22,24,26℃。
1.3.3 共培養(yǎng)光照試驗 以開花60 d的冀豆7未成熟子葉節(jié)為外植體,共培養(yǎng)時設置3個光照長度處理:0,16,24 h/d。
1.3.4 不同品種試驗 以豫豆22,冀豆7號,鄭97196,九農(nóng)26,品系10和品系12為受體品種,取開花60 d的未成熟種子制備子葉節(jié)外植體。
每個單因素試驗中每個處理切制外植體50個,3次重復。
數(shù)據(jù)應用DPSv 7.05版統(tǒng)計軟件進行統(tǒng)計分析。
以冀豆7號為材料,分析開花后50,60,67 d未成熟種子子葉節(jié)外植體的芽誘導率發(fā)現(xiàn),以開花后60 d,種子達到最飽滿程度所制備的外植體抗性芽誘導率和平均抗性芽數(shù)最高,與開花后50 d的和開花后67 d的差異均達到極顯著(表1);而開花后50 d的未成熟子葉節(jié)經(jīng)誘導后易產(chǎn)生愈傷組織,抗性芽數(shù)量較少;開花后67 d的種子由于已經(jīng)開始縮水變小,故抗性芽率和平均抗性芽數(shù)出現(xiàn)下降現(xiàn)象。
表1 大豆未成熟種子發(fā)育程度對遺傳轉化的影響
分析3種外植體預處理方法對抗性芽誘導率的影響發(fā)現(xiàn),以不經(jīng)過預處理的新鮮材料抗性芽誘導率最高,達到55.9%,與其他2個處理差異顯著(p<0.01);而經(jīng)過4℃低溫預處理24 h的抗性芽誘導率較低,二者差異不顯著(p>0.05)。說明24 h的4℃低溫處理對未成熟種子的子葉節(jié)遺傳轉化不利(圖1)。
分析不同共培養(yǎng)溫度條件下的抗性芽誘導率發(fā)現(xiàn),在一定溫度范圍內(nèi),隨共培養(yǎng)溫度的上升,未成熟子葉節(jié)的平均出芽數(shù)呈現(xiàn)上升趨勢,在3個處理溫度中,以26℃條件下的未成熟胚的平均抗性芽個數(shù)最高(圖2)。但是3個溫度處理之間差異不顯著。
圖1 不同預處理對大豆未成熟種子遺傳轉化的影響
圖2 共培養(yǎng)溫度對大豆未成熟子葉節(jié)出芽的影響
分析不同光照時間對大豆子葉節(jié)轉化抗性芽誘導的影響表明,在共培養(yǎng)階段提供一定時間的光照對大豆未成熟子葉節(jié)轉化有促進作用(表2)。光照處理的大豆子葉節(jié)共培養(yǎng)后顏色變成深綠色,其抗性芽出芽率和平均出芽數(shù)都有所提高。提供光照24 h/d的處理,子葉節(jié)抗性芽誘導率最高,為56.64%,平均出芽數(shù)也達到2.27個,并與其他2個處理差異顯著。
表2 共培養(yǎng)階段光照時間對大豆未成熟子葉節(jié)遺傳轉化的影響
分析不同品種抗性芽誘導率發(fā)現(xiàn),以冀豆7號,豫豆22和品系12的每個外植體的平均抗性芽數(shù)較高,達到2.11~2.18,3個品種之間差異不顯著;冀豆7號,豫豆22和品系12均與九農(nóng)26,鄭97196,品系10之間差異達到顯著水平(p<0.05)(圖3)。九農(nóng)26不僅出芽率低,而且易出現(xiàn)畸形芽,成苗率最低。
圖3 不同大豆品種未成熟種子子葉節(jié)遺傳轉化比較
在遺傳轉化過程中抗性芽形成是獲得轉基因苗的前提。王盧平等[14]研究表明,當豆莢及種子發(fā)育到最大、鼓粒飽滿、種皮變黃時,未成熟種子子葉節(jié)不定芽誘導率最高。本研究在農(nóng)桿菌介導的轉化體系中也得到一致的結果,以豆莢和種子體積發(fā)育到最大(開花后60~66 d),豆莢開始由綠色變黃時,未成熟子葉節(jié)的抗性芽率和平均抗性芽值都達到最高。
轉化過程中共培養(yǎng)階段的外部環(huán)境條件直接影響著農(nóng)桿菌的侵染及T-DNA的轉移,同時也影響著受體細胞的感受狀態(tài)。本研究表明,從大豆植株上取的新鮮豆莢直接制備外植體,不經(jīng)過預處理,產(chǎn)生的抗性芽數(shù)最多;轉化過程中,在26℃,24 h/d光照共培養(yǎng)條件下獲得較高的抗性芽產(chǎn)生率。已有研究表明,在大豆成熟種子的子葉節(jié)轉化系統(tǒng)中,不同大豆基因型對農(nóng)桿菌的敏感性存在著差異[15]。在本研究中,未成熟大豆子葉節(jié)轉化也存在著基因型差異,冀豆7,豫豆22和品系12的未成熟子葉抗性芽率較高。
大豆未成熟種子子葉節(jié)作為遺傳轉化外植體,具有取材方便、簡化遺傳轉化外植體制備過程的優(yōu)點,本研究僅就部分影響因素進行了初步探討,建立一個完善的大豆未成熟子葉節(jié)轉化體系尚需進行深入研究。
[1] HINCHEE M A W,CONNOR-WARD D V,NEWELL C A,et al.Production of transgenic soybean plants usingAgrobacterium-mediated DNA transfer[J].Bio/Technology,1988,6:915-922.
[2] 劉博林,徐民新.兩個栽培大豆品種的體細胞胚胎發(fā)生和植株再生研究[J].中國油料作物學報,1999,21(2):11-13.
[3] CHENG T Y,SAKA H V.Plant regeneration from soybean cotyledon node segments in cultures[J].Plant Science Letters,1980,19:91-99.
[4] ZHANG Z Y,XIANG A Q,STASWICK Q.The use of glufosinate-arm-monium as a selective agent inAgrobacterium-mediated transformation of soybean[J].Plant Cell,Tissue and Organ Culture,1999,56:37-46.
[5] YAMADA T,WATANABE S,ARAI M,et al.Cotyleonary node prewounding with a micro-brush increased frequency ofAgrobacterium-mediated transformation in soybean[J].Plant Biotechnology,2010,27:217-220.
[6] PAZ M M,MARTINEZ J C,KALVIG A B,et al.Improved cotyledonary node method using an alterntive explants derived from mature seed for efficient Agrobacterium mediated soybean transformation[J].Plant Cell Reports,2006,25:206-213.
[7] KARTHA K K,K Pahl,N L Leung,et al.Plant regeneration from meristems of grain legumes:soybean,cowpean,peanut,chickpea and bean[J].Can J Bot,1981,59:1 671-1 679.
[8] BARWALE U B,KEMS H R,WIDHOLM J M.Plant regenerating from callus cultures of several soybean genotypes via embryogensis and organogenesis[J].Planta,1986,167:473-481.
[9] WRIGHT M S,WARD D V,HINCHEE M A,et al.Regeneration of soybean(Glycine maxL.Merr)from cultured primary leaf tissue[J].Plant cell Reports,1987,6:83-89.
[10] SETH M,RALPH S,JOHN C.A simple rapid protocol for adventitious shoot development from mature cotyledons of(Glycine max)cv Bragg[J].In Vitro Cellular and Devepmental Biology,1989,25(4):385-388.
[11] LIU Hai-kun,YANG Chao,WEI Zhi-ming.EfficientAgrobacterium tumefaciens-mediated transformation of soybeans using an embryonic tip regeneration system[J].Planta,2004,219:1 042-1 049.
[12] KO T S,LEE S,F(xiàn)ARRAND S K,et al.A partially disarmed vir helper plasmid,pKYRT1,in conjunction with 2,4-dichlorophenoxyacetic acid promotes emergence of regenerable transgenic somatic embryos from immature cotyledons of soybean[J].Planta,2004,218:536-541.
[13] 鄭醒,張彩英,常文鎖,等.轉錄因子GmPTF1表達載體構建及轉化大豆研究[J].華北農(nóng)學報,2011,26(6):27-31.
[14] 王盧平,喬亞科,李桂蘭,等.大豆未成熟種子子葉節(jié)不定芽再生的初步研究[J].大豆科學,2011,30(3):369-373.
[15] 姬月梅,張銀霞,宋曉華.農(nóng)桿菌介導大豆遺傳轉化的研究進展[J].農(nóng)業(yè)科學研究,2009,30(1):47-50.
(責任編輯:朱寶昌)